DÜSENTEEERIA, AMEBIAASI JA BALANTÜDIAASI LABORATOORNE DIAGNOOS

Kaasaegsetes tingimustes, üksikjuhtudel või väikeste fokaalsete puhangute korral soolehaigused, mis esineb sageli ebaselgete sümptomitega, on laboratoorsetel uurimismeetoditel suur praktiline tähtsus.

Diagnostika eesmärgil tehtavad uuringud tuleks läbi viia rangelt järgides kehtestatud soovitusi ja võimalikult varakult.

Väljaheidete kogumine uuringuteks viiakse läbi puhastes nõudes (öövaasid, voodinõud), mis ei sisalda desinfektsioonivahendite jääke, materjal uurimiseks võetakse sigmoidoskoopia käigus tampoonidega pärasoole limaskestalt.

Diagnoosi bakterioloogiliseks kinnitamiseks on parem võtta düsenteeriaga patsientide väljaheited enne ravi antibiootikumide ja sulfoonamiididega ning määrata bakterikandja - pärast nende ravimitega ravi.

Petri tassidele külvamine tuleb teha kohe pärast materjali võtmist.

Kõigepealt teostada makroskoopiline uuring väljaheited, samas kui nad suudavad tuvastada: toidujäägid - lihatükid, rasvajäägid, taimne toit ja patoloogilised lisandid - viskoosse konsistentsiga lima tükkidena (düsenteeria korral mitte läbipaistev ja amööbiaasi korral läbipaistev); muutumatu veri düsenteeria ja peptilise haavandi korral alumine sektsioon erineva etioloogiaga käärsool ja muutunud värv ("vaarikaželee") koos amööbiaasi, balantidiaasiga; mäda avastatakse raskete pikaleveninud düsenteeria vormide korral.

Väljaheidete mikroskoopilist uurimist kasutatakse vere rakuliste elementide, amööbide, balantidia ja nende tsüstide tuvastamiseks. Looduslik preparaat valmistatakse järgmiselt: klaasklaasile kantakse väljaheitetükk ja selle kõrvale tilk isotoonilist naatriumkloriidi lahust, segatakse ja kaetakse katteklaasiga. Algloomade värvimiseks kasutatakse Lugoli lahust.

Vere rakuliste elementide eristamiseks töödeldakse preparaate Romanovsky-Giemsa peitsiga või taevasinine-eosiiniga. Düsenteeria korral limast valmistatud preparaadis leitakse palju neutrofiilseid granulotsüüte (üle 90% kõigist rakuelementidest), üksikuid eosinofiilseid granulotsüüte (eosinofiile) ja erinevat arvu erütrotsüüte; amebiaasi korral on rakulisi elemente vähe, nende põhimass on püknootilise tuuma ja kitsa protoplasma servaga muutunud rakud. Leidke eosinofiilsed granulotsüüdid ja Charcot-Leideni kristallid.

Värvimata preparaadis olevad amööbi (Entamoeba histolytica) koevormid on värvitud, liikuvad (pseudopoodia abil), ulatuvad pikliku olekus 50-60 µm-ni, neid leidub sageli erütrotsüütidega endoplasmas ja perifeerias - tuum. Erütrotsüütide olemasolu rakus võimaldab eristada Entamoeba histoluticat mittepatogeensetest vormidest (E. hartmani, E. coli.).

Amööbi poolläbipaistev vorm on väiksem (kuni 20 mikronit), inaktiivne ja ei sisalda erütrotsüüte. Tsüstid on veelgi väiksemad (10-12 mikronit), ümarad, liikumatud; arengu algstaadiumis sisaldavad need 2 tuuma ja küpsed - 4. Lugoli lahusega värvitud preparaatides on amööbi tuumad ja nende tsüstid helepruunid (joon. 6).

Balantidia(Balantidium coli) - suured ripsloomad, mille pikkus ulatub mõnikord 200 mikronini ja läbimõõt 50–70 mikronit, on ripsmete olemasolu tõttu liikuvad, neil on suu (peristoom) ja päraku (tsütopüüs) avad. Endoplasmas on nähtavad suured (makronukleod) ja väikesed (mikronukleod) tuumad, vakuoolid, kinnipüütud erütrotsüüdid. Balantidia tsüstid on liikumatud, ümarad, läbimõõduga 50–60 μm, kahekontuurilise membraaniga, sees on makronukleosid ja vakuoolid (joon. 7).

Bakterioloogiline väljaheidete uurimine bakteriaalse düsenteeria korral on kõige parem teha vahetult pärast roojamist, samal ajal kui peate võtma materjali (lima ja mäda) väljaheite viimastest osadest. Uuritav materjal inokuleeritakse Petri tassidele silmusega valikulise söötmega (Ploskirev, Ploskirev + klooramfenikool, Levin) ja asetatakse 18-24 tunniks termostaadi temperatuurile +37 ° C. Järgmisel päeval kahtlane (värvitu) kolooniad subkultuuritakse Resseli söötmel ja asetatakse katseklaasid ööpäevaks termostaadi temperatuurile +370 C. Kolmandal päeval pärast puhaskultuuri saamist valmistatakse äigepreparaadid mikroskoopiaks ja liikuvuse uurimiseks (shigellad on liikumatud) . Aglutinatsioonireaktsioon viiakse läbi tüübispetsiifiliste seerumitega klaasil, algul seerumitega piirkonnas valitsevate tüüpide vastu, seejärel rakendatakse ja külvatakse "kirevale" reale, et määrata isoleeritud kultuuri biokeemilised omadused.

Düsenteeria tekitajad ei käärita laktoosi ja sahharoosi (v.a Sonne), ei lagunda glükoosi (happeks) ega moodusta vesiniksulfiidi.

Lõplik vastus kl bakterioloogiline uuring anna 5. päeval. Mõnikord eraldatakse patogeeni ebatüüpilised tüved, aglutineeritavuse kaotanud ja muude tunnustega kultuurid. Sellistel juhtudel jätkuvad uuringud pikemaks ajaks.

Samuti on olemas kiirendatud bakterioloogilised meetodid - kahtlaste kolooniate ümberkülvimine Petri tassidelt 18-20 tunni pärast uuringu algusest 2 katseklaasi Resseli söötmega (kald agar 1% laktoosi ja 0,1% glükoosiga - ühes ja 1% sahharoosis ja 1% 0,1% mannitooli – teises). 4 tunni pärast võivad ilmneda juba kolooniad, millest valmistatakse määrded, värvitakse grammi järgi, uuritakse liikuvust ja seatakse ligikaudne aglutinatsioonireaktsioon seerumitega piirkonna levinumate patogeenide vastu. Seega saad juba teisel päeval anda esialgse vastuse. Lõplik vastus antakse kolmandal päeval pärast "kirevale" reale külvamise tulemuste ja üksikasjaliku aglutinatsioonireaktsiooni arvessevõtmist.

Düsenteeria patogeenide nakatamine ei ole alati sama, see sõltub paljudest teguritest - uurimistööks materjali võtmise meetodist, söötme kvaliteedist ja muudest põhjustest, millest üks on patogeenide arv väljaheite mahuühiku kohta. On tõestatud, et düsenteeria tekitajaid külvatakse neil juhtudel, kui ühes grammis väljaheites on vähemalt sadu miljoneid mikroobikehi. AT harvad juhud on võimalik verest isoleerida düsenteeria tekitajat.

Luminestsentsmikroskoobi, spetsiifiliste fluorokroomidega seerumite juuresolekul näidatakse õpilastele antikehade otsese fluorestsentsi meetodit.

Aglutinatsioonireaktsiooni on võimalik tekitada ka patsiendi vereseerumi ja diagnostiliste ainetega, kuid düsenteeriaga patsientidel on antikehade tiitrid madalad ning lisaks esinevad sageli paraglutinatsiooninähtused, mis raskendab usaldusväärsete tulemuste saamist. Tundlikum on kaudse hemaglutinatsiooni (RIHA) reaktsioon standardsete erütrotsüütide diagnostikavahenditega. Abistav uurimismeetod on D. A. Tsuverkalovi järgi intradermaalne allergiline test düsenteeriaga, mis võetakse arvesse 24 tunni pärast vastavalt moodustunud paapuli suurusele.

on Shigella perekonna bakterite põhjustatud äge sooleinfektsioon, mida iseloomustab valdav lokaliseerimine patoloogiline protsess jämesoole limaskestal. Düsenteeria edastatakse fekaal-oraalsel teel (toidu või vee kaudu). Kliiniliselt on düsenteeriaga patsiendil kõhulahtisus, kõhuvalu, tenesmus, joobeseisundi sündroom (nõrkus, väsimus, iiveldus). Düsenteeria diagnoos tehakse patogeeni eraldamisel patsiendi väljaheitest, Grigoriev-Shiga düsenteeria korral - verest. Ravi toimub peamiselt ambulatoorselt ja koosneb rehüdratsioonist, antibakteriaalsest ja võõrutusravist.

Üldine informatsioon

on Shigella perekonna bakterite põhjustatud äge sooleinfektsioon, mida iseloomustab patoloogilise protsessi valdav lokaliseerimine jämesoole limaskestal.

Erguti omadus

Düsenteeria tekitajateks on shigella, mida praegu esindab neli liiki (S. dysenteriae, S.flexneri, S. boydii, S. Sonnei), millest igaüks (v.a Sonne'i shigella) jaguneb omakorda serovarideks, mis praegu üle viiekümne. S. Sonnei populatsioon on antigeense koostise poolest homogeenne, kuid erineb erinevate ensüümide tootmise võime poolest. Shigella on liikumatud gramnegatiivsed vardad, ei moodusta eoseid, paljunevad hästi toitainekeskkonnas ja on tavaliselt väliskeskkonnas ebastabiilsed.

Shigella optimaalne temperatuurikeskkond on 37 °C, Sonne vardad on paljunemisvõimelised temperatuuril 10-15 °C, võivad moodustada kolooniaid piimas ja piimatoodetes, võivad püsida vees pikka aega elujõulisena (nagu Flexneri shigella) , vastupidav antibakteriaalsetele ainetele . Shigella sureb kuumutamisel kiiresti: koheselt - keetmisel, 10 minuti pärast - temperatuuril üle 60 kraadi.

Düsenteeria reservuaar ja allikas on inimene - haige või asümptomaatiline kandja. Kõige suurema epidemioloogilise tähtsusega on düsenteeria kerge või hävinud vormiga patsiendid, eriti toiduainetööstuse ja asutustega seotud patsiendid. Toitlustamine. Shigella isoleeritakse nakatunud inimese kehast, alates kliiniliste sümptomite esimestest päevadest, nakkus püsib 7-10 päeva, millele järgneb taastumisperiood, mille käigus on aga võimalik ka bakterite isoleerimine (mõnikord ka võib kesta mitu nädalat ja kuud).

Flexneri düsenteeria on kõige altid krooniliseks muutuma, kõige vähem on krooniliseks muutumise tendentsi täheldatud Sonne bakterite põhjustatud infektsiooni korral. Düsenteeria levib fekaal-oraalse mehhanismi kaudu peamiselt toiduga (Sonne'i düsenteeria) või vee kaudu (Flexneri düsenteeria). Grigorjevi-Šiga düsenteeria edasikandmisel realiseeritakse valdavalt kontakt-leibkondlik levikutee.

Inimestel on kõrge loomulik vastuvõtlikkus infektsioonidele, pärast düsenteeria põdemist moodustub ebastabiilne tüübispetsiifiline immuunsus. Need, kes on Flexneri düsenteeriast paranenud, võivad säilitada nakatumisjärgse immuunsuse, mis kaitseb uuesti nakatumise eest mitu aastat.

Düsenteeria patogenees

Shigella neelatakse toidu või vee kaudu seedeelundkond(osaliselt sureb mao happelise sisu ja normaalse soolestiku biotsenoosi mõjul) ja jõuab jämesoolde, tungides osaliselt selle limaskestale ja põhjustades põletikureaktsiooni. Shigella kahjustatud limaskest on altid erosioonipiirkondade, haavandite ja hemorraagiate tekkele. Bakterite eralduvad toksiinid häirivad seedimist ja Shigella olemasolu hävitab soolefloora loomulikku biotasakaalu.

Klassifikatsioon

Hetkel rakendatud kliiniline klassifikatsioon düsenteeria. Eristatakse selle ägedat vormi (see erineb oma valdavate sümptomite poolest tüüpiliseks koliidiks ja atüüpiliseks gastroenteriitiks), krooniliseks düsenteeriaks (korduv ja pidev) ja bakterite eritumiseks (konvalestseeruv või subkliiniline).

Düsenteeria sümptomid

Inkubatsiooniperioodäge düsenteeria võib kesta ühest päevast nädalani, kõige sagedamini 2-3 päeva. Düsenteeria koliidi variant algab tavaliselt ägedalt, kehatemperatuur tõuseb palavikuliste väärtusteni, ilmnevad joobeseisundi sümptomid. Söögiisu on märgatavalt vähenenud, võib täielikult puududa. Mõnikord on iiveldus, oksendamine. Patsiendid kurdavad intensiivset lõikamisvalu kõhupiirkonnas, algul valgunud, hiljem koondunud paremasse niudepiirkonda ja alakõhus. Valuga kaasneb sagedane (kuni 10 korda päevas) kõhulahtisus, roojamine kaotab kiiresti oma väljaheite konsistentsi, muutub väheseks ja neis on täheldatud patoloogilisi lisandeid - verd, lima ja mõnikord mäda ("rektaalne sülitamine"). Roojamistung on piinavalt valus (tenesmus), mõnikord vale. Igapäevaste roojamiste koguarv ei ole reeglina suur.

Uurimisel on keel kuiv, kaetud naastu, tahhükardia ja mõnikord arteriaalse hüpotensiooniga. Ägedad kliinilised sümptomid hakkavad tavaliselt taanduma ja lõpuks taanduma esimese nädala lõpuks, teise alguseks, kuid haavandilised limaskestadefektid paranevad tavaliselt täielikult kuu jooksul. Koliidi variandi kulgemise raskusaste määratakse joobeseisundi ja valusündroomi intensiivsuse ning ägeda perioodi kestuse järgi. Rasketel juhtudel täheldatakse raskest joobeseisundist põhjustatud teadvusehäireid, väljaheidete sagedus (nagu "pärasoole sülitamine" või "lihasülitamine") jõuab kümneid kordi päevas, valu kõhus on piinav, täheldatakse olulisi hemodünaamilisi häireid.

Gastroenteraalse variandi ägedat düsenteeriat iseloomustab lühike inkubatsiooniperiood (6-8 tundi) ja valdavalt enteraalsed nähud üldise joobeseisundi sündroomi taustal: iiveldus, korduv oksendamine. Kursus sarnaneb salmonelloosi või toksilise infektsiooniga. Selle düsenteeria vormi valu on lokaliseeritud epigastimaalne piirkond ja naba ümbruses, on krampliku iseloomuga, väljaheide on vedel ja rohke, patoloogilisi lisandeid ei esine, intensiivse vedelikukaotusega võib tekkida dehüdratsiooni sündroom. Seedetrakti vormi sümptomid on ägedad, kuid lühiajalised.

Esialgu meenutab gastroenterokoliitiline düsenteeria oma kulgu ka toidumürgitust, hiljem hakkavad ühinema koliidi sümptomid: lima ja verised triibud roojas. Gastroenterokoliidi vormi raskusastme määrab dehüdratsiooni raskusaste.

Kustutatud kursi düsenteeria esineb tänapäeval üsna sageli. Esineb ebamugavustunne, mõõdukas valu kõhus, pudrune väljaheide 1-2 korda päevas, enamasti ilma lisanditeta, hüpertermia ja mürgistus puuduvad (või on äärmiselt ebaolulised). Düsenteeria, mis kestab kauem kui kolm kuud, loetakse krooniliseks. Juhtumid on praegu krooniline düsenteeria arenenud riikides on kraan haruldane. Korduv variant on korduvad episoodid kliiniline piltäge düsenteeria, millega kaasnevad remissiooniperioodid, kui patsiendid tunnevad end suhteliselt hästi.

Pidev krooniline düsenteeria viib arenguni rasked rikkumised seedimine, orgaanilised muutused sooleseina limaskestal. Pideva kroonilise düsenteeriaga mürgistusnähud tavaliselt puuduvad, esineb pidev igapäevane kõhulahtisus, väljaheide on pudrune, võib olla roheka varjundiga. Kroonilised häired imendumine põhjustab kehakaalu langust, hüpovitaminoosi ja malabsorptsiooni sündroomi tekkimist. Tavaliselt täheldatakse pärast siirdamist taastuvate bakterite levikut äge infektsioon, subkliiniline - juhtub düsenteeria ülekandmisel kustutatud kujul.

Tüsistused

Tüsistused kaasaegsel tasemel arstiabi on äärmiselt haruldased, peamiselt raske Grigorjevi-Šiga düsenteeria korral. Seda infektsioonivormi võib komplitseerida toksiline šokk, sooleperforatsioon, peritoniit. Lisaks on tõenäoline soolestiku pareesi teke.

Intensiivse pikaajalise kõhulahtisusega düsenteeria võib komplitseerida hemorroidide, pärakulõhe, pärasoole prolapsi tõttu. Paljudel juhtudel aitab düsenteeria kaasa düsbakterioosi tekkele.

Diagnostika

Kõige spetsiifilisem bakterioloogiline diagnoos. Patogeen isoleeritakse tavaliselt väljaheitest, Grigorjevi-Šiga düsenteeria korral aga verest. Kuna spetsiifiliste antikehade tiitri tõus on üsna aeglane, on seroloogilised diagnostikameetodid (RNGA) retrospektiivse väärtusega. Üha enam hõlmab düsenteeria diagnoosimise laboratoorne praktika Shigella antigeenide tuvastamist väljaheites (tavaliselt teostatakse RCA, RLA, ELISA ja RNGA abil koos antikehade diagnostilisega), komplemendi sidumisreaktsiooni ja agregaadi hemaglutinatsiooni.

Kindralina diagnostilised meetmed rakendada erinevaid laboritehnikaid protsessi tõsiduse ja levimuse määramiseks, tuvastada ainevahetushäired. Väljaheiteid analüüsitakse düsbakterioosi ja koprogrammi suhtes. Endoskoopiline uuring (sigmoidoskoopia) võib sageli anda vajalikku teavet diferentsiaaldiagnostika kahtlastel juhtudel. Samal eesmärgil võivad düsenteeriaga patsiendid, sõltuvalt selle kliinilisest vormist, vajada konsulteerimist gastroenteroloogi või proktoloogiga.

Düsenteeria ravi

Düsenteeria kergeid vorme ravitakse ambulatoorselt, statsionaarne ravi on näidustatud raske infektsiooni, tüsistunud vormidega inimestele. Patsiente hospitaliseeritakse ka epidemioloogiliste näidustuste alusel, sisse vanas eas kaasuvate krooniliste haigustega ja esimese eluaasta lapsed. Palaviku ja mürgistuse korral määratakse patsientidele voodirežiim, dieettoit(ägedal perioodil - dieet number 4, kui kõhulahtisus taandub - tabel number 13).

Ägeda düsenteeria etiotroopne ravi seisneb 5-7-päevase antibakteriaalsete ainete (fluorokinolooni antibiootikumid, tetratsükliini seeria, ampitsilliin, kotrimoksasool, tsefalosporiinid) määramises. Antibiootikumid on ette nähtud raskete ja mõõdukate vormide korral. Arvestades võimet antibakteriaalsed ravimid süvendada düsbakterioosi, kombinatsioonis kasutatakse eubiootikume 3-4 nädala jooksul.

Vajadusel viiakse läbi võõrutusravi (olenevalt võõrutusravi raskusastmest määratakse ravimid suukaudselt või parenteraalselt). Imendumishäireid korrigeeritakse ensüümpreparaatide (pankreatiin, lipaas, amülaas, proteaas) abil. Vastavalt näidustustele immunomodulaatorid, spasmolüütikumid, kokkutõmbavad ained, enterosorbendid.

Taastumisprotsesside kiirendamiseks ja limaskesta seisundi parandamiseks taastumisperioodil on soovitatav kasutada eukalüpti ja kummeli, kibuvitsa- ja astelpajuõli ning viniliini infusiooniga mikroklüstreid. Kroonilist düsenteeriat ravitakse samamoodi nagu ägedat düsenteeriat, kuid antibiootikumravi on tavaliselt vähem efektiivne. Taastamiseks on soovitatav määrata terapeutilised klistiirid, füsioteraapia, bakteriaalsed ained. normaalne mikrofloora sooled.

Prognoos ja ennetamine

Prognoos on enamasti soodne, õigeaegselt kompleksne raviägedad vormid düsenteeria kroonimine protsessi on äärmiselt haruldane. Mõnel juhul pärast nakatumist jääk funktsionaalsed häired jämesoole töö (düsenteeriajärgne koliit).

Üldised meetmed düsenteeria ennetamiseks hõlmavad sanitaar- ja hügieenistandardite järgimist igapäevaelus, toidutootmises ja toitlustusettevõtetes, veeallikate seisundi jälgimist, reoveejäätmete puhastamist (eriti meditsiiniasutuste reovee desinfitseerimist).

Düsenteeriaga patsiendid saadetakse haiglast välja mitte varem kui kolm päeva pärast kliinilist paranemist ühekordse negatiivse bakterioloogilise testiga (bakterioloogilise uuringu materjal võetakse mitte varem kui 2 päeva pärast ravi lõppu). Toiduainetööstuse töötajad ja teised nendega võrdsustatud isikud kuuluvad vabastamisele pärast kahte negatiivne tulemus bakterioloogiline analüüs.

Artikli sisu: classList.toggle()">laienda

Düsenteeria on levinud nakkushaigus, mida tavainimesed tunnevad paremini sooleinfektsioonina. See haigus on tõesti lokaliseeritud jämesooles (selle distaalses osas), mis on põhjustatud perekonna Shigella bakteritest.

Düsenteeria on iseloomulik äge kulg ja võib põhjustada mitmeid tüsistusi. Varajane avastamine probleemid selle arengu varases staadiumis võimaldavad tõhusamalt võidelda infektsiooniga, määrates välja kitsalt sihitud antibiootikumravi ja muude meetmete kasutamine tervislikel põhjustel.

Näidustused düsenteeria diagnoosimiseks

Kompleksse diagnostika määramise otsene näidustus on shigelloosi esinemise kahtlus prostanovlenie'ga esialgne diagnoos perearst. Saatekirja uuringuks kirjutab ta välja pärast patsiendi esmast vastuvõttu, kaebuste fikseerimist, anamneesi kogumist.

Näidustused asjakohaste meetmete võtmiseks on lahutamatult seotud düsenteeria ägedate, väljendunud sümptomitega. Selle peamised sammud hõlmavad järgmist:

• Bakteriaalse infektsiooni esimeste nähtude ilming paar tundi või päeva pärast nakatumist (konkreetne periood sõltub patogeeni kehasse tungimise teest). Esineb üldine halb enesetunne, peavalu, külmavärinad;
• Peamiste sümptomite ilmnemine- valusündroom kõhus, väljaheide ja seedehäired, soojust, letargia ja suur nõrkus, isutus;
• Negatiivsete nähtuste tipp- väga levinud ja vedel väljaheide lima lisanditega, verehüübed, mäda, pidev ebamugavustunne alakõhus, mis suureneb asünkroonselt, sõltumata sellest kehaline aktiivsus ja söömine. Lisaks tuhmuvad nahka, limaskestad muudavad värvi rohkema poole tumedad toonid, keel on kaetud pruuni kattega. Sageli avastatakse ebameeldiv lõhn suuõõne. Kõhuvalu sündroom omandab krampliku, sageli muutuva iseloomu, vasakpoolse niudepiirkonna sondeerimisel suureneb see oluliselt. Samuti on vererõhu langus ja sagedased südamelöögid.

Diagnostilised meetodid

Kaasaegne meditsiin pakub patsiendile laia valikut düsenteeria diagnoosimise meetodeid, mis on suunatud nii üldisele shigella otsimisele kui ka nende spetsiifilise rühma liigi ja serotüübi määramisele.

Väärib märkimist, et ükski järgmistest analüüsidest ei saa olla 100 protsenti objektiivne ja informatiivne- nende töökindlus jääb vahemikku 60–85 protsenti, olenevalt konkreetsest tegevusest, laboripersonali kvalifikatsioonist, võetud proovide kvaliteedist, patsiendi poolt kõikide soovituste järgimisest enne materjali kohaletoimetamist ja selle säilitustingimustest, analüüsi kaasaegsusest ja täpsusest. diagnostikaseadmed ja muud tegurid.

Sellepärast saab šigelloosi lõpliku diagnoosi panna alles pärast selle saamist positiivseid tulemusi mitme alternatiivse uurimismeetodi abil, mis on üksteisest sõltumatud, kuid viiakse läbi ühe aja jooksul.

Kõige sagedamini hõlmab düsenteeria laboratoorne diagnoos:

• Coprogramm;
• Üldine vereanalüüs;
• Bakterioloogiline kultuur;
• Üldine uriinianalüüs;
• Seroloogilised uuringud;
• Antikehade analüüs;
• vere keemia;
• immunoloogiline testimine;
• sigmoidoskoopia;
• Muud tegevused vastavalt vajadusele.

Oluline samm šigelloosi avastamisel on ka igakülgne professionaal diferentsiaaldiagnostika, mis võimaldab välistada muud sarnaste sümptomitega infektsioonid või patoloogiad.

Koprogrammi või väljaheite analüüs

Koprogramm - kriitiline analüüs düsenteeria kahtlusega, mis võimaldab kindlaks teha uuritud väljaheidete kõrvalekaldeid normist. Laboritöötaja hindab pakutud materjali diagnoosimisel selle koostist, lisandite olemasolu, füüsikalisi ja keemilisi omadusi.

Enne seda tüüpi analüüsi läbimist on vaja laboriuuringuks korralikult ette valmistada.:

1. 10 päeva enne materjali proovide võtmist tasub alkoholi joomisest keelduda;
2. Vähemalt 5 päeva enne testi peate Pevzneri järgi järgima dieeti nr 5;
3. Väljaheiteid ei saa analüüsiks võtta, kui see on saadud klistiiriga või selles on võõrlisandid, näiteks uriin, menstruatsiooni jäljed;
4. 3 päeva enne koprogrammi peate lõpetama mõne ravimi võtmise ravimid(nii anaalselt suposiitide kujul kui ka suukaudselt, intravenoosselt jne), samuti mitte läbi viia uuringuid, kasutades abiaineid (vaseliin või kastoorõli, vismut, baarium);
5. Materjal tuleb võtta pärast spontaanset roojamist 4-5 juhuslikust kohast, asetades selle meditsiinilise spaatliga spetsiaalsesse plastnõusse, täites anuma maksimaalselt 1/3 ulatuses. Proov tuleb tarnida maksimaalselt 10 tunni jooksul pärast otsest kogumist, järgides säilitustingimusi külmkapis temperatuuril 4–6 kraadi.

Väljaheidete põhjalik diagnoosimine koprogrammis hõlmab uuringuid vastavalt järgmistele kriteeriumidele:

• Järjepidevus. Tavaliselt peaks see olema tihe, düsenteeriaga - pudrune või vedel;
• Vorm. Normaalse struktuuriga, homogeenne ja moodustunud, shigelloosiga - heterogeenne, osaliselt moodustunud, halva struktuuriga;
• Värv. Tavaliselt pruun, bakteriaalse kahjustusega – värvunud, mõnikord roosakas või punakas (verehüüvete olemasolul);
• Lima. Tavaliselt puudub, sooleinfektsiooniga - see võib olla suurtes kogustes;
• Veri. Tavaliselt seda ei esine, düsenteeriaga - on;
• Leukotsüüdid. Tavaliselt neid ei tuvastata, shigelloosiga diagnoositakse nähtavuse tsoonis kuni 50 rakku, peamiselt neutrofiilid;
• epiteelirakud. Tavaliselt on neid jälgi, bakteriaalse sooleinfektsiooni korral on neid palju.

Koprogrammi tulemused antakse patsiendile või arstile keskmiselt 3-4 päeva pärast materjali kohaletoimetamist.

Külvamine

Teiseks levinud meetodiks šigelloosi tuvastamiseks patsientide analüüsides peetakse bakterioloogilist külvi. Meetmete olemus seisneb tarnitud materjali üksikute osade paigutamises mitmesugustele toitainetele, mis on kohandatud bakteriaalsete infektsioonide erinevate patogeenide kasvuks. Kui kehas on shigella, siis konkreetsel "pinnasel" paljuneb see aktiivselt, moodustades uusi kolooniaid.

Seda tehnikat kasutatakse tavaliselt düsenteeria olemasolu näidanud esmaste testide kinnituseks, kuna bakposevi tulemused saavad teatavaks nädala pärast.

Lisaks patogeeni tuvastamisele see analüüs Samuti võimaldab teil valida kõige täpsema kitsalt sihitud toimega antibakteriaalse ravimi, mis hävitab nakkuse tõhusalt.

Tuvastatud proov jagatakse mitmeks osaks, mille järel lisatakse erinevad antibiootikumid ja kogu proovide rühm asetatakse termostaadi – proovid, kus kolooniad surevad kiiremini välja ja loetakse kõige edukamateks, mis võimaldab arstil asendada. antibakteriaalsed ravimid lai valik toimingud sisse konservatiivne ravi tõhusamatele.

Veri ja uriin düsenteeria korral

Muuda üldised analüüsid veri ja uriin on kompleksdiagnostika kohustuslik aspekt šigelloosi diagnoosi tuvastamise ja kinnitamise protsessis.

• Vere analüüs. Ülaltoodud tüüpi sooleinfektsiooniga võib aktiivse arengu perioodil tuvastada hematokriti ja immunoglobuliini indeksite langust. Samuti tuvastatakse leukotsütoos sageli neutrofiilide ülekaalu ja nende komponentide toksikoloogilise granulaarsuse, eosinofiilsete ja trombotsüütide komponentide kontsentratsiooni vähenemisega. Lisaks on võimalik lümfopeenia, lümfotsütoosi ilming, lümfotsüütide indeksi langus ja ESR suurenemine;
• Uriini analüüs. Selle vedela söötme diagnoosimisel šigelloosi tekke korral täheldatakse silindrite ja otsese valgu kontsentratsioonide olulist suurenemist, uriinis on sageli erütrotsüüte.

Seroloogiline uuring

Kaasaegne seroloogiline uuring on põhjalik analüüs Shigella antikehade kohta, mis võivad inimveres küllastuda. Selle protsessi põhjuseks on aktiivne töö immuunsussüsteem, mis vabastab oma plasmavalguühendeid, mis võitlevad nakkuslike bakteriaalsete kahjustustega.

Kõige täpsem ja kiireim meetod ülaltoodud elementide tuvastamiseks on nn kaudne hemaglutinatsioonireaktsioon. Meetodi olemus seisneb mitmesuguste nakkustüvede antigeenide paigutamises erütrotsüütide elementidele., misjärel lisatakse proovidele patsiendi vere seerumiekstrakt. AT positiivsed proovid algavad antikehade ja antigeenide koostoime reaktsioonid erütrotsüütide liimimisega, mis võimaldab tuvastada shigella.

Düsenteeria diferentsiaaldiagnostika

Üsna oluline etapp düsenteeria tuvastamisel ja diagnoosi kinnitamisel on diferentsiaaldiagnostika - professionaalne meetod teiste sarnaste sümptomitega haiguste ja patoloogiate "väljasõelumiseks", mis väljendub keha mürgistuses ja soolekahjustustes. Shigelloosi võrreldakse kõige sagedamini:

• salmonelloos. Sellel kahjustusel on peaaegu identsed ilmingud, kuid samal ajal on üldine joobeseisund nõrgalt väljendunud ja esineb ainult kustutatud kujul;
• Asherichioos. Seda tüüpi haigusi põhjustavad patogeenid, mis ei mõjuta mitte jämesoolt, vaid peensoolt. Mürgistuse ilmingud on veidi nõrgemad kui šigelloosi korral;
• koolera. Bacillus cholera mõjutab seedetrakti ja soolestikku, samas kui äärmiselt raske, sagedane ja ohtra kõhulahtisuse tõttu esineb märgatav dehüdratsioon. Väljaheites puudub nii lima kui veri, samas kui üldised mürgistuse sümptomid on nõrgemad kui düsenteeria korral;
• Jersinioos. Jersinioosiga täheldatakse lisaks raskele mürgistusele arvukalt elundite ja süsteemide (neerud, maks, kesknärvisüsteem jne) kahjustusi, millega kaasneb uriini väljavoolu häire, kollatõbi ja muud sündroomid.
• Rotaviiruse infektsioon. Lisaks sooltele mõjutab rotaviirusnakkus peaaegu alati ka ülemisi hingamisteid;
• Äge apenditsiit. Seda patoloogilist seisundit seostatakse kõhukelme ärrituse, temperatuuri olulise tõusuga, samuti tugeva valuga paremas alakõhus.

Bakteriaalse düsenteeria laboratoorne diagnoos

Düsenteeria on antroponootiline nakkushaigus, mida põhjustavad perekonna bakterid shigella, iseloomustatud haavandiline kahjustus jämesool ja üldine keha mürgistus. Düsenteeria (shigella) patogeenide klassifikatsioon on toodud tabelis 12, mikrobioloogilise diagnostika meetodid skeemil 13.

Tabel 13 Shigella klassifikatsioon

Shigella liigid Shigella serovarid Shigella dysenteriae 1-12 Shigella flexneri 1a, 1b, 2a, 2b, 3a, 3b, 4a, 4b, 5,6, vari X, var Y Shigella boydii 1-18 Shigella sonnei -

Skeem 12. Düsenteeria mikrobioloogiline diagnoos

Ekspressmeetodid (patogeense E. coli või selle saaduste märkimine uuritavas materjalis) DNA sondid või PCR Shigella DNA spetsiifilise fragmendi tuvastamiseks, RIF

Mikroskoopiline meetod düsenteeriaga ei kasutata Shigella morfoloogilise sarnasuse tõttu teiste enterobakteritega.

Bakterioloogiline meetod on düsenteeria laboratoorse diagnoosimise peamine meetod . Katsematerjal inokuleeritakse Petri tassides Ploskirevi ja Endo söötmetele, samuti akumulatsiooniks seleniitsöötmele, millega 16-18 tunni pärast tehakse uuesti külvamine näidatud tihedale toitekeskkonnale. Põllukultuure kasvatatakse termostaadis 37 0 C juures 18–24 tundi.

Teisel päeval uuritakse kolooniate olemust. Värvitud laktoosnegatiivsed siledad Shigella kolooniad subkultuuritakse ühel polüsüsivesikutest (Olkenitsky, Ressel, Kligler), et koguda puhas kultuur. 3. päeval võetakse arvesse polüsüsivesikute söötmel kasvu olemust ja materjal subkultuuritakse diferentsiaalsöötmel (Gissa jt) isoleeritud kultuuri biokeemiliseks tuvastamiseks. OPA määrab eraldatud kultuuri antigeense struktuuri, et identifitseerida see kuni liigi ja serovari tasemeni. 4. päeval võetakse arvesse biokeemilise aktiivsuse tulemused (tabel 14).

Tabel 14. Shigella biokeemilised omadused

Shigella liigid Käärimine indool glükoos laktoos mannitool dultsiit ksüloos ornitiin S. dysenteriae juurde - - - - - - S. flexneri juurde - juurde - - - - S. boydii juurde - juurde - ± - - S. sonnei juurde ± juurde kuni + ± juurde +

Nimetused: "k" - substraadi käärimine happe moodustumisega, "+" - märgi olemasolu, "-" - märgi puudumine, "±" - mittepüsiv märk.

Shigella, erinevalt Escherichiast, on liikumatud mikroorganismid, nad ei käärita laktoosi, lagundavad glükoosi ilma gaasi moodustumiseta ega dekarboksüleeri lüsiini. Serotüpiseerimiseks kandke klaasile esmalt RA seerumite seguga piirkonnas valitsevate Shigella liikide ja variantide vastu ning seejärel RA klaasile monoretseptorispetsiifiliste seerumitega. Samuti määratakse isoleeritud kultuuri tundlikkus polüvalentse düsenteerilise bakteriofaagi ja antibiootikumide suhtes. Epidemioloogilistel eesmärkidel määratakse isoleeritud Shigella fagovar ja colicinovar. Shigella üks omadusi on nende võime põhjustada merisigadel keratiiti (keratokonjunktivaalne test)

Seroloogiline meetod. Antikehade määramiseks düsenteeriaga (tavaliselt kroonilise vormiga) patsientide veres kasutatakse erütrotsüütide šigelloosi diagnostikaga RNHA-d. Diagnostilised tiitrid: Flexneri shigella täiskasvanutel - 1:400, alla 3-aastastel lastel - 1:100, üle 3-aastastel lastel - 1:200, teistel shigelladel - 1:200. Reaktsiooni korratakse reeglina vähemalt 7 päeva hiljem võetud vereseerumiga; diagnostiline väärtus on antikehade tiiter suurenenud neli või enam korda.

Ekspressmeetodid düsenteeria puhul - otsene ja kaudne RIF, koaglutinatsioonireaktsioon, ELISA, RNHA koos antikehade erütrotsüütide diagnostikaga shigella kiireks tuvastamiseks uuritavas materjalis (tavaliselt väljaheites), samuti PCR.

Praktilise tunni nr 28 metoodilised juhised õpilastele.

Tunni teema:

Sihtmärk: Mikrobioloogilise diagnostika meetodite uurimine, etiotroopne ravi ja šigelloosi ennetamine.

2. moodul . Spetsiaalne, kliiniline ja ökoloogiline mikrobioloogia.

5. teema: Düsenteeria mikrobioloogilise diagnoosimise meetodid.

Teema asjakohasus:Shigelloos on üldlevinud ja on tõsine probleem riikides, kus on madal sanitaarkultuuri tase ning suur alatoitluse ja kehva toitumise esinemissagedus. Arengumaades soodustavad nakkuse levikut halvad sanitaartingimused, kehv isiklik hügieen, ülerahvastatus ja suur laste osakaal elanikkonnas. Ukrainas on šigelloosi puhangud sagedasemad suletud rühmades selle taustal madal tase sanitaar- ja hügieen, näiteks lasteaedades ja lasteaedades, turismilaevadel, psühhiaatriakliinikutes või puuetega inimeste varjupaikades. Shigella on olnud reisijate ja turistide kõhulahtisuse põhjuseks.

Rühmahaiguste põhjuseks võib pidada shigella kandjatest kaubandustöötajate hooletusest saastunud toiduainete kasutamist. Kasutamisega on seotud puhanguid joogivesi, nakatumiseni viis ka saastunud veehoidlates ujumine. Toidu ja vee levikuteed näivad aga mängivat šigelloosi levikus väiksemat rolli võrreldes koolera ja kõhutüüfusega, mille puhul inimese nakatamiseks on tavaliselt vaja suuri annuseid patogeene. Arengumaades, kus haigus levib valdavalt inimeselt inimesele, võivad kandjad olla nakkusetekitaja oluliseks reservuaariks. Antibakteriaalseid ravimeid mitte võtnud patsientidel kestab shigella eritumine roojaga tavaliselt 14 nädalat, kuid vähesel osal juhtudest tunduvalt kauem.

Shigelloos - äge bakteriaalne infektsioon sooled, mida põhjustab üks neljast Shigella tüübist. Infektsiooni kliiniliste vormide spekter ulatub kergest vesisest kõhulahtisusest kuni raske düsenteeriani, mida iseloomustavad kõhukrambid, tenesmus, palavik ja üldise mürgistuse nähud.

Etioloogia.

Enterobacteriaceae perekonda kuuluv perekond Shigella (nimetatud K. Shiga järgi, kes 1898. aastal uuris üksikasjalikult ja kirjeldas bakteriaalse düsenteeria isoleeritud põhjustajat A. V. Grigorjevi poolt) koosneb rühmast lähedalt seotud bakteriliikidest, millel on järgmised omadused:

I. Morfoloogilised: shigella - väikesed ümarate otstega pulgad. Nad erinevad teistest Enterobacteriaceae perekonna esindajatest lipu puudumise (mitteliikuvate) poolest, neil pole eoseid ja kapsleid ning nad on gramnegatiivsed.

II. Kultuuriline: shigella on aeroobid või fakultatiivsed anaeroobid; optimaalsed kasvatustingimused temperatuur 37°C, pH 7,2-7,4. Nad kasvavad lihtsal toitainekeskkonnal (MPA, MPB) väikeste, läikivate, poolläbipaistvate, hallikate ümarate kolooniatena, mille suurus on 1,52 mm. S vormi. Erandiks on Sonne's Shigella, mis sageli dissotsieerub, moodustades suuri, lamedaid, häguseid, sakiliste servadega kolooniaid. R vormid (kolooniad näevad välja nagu " viinamarja leht”). Vedelas toitainekeskkonnas annab Shigella ühtlase hägususe, R vormid moodustavad sademe. Rikastusvedelikuks on seleniitpuljong.

III. Ensümaatiline: põhilised biokeemilised tunnused, mis on vajalikud shigella identifitseerimiseks puhaskultuuri eraldamisel, on järgmised:

1. gaasi moodustumise puudumine glükoosi kääritamise ajal;
2. vesiniksulfiidi tootmine puudub;
3. laktoosi fermentatsiooni ei toimu 48 tunni jooksul.

Kokku on need neli liiki jagatud ligikaudu 40 serotüübiks. Peamiste somaatiliste (O) antigeenide tunnuste ja biokeemiliste omaduste järgi eristatakse järgmisi nelja liiki või rühma: S. dysenteriae (rühm A, sisaldab: Grigoriev-Shigi, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs), S. flexneri (rühm B), S. boydii (rühm C) ja S. sonnei (rühm D).

Seoses mannitooliga jagunevad kõik shigellad lõhenevaks (Flexner, Boyd, Sonne shigella) ja mittelõhkuvaks (Grigoriev-Shiga, Stutzer-Schmitz, Large-Sachs shigella) mannitooliks.

IV. Patogeensuse tegurid:

1. Plasmiidide invasioonannab shigella võime põhjustada invasiooni koos järgneva rakkudevahelise leviku ja paljunemisega käärsoole limaskesta epiteelis;
2. toksiinide moodustumine: Shigellas on lipopolüsahhariidi endotoksiin, mis on keemiliselt ja biokeemiliselt sarnane teiste Enterobacteriaceae perekonna liikmete endotoksiinidega. Lisaks toodab I tüüpi S. dysenteriae (Shiga bacillus) eksotoksiini. Viimase avastamisest saadik on kindlaks tehtud, et sellel on enterotoksiini aktiivsus ja see võib põhjustada soolestiku sekretsiooni, samuti omab tsütotoksilist toimet sooleepiteelirakkudele; omab neurotoksilist toimet, mida täheldatakse šigelloosi põdevatel lastel. Shiga toksiin verre sattudes mõjutab koos submukoosse endoteeli kahjustusega ka neeru glomeruleid, mille tagajärjel tekib lisaks verisele kõhulahtisusele hemolüütiline ureemiline sündroom koos neerupuudulikkuse tekkega.

V. Antigeenne struktuur:Kõigil Shigelladel on somaatiline O-antigeen, mis sõltuvalt struktuurist jaguneb serovarideks.

VI. Vastupidavus: Temperatuur 100 0 C tapab Shigella koheselt. To madalad temperatuurid Shigella püsib jõevees stabiilsena kuni 3 kuud, juur- ja puuviljadel kuni 15 kuud.Soodsates tingimustes on Shigella võimeline paljunema toiduained(salatid, vinegretid, keedetud liha, hakkliha, keedetud kala, piim ja piimatooted, kompotid ja tarretis), eriti Shigella Sonne.

Epidemioloogia.

1. Nakkuse allikas:Isik, kes põeb šigelloosi ägedaid ja kroonilisi vorme; bakterikandja.

2. Edastamise viisid:

• Toit (peamiselt S. sonnei jaoks)
• Vees (peamiselt S. flexneri jaoks)
• Võtke ühendust leibkonnaga (peamiselt S. dysenteriae puhul)

3. Sissepääsu väravinfektsioon teenib seedetrakti.

Patogenees ja patoloogilised muutused.

Allaneelamisel koloniseerib Shigella peensoole ülaosa ja paljuneb seal, põhjustades võib-olla suurenenud soolte sekretsiooni. varajases staadiumis infektsioonid. Seejärel tungivad Shigella läbi M-rakkude submukoosse, kus nad neelavad makrofaagid. See viib mõnede shigella surmani, mille tulemusena vabanevad põletikulised vahendajad, mis käivitavad põletiku submukoosas. Fagotsüütide apoptoos võimaldab teisel Shigella osal ellu jääda ja sisse tungida epiteelirakud limaskesta läbi basaalmembraani. Enterotsüütide sees paljuneb shigella ja levib rakkude vahel, mille tulemuseks on erosioonide teke. Shigella suremisel vabanevad shiga ja shiga sarnased toksiinid, mille toime viib mürgistuseni. Limaskesta kahjustusega kaasneb turse, nekroos ja hemorraagia, mis põhjustab vere väljanägemist väljaheites. Lisaks mõjutab toksiin kesknärvisüsteemi, mis põhjustab troofilisi häireid.

Kliinilised ilmingud.

Shigelloosi kliiniliste ilmingute spekter on väga lai alates kergest kõhulahtisusest kuni raske düsenteeriani, millega kaasneb kramplik kõhuvalu, tenesmus, palavik ja üldine mürgistus.

Inkubatsiooniperioodulatub mitmest tunnist 7 päevani, enamasti on see 2-3 päeva.Esialgu on patsientidel vesine väljaheide, palavik (kuni 41 ° C), hajus kõhuvalu, iiveldus ja oksendamine. Lisaks kurdavad patsiendid lihasvalu, külmavärinaid, seljavalu ja peavalu. Lähipäevadel alates haiguse algusest ilmnevad düsenteeria tunnused - tenesmus, sagedane, napp, verine-limaskesta väljaheide. Kehatemperatuur väheneb järk-järgult, valu võib lokaliseerida kõhu alumises kvadrantides. Kõhulahtisuse intensiivsus saavutab maksimumi umbes 1. haigusnädala lõpus. Verise väljaheitega düsenteeria esineb sagedamini ja ilmneb varem põhjustatud haigusest S. dysenteriae I tüüpi kui teiste šigelloosi vormide puhul.

Šigelloosi korral Sonne iseloomulik on haiguse leebem kulg (gastroenteraalne või gastroenterokoliitiline variant). Palavikuperiood on lühem, mürgistuse tagajärjed on lühiajalised, destruktiivsed muutused soole limaskestas ei ole tüüpilised.

Shigellosis FlexnerPõhimõtteliselt on iseloomulikud kaks kliinilise kulgemise varianti - gastroenterokoliit ja koliit.

Soolevälised tüsistused šigelloosi korralharuldane:

1. Shigelloosi tüsistus võib olla soole düsbakterioosi areng.
2. Lisaks peavaludele võivad esineda meningiidi ja krampide tunnused.
3. S. dysenteriae I tüüpi infektsiooni korral on kirjeldatud perifeerse neuropaatia juhtumeid ja S. boydii gastroenteriidi puhangu ajal on teatatud Guillain-Barré sündroomi (polüneuriit) juhtudest.
4. Välja arvatud düstroofiat põdevad lapsed, on patogeeni hematogeenne levik suhteliselt haruldane, samuti on kirjeldatud šigelloosi abstsesside ja meningiidi juhtumeid.
5. Shigelloosi korral on võimalik Reiteri sündroomi areng koos artriidi, steriilse konjunktiviidi ja uretriidiga, tavaliselt ilmneb see 1-4 nädala pärast alates kõhulahtisuse algusest patsientidel.
6. Lastel kaasneb šigelloosiga hemolüütiline ureemiline sündroom, mis on sageli seotud leukeemiataoliste reaktsioonide, raske koliidi ja ringleva endotoksiiniga, kuid baktereemiat tavaliselt ei tuvastata.
7. Väga harva põhjustab mädast keratokonjunktiviiti saastunud sõrmedega eneseinfektsiooni tagajärjel silma sattunud shigella.
8. Hüpovoleemiline šokk ja DIC.
9. Peritoniit, soole gangreen, sooleverejooks.

Immuunsus: Inimestel on loomulik resistentsus šigelloosi suhtes. Pärast haigust ei ole immuunsus stabiilne ja pärast šigelloosi Sonne praktiliselt puudub. Shigella Grigoriev Shigi põhjustatud haigusega tekib stabiilsem antitoksiline immuunsus. Peamine roll nakkuse eest kaitsmisel kuulub sekretoorsele IgA , mis takistab intraepiteliaalsete lümfotsüütide adhesiooni ja tsütotoksilistest antikehadest sõltuvat aktiivsust, mis koos sekretoorse IgA tapa shigella.

Diagnostika ja laboratoorsed uuringud.

Uuringu eesmärk: shigella tuvastamine ja tuvastamine diagnoosimiseks; bakterikandjate tuvastamine; shigella tuvastamine toiduainetes.

Uurimismaterjal: väljaheited, sektsioonmaterjal, toiduained.

Diagnostilised meetodid:mikrobioloogiline (bakterioloogiline, mikroskoopiline (luminestseeruv); seroloogiline; bioloogiline; allergiatest.

Uurimise edenemine:

1 õppepäev:Kultuurid tuleks teha värskelt eritunud väljaheidetest või kasutades rektaalseid tampooniproove (rektaalne toru); sobivate tingimuste puudumisel tuleb materjal paigutada transpordikeskkonda. Selleks tuleks kasutada enteroagarit (MacConkey või Shigella-Salmonella sööde), mõõdukalt selektiivset ksüloos-lüsiin-desoksükolaadi agarit, KLD) ja toitepuljongit (seleniitpuljong). Kui kogumise ja inokuleerimise vaheline aeg ületab 2 tundi, tuleks kasutada säilituslahuseid: 20% sapipuljongit, kombineeritud Kauffmanni söödet.

• Glütseriini segus olevad väljaheited emulgeeritakse, tilk emulsiooni kantakse söötmele ja hõõrutakse spaatliga. Shigella diferentsiaalsöötmed on Ploskirev, Endo ja EMS söötmed (eosiinmetüleensiniagar). Ploskirevi sööde (söötme koostis sisaldab: MPA, laktoos, soolad sapphapped ja indikaator briljantroheline) on ka Shigella jaoks valikaine, sest pärsib Escherichia coli kasvu.
• Paralleelselt otsekülviga külvatakse kogutud materjal rikastussöötmele - seleniitpuljongile.
• Kõik põllukultuurid asetatakse termostaadi.

2. õppepäev:

• Tassid eemaldatakse termostaadist, kahtlased kolooniad sõelutakse Resseli söötmega (toitekeskkond, mis sisaldab: agar-agarit, Andrede indikaatorit, 1% laktoosi, 0,1% glükoosi) ja mannitoolil. Külvamine toimub löökidena kaldpinnale ja süstimisega agarikolonni. Inokuleeritud Resseli sööde asetatakse 18-24 tunniks termostaati (paralleelselt külvatakse seleniitsöötmest diferentsiaaldiagnostika söötmesse).
• Tee määrded (Gram-peitsi), mikroskoop.
• Valmistage valmistised "rippuvad" või "purustatud" tilk.
• Indikatiivse RA avaldus polüvalentse diagnostilise šigelloosi seerumiga.
• Kahtlaste kolooniate külvamine agari kaldega.

Uuringu 3. päev:

• Agar-kaldmaterjali mikroskoopia.
• Kultuure, mis Resseli söötmel laktoosi ei käärinud, uuritakse edasi: tehakse määrded (Gram-värvimine), kontrollitakse kultuuri puhtust. Gramnegatiivsete varraste juuresolekul inokuleeritakse Hiss söötme, puljong indikaatorpaberitega (indooli ja vesiniksulfiidi tuvastamiseks) ja lakmuspiimaga.
• Inokuleeritud sööde asetatakse 18-24 tunniks termostaadi.

Uuringu 4. päev:

• Lühikese "kireva sarja" arvestus.
• Kultuurid, mis on kahtlased nende ensümaatiliste ja kultuuriliste omaduste poolest Shigella vastu, allutatakse seroloogilisele identifitseerimisele. RA seadistamine klaasile (tüüpiline ja rühm diagnostilised seerumid). Kasutusele võetud RA seadistamine.

Rakendage šigelloosi kiirendatud meetodeidfluorestsentsmikroskoopia ja bioloogiline proov(Shigella virulentsete tüvede sattumisel konjunktiivikotti (alumise silmalau alla) merisigadel tekib konjunktiviit 1. päeva lõpuks).

Allergiline test Zuverkalovintradermaalne allergiline test düsenteeriaga (0,1 ml düsenteeria sisseviimine küünarvarre positiivne reaktsioon infiltratsiooni ja hüpereemia korral). Allergoloogilist diagnostikat praegu praktiliselt ei kasutata. Tsurvekalovi test ei erine spetsiifilisuse poolest, positiivseid reaktsioone registreeritakse mitte ainult šigelloosi, vaid ka salmonelloosi, escherichioosi, jersinioosi ja teiste ägedate sooleinfektsioonide korral ning mõnikord ka tervetel inimestel.

Ravi ja ennetamine.Bakteriofaagi kasutatakse raviks ja ennetamiseks vastavalt epidemioloogilistele näidustustele. suukaudne manustamine, antibiootikumid pärast antibiogrammi määramist; düsbakterioosi korral probiootikumide preparaadid mikrofloora korrigeerimiseks. Vedelike ja elektrolüütide kaotuse täiendamiseks - glükoosi-elektrolüüdi lahuse sisseviimine sees.

Konkreetsed eesmärgid:

Tõlgendada šigelloosi patogeenide bioloogilisi omadusi.

Tutvuge Shigella klassifikatsiooniga.

Õppige tõlgendama patogeneetilisi mustreid nakkusprotsess põhjustatud Shigella.

Määrata mikrobioloogilise diagnostika, etiotroopse ravi ja šigelloosi ennetamise meetodid.

Suuda:

• Inokuleerige katsematerjal toitekeskkonnale.
  • Valmistage määrded ja Grami peits.
  • Tehke preparaatide mikroskoopia sukelmikroskoobi abil.
  • Analüüsige Shigella morfoloogilisi, kultuurilisi ja ensümaatilisi tunnuseid.

Teoreetilised küsimused:

1. Shigelloosi patogeenide tunnused. bioloogilised omadused.

2. Shigella klassifikatsioon. Aluspõhimõtted.

3. Epidemioloogia, patogenees ja kliinilised tunnusedšigelloos.

4. Laboratoorsed diagnostikad.

5. Shigelloosi ravi ja ennetamise põhimõtted.

Praktilised ülesanded, mida klassiruumis sooritatakse:

1. Shigelloosi patogeenide puhaskultuuride näidispreparaatide mikroskoopia.

2. Töö šigelloosi bakterioloogilise diagnoosi alal: fekaalikultuuride uurimine Ploskirevi söötmel.

3. Kahtlaste kolooniate subkultuur Resseli söötmel ja BCH-l indooli moodustumise ja H määramiseks 2 S .

4. Näidispreparaatide visandamine ja šigelloosi mikrobioloogilise diagnostika skeem tunni protokollis.

5. Protokolli registreerimine.

Kirjandus:

1. Korotyaev A.I., Babichev S.A., meditsiiniline mikrobioloogia, immunoloogia ja viroloogia / Õpik meditsiiniülikoolidele, Peterburi "Erikirjandus", 1998. - 592lk.

2. Timakov V.D., Levašev V.S., Borisov L.B. Mikrobioloogia / Õpik.-2. väljaanne, parandatud. Ja täiendav - M .: Meditsiin, 1983, -512s.

3. Pjatkin K.D. Krivoshein Yu.S. Mikrobioloogia koos viroloogia ja immunoloogiaga.- Kiiev: In ja shcha kool, 1992. - 431s.

4. Meditsiiniline mikrobioloogia / Toimetanud V.I. Pokrovski.-M.: GEOTAR-MED, 2001.-768s.

5. Juhend praktiline treening mikrobioloogias, immunoloogias ja viroloogias. Ed. M.P. Zõkov. M. "Meditsiin". 1977. 288 lk.

6. Cherkes F.K., Bogoyavlenskaya L.B., Belskan N.A. Mikrobioloogia. / Toim. F.K. tšerkesslane. M.: Meditsiin, 1986. 512 lk.

7. Loengukonspektid.

Lisakirjandus:

1. Makijarov K.A. Mikrobioloogia, viroloogia ja immunoloogia. Alma-Ata, "Kasahstan", 1974. 372 lk.

2. Titov M.V. Nakkushaigused. - K., 1995. 321s.

3. Šuvalova E.P. nakkushaigused. - M.: Meditsiin, 1990. - 559 lk.

4. BME, 1., 2., 7. kd.

5. Pavlovich S.A. Meditsiiniline mikrobioloogia graafikutena: Proc. hüvitis arstiabi eest seltsimees. Mn.: Vysh. kool, 1986. 255 lk.

Lühijuhised tööks praktilises tunnis.

Tunni alguses kontrollitakse õpilaste tunniks ettevalmistamise taset.

Iseseisev töö seisneb shigella klassifikatsiooni uurimises, shigelloosi patogeneetiliste ja kliiniliste tunnuste skeemi analüüsimises. Šigelloosi laboratoorse diagnostika meetodite uurimine. Õpilased viivad läbi biomaterjali külvi toitekeskkonnale. Seejärel valmistatakse mikropreparaadid, värvitakse need Grami järgi, tehakse mikroskoopia, visandatakse mikropreparaadid ja antakse vajalikud selgitused. Iseseisva töö koosseisu kuulub ka näidispreparaatide mikroskoopia ja nende visandamine tunni protokollis.

Tunni lõpus viiakse läbi kontrolltöö ja iga õpilase iseseisva töö lõpptulemuste analüüs.

Praktilise tunni tehnoloogiline kaart.

p/p	Etapid	Aeg minutites	Õppimise viisid	Varustus	Asukoht
	Tunni ettevalmistamise algtaseme kontrollimine ja parandamine		Algtaseme testülesanded	Tabelid, atlas	õpperuum
	Iseseisev töö		Loogilise struktuuri graafik	Sukeldusmikroskoop, värvained, slaidid, bakterioloogilised aasad, toitekeskkond, Ploskirevi sööde, Resseli sööde, "kirju Hissi seeria"
	Materjali valdamise enesekontroll ja korrigeerimine		Sihipärased õppeülesanded
	Testi kontroll		Testid
	Töötulemuste analüüs

Sihipärased õppeülesanded:

1. Ägedate sooleinfektsioonidega lapselt saadi väljaheited (väljaheide koguti rektaalse toruga), mis sisaldas lima ja mäda. Millist kiirdiagnostika meetodit tuleks kasutada?

A. ELISA.

b. REEF.

C. RA.

D. RSK.

E. RIA.

1. Düsenteeria tekitaja eraldati ägeda sooleinfektsiooniga haige lapselt. Milline morfoloogilised tunnused patogeenile iseloomulik?

A . Gramnegatiivne mitteliikuv varras.

B . Gram-positiivne liigutatav varras.

C . Moodustab toitainekeskkonnas kapsli.

D . Moodustab väliskeskkonnas eoseid.

E . Gram-positiivsed streptobatsillid.

3. Patsiendil, kes haigestus kolm päeva tagasi ja kaebab temperatuuri 38 °C, kõhuvalu, sagedase lahtise väljaheite ja vere olemasolu üle väljaheites, diagnoosis arst kliiniliselt bakteriaalse düsenteeria. Millist mikrobioloogilise diagnostika meetodit tuleks sel juhul kasutada ja millist materjali võtta patsiendilt diagnoosi kinnitamiseks?

A. Bakterioskoopiline cal.

B. Bakterioloogiline kal.

C. Bakterioskoopiline veri.

D. Bakterioloogiline uriin.

E. Seroloogiline veri.

4. Shigella Sonne eraldati patsiendi väljaheitest. Mida on vaja teha täiendavad uuringud nakkuse allika kindlakstegemiseks?

A . Viia läbi isoleeritud puhaskultuuri faagitüüpimine.

B . Määrake antibiogramm.

C . Seadistage sadestamise reaktsioon.

D . Seadistage komplemendi sidumise reaktsioon.

E . Seadistage neutraliseerimisreaktsioon.

5. Varem järvevett joonud turistide grupist (27 inimest) tekkisid kahe päeva möödudes ägeda kõhulahtisuse sümptomid 7 inimesel. Millist materjali tuleks saata bakterioloogia laborisse, et tuvastada selle haiguse etioloogia?

A. Vesi, patsientide väljaheide.

B. Vesi, haigete veri.

C. Toiduained.

D. Uriin.

E. Flegm.

6. Ägedate sooleinfektsioonide mikroskoopilise diagnostikameetodi oluliseks puuduseks on selle ebapiisav teabesisaldus, mis on tingitud perekonna bakterite morfoloogilisest identiteedist. Enterobakterid . Mis muudab selle meetodi informatiivsemaks?

A . Radioimmunoanalüüs.

B . Coombsi reaktsioon.

C . Seotud immunosorbentanalüüs.

D . opsonisatsiooni reaktsioon.

E . Immunofluorestsentsreaktsioon.

7. 29-aastane patsient viidi haiglasse oksendamise, kõhulahtisuse ja tenesmihoogudega. Väljaheited koos lima tükkide ja vere seguga. Ploskirevi söötmel asuvatest kolooniatest pärit bakterite bakterioloogilisel uuringul leiti liikumatud gramnegatiivsed pulgad, mis ei käärita laktoosi. Nimetage nakkusprotsessi põhjustaja.

A. Shigella flexneri.

b. Vibrio eltor.

C. E. Coli.

D. Proteus mirabilis.

E. Salmonella enteritidis.

8. Mikrobioloogialaborisse toimetati salat, mis on oletatavasti ägeda soolenakkuse põhjustaja. Millist toitainekeskkonda kasutatakse esmaseks inokuleerimiseks?

A . Kollase-soola agar, MPB.

b. MPA, MPB.

C . Seleniitpuljong, Endo, Ploskireva.

D . Maksapuljong, Roux medium.

E . Veriagar, aluseline agar.

9. Hakkliha mikrobioloogilises uuringus eraldati perekonda Shigella kuuluvad bakterid. Milliste mikroobide omaduste uurimine viis sellise järelduseni?

A . Kultuuriline, tooniline.

B . Antigeenne, kultuuriline.

C . Sahharolüütiline, proteolüütiline.

D . Antigeenne, immunogeenne.

E . Morfoloogiline, antigeenne.

10. Ägeda sooleinfektsiooni sümptomitega patsiendilt võetud oksendamise mikroskoopilisel uurimisel tuvastati liikumatud pulgad. Millises äigepreparaadis või preparaadis saaks uurida bakterite liikuvust?

A . Grami värviga määritud määrdumisel.

B . Tsil - Nelseni järgi värvitud määrdis.

C . Ettevalmistuses "paks tilk".

D . Neisseri plekiga määrdunud.

E . Valmistises "purustatud tilk".

Algoritm laboritööd:

1. Shigella bioloogiliste omaduste uurimine.

2. Shigella klassifikatsiooniga tutvumine.

3. Šigelloosi patogeneetiliste ja kliiniliste ilmingute skeemi analüüs.

4. Šigelloosi laboratoorse diagnostika meetodite uurimine.

5. Shigelloosi ravi ja ennetamise põhiprintsiipide õppimine.

1. Fikseeritud preparaatide valmistamine bakterikultuurist.
2. Värvimine mikropreparaadid Grami poolt.
3. Mikropreparaatide mikroskoopia Koos kasutades sukelmikroskoobi, nende analüüs ja visandamine tunni protokollis.
4. Mi Shigella puhaskultuuride demonstratsioonipreparaatide kroskoopia ja analüüs.
5. Protokollis näidispreparaatide visandamine ja šigelloosi laboratoorse diagnostika skeem.
6. Protokolli koostamine.