UROGENITAALNE KLAMÜDIOOS

Materjal uurimistööks Kraapimine kusiti või emakakaela kanalist, eesnäärme sekreet, uriinisete. Vastsündinutel kasutatakse uurimismaterjalina silma sidekesta ja neelu tagumise seina kraapimist. Tüdrukutel kasutatakse uurimismaterjalina häbeme kraapimist, poistel uriini.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali võtmine ja selle transportimise tingimused 10 päeva enne materjali uurimist võtmist on vaja lõpetada keemiaravi ravimite ja meditsiiniliste protseduuride võtmine.

Ureetrast materjali võtmise tunnused

• enne materjali võtmist soovitatakse patsiendil hoiduda urineerimisest 1,5-2 tundi;
• vahetult enne materjali võtmist tuleb ureetra välist avaust töödelda steriilse soolalahusega niisutatud tampooniga;
• mädase eritise olemasolul soovitatakse kraapimist teha 15-20 minutit pärast urineerimist, sekreedi puudumisel on materjali võtmiseks vaja sondi abil ureetrat masseerida;
• naistel masseeritakse see enne sondi ureetrasse sisestamist häbemeliigesele;
• naiste kusitisse sisestatakse sond 1,0-1,5 cm sügavusele, meestel - 3-4 cm ja seejärel tehakse mitu pöörlevat liikumist; lastel võetakse uurimismaterjali ainult ureetra välisavast;

Emakakaela kanalist materjali võtmise tunnused

• enne materjali võtmist on vaja lima eemaldada vatitupsuga ja seejärel töödelda emakakaela steriilse soolalahusega;
• sond sisestatakse emakakaela kanalisse 0,5-1,5 cm sügavusele;
• emakakaela kanali erosioonide korral tuleb neid töödelda steriilse soolalahusega ja materjal võtta terve ja muutunud koe piiril;
• sondi eemaldamisel on vaja täielikult välistada selle kokkupuude tupe seintega;

Pärast materjali võtmist lastakse sond DNA-EXPRESS transpordisöötmega katseklaasi. Pärast sondi sisestamist transpordikeskkonda pööratakse seda mitu korda ja eemaldatakse seejärel torust. Viaal on suletud ja märgistatud. Kui bioloogilise materjali transportimise aeg alates võtmise hetkest kuni selle laborisse toimetamiseni on pikem kui 2 tundi, tuleb toru külmutada temperatuuril -20 0 C. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakott. Külmutatud bioloogilist materjali võib säilitada mitte rohkem kui 2 nädalat.

Eesnäärme saladuse võtmise tunnused

Enne eesnäärme saladuse võtmist töödeldakse sugutipea peenist steriilse vatitikuga, mis on niisutatud soolalahusega. Eesnäärme saladus võetakse pärast pärasoole eelnevat eesnäärme massaaži. Arst teeb survemassaaži mitmete jõuliste liigutustega põhjast ülespoole. Seejärel pressitakse koopaosast välja eesnäärme saladus. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakotis.

Uriini võtmise (kogumise) tunnused

Uriini kogutakse hommikul tühja kõhuga pärast magamist või mitte varem kui 2-3 tundi pärast viimast urineerimist. Hommikune uriin settib 1 tund, seejärel sulandub ettevaatlikult, jättes alles ainult alumise osa - umbes 10 ml. See jääk valatakse tsentrifuugitorusse ja tsentrifuugitakse. Seejärel tühjendatakse supernatant uuesti ja sade (ilma vedelikuta) viiakse sondiga PCR-torusse.

Uriini ei tohi hoida külmkapis ega sügavkülmas, kuni sete on tekkinud.

Neelu tagumisest seinast materjali võtmise tunnused

Ühekordselt kasutatav sond sisestatakse pehme suulae taha ninaneelu ja juhitakse mööda neelu tagumist seina. Pärast materjali võtmist lastakse sond DNA-EXPRESS transpordisöötmega katseklaasi. Pärast sondi sisestamist transpordikeskkonda pööratakse seda mitu korda ja eemaldatakse seejärel torust. Viaal on suletud ja märgistatud. Kui bioloogilise materjali transportimise aeg alates võtmise hetkest kuni selle laborisse toimetamise hetkeni on üle 2 tunni, siis tuleb toru külmutada temperatuuril -200C. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakotis. Külmutatud bioloogilist materjali võib säilitada mitte rohkem kui 2 nädalat.

Silma konjunktiivist materjali võtmise tunnused

Rohke mädase eritise korral eemaldatakse see soolalahuses niisutatud steriilse vatitikuga. Alumise silmalau sisepinnalt võetakse kraapimine, liikudes silma sisemise kantuse poole. Kraapimist tehes tuleb silmalaugust kätega kinni hoida, et pilgutades ei puutuks ripsmed sondi vastu.

Pärast materjali võtmist lastakse sond DNA-EXPRESS transpordisöötmega katseklaasi. Pärast sondi sisestamist transpordikeskkonda pööratakse seda mitu korda ja eemaldatakse seejärel torust. Viaal on tihedalt suletud. Kui bioloogilise materjali transportimise aeg alates võtmise hetkest kuni selle laborisse toimetamise hetkeni on üle 2 tunni, siis tuleb toru külmutada temperatuuril -200C. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakotis. Külmutatud bioloogilist materjali võib säilitada mitte rohkem kui 2 nädalat.

UROGENITAALNE MÜKOPLASMOOS

Uurimismaterjal Eraldatav kusiti, tupp, emakakaela kanal, uriin (hommikuse esimese ja keskmise portsjoni tsentrifuug), eesnäärme sekreet, sperma.

Tupest materjali võtmise tunnused

Materjal tuleb võtta enne käsitsi läbivaatust. Enne manipuleerimist võib peeglit niisutada kuuma veega, antiseptikumide kasutamine peegli töötlemisel on vastunäidustatud. Tupevoolus kogutakse steriilse ühekordse sondiga tagumisest alumisest forniksist või limaskesta patoloogiliselt muutunud piirkondadest ja asetatakse DNA-EXTPESS transpordisöötmega katseklaasi. Tüdrukutel võetakse materjal tupe vestibüüli limaskestalt ja mõnel juhul - tupe tagumisest forniksist läbi neitsinaha rõngaste. Pärast sondi sisestamist transpordikeskkonda pööratakse seda mitu korda ja eemaldatakse seejärel torust. Viaal on suletud ja märgistatud. Kui bioloogilise materjali transportimise aeg alates võtmise hetkest kuni selle laborisse toimetamise hetkeni on üle 2 tunni, siis tuleb toru külmutada temperatuuril -200C. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakotis. Külmutatud bioloogilist materjali võib säilitada mitte rohkem kui 2 nädalat.

GONORRHEA

Materjal uurimistööks Eemaldatav ureetra, emakakaela kanal, eesnäärme sekreet, uriinisete.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali võtmine ja transportimise tingimused Vt urogenitaalne klamüüdia.

10 päeva enne materjali võtmist uuringu jaoks on vaja lõpetada keemiaravi ravimite ja meditsiiniliste protseduuride võtmine. Naiste uurimistöö materjali tuleks võtta enne menstruatsiooni või 1-2 päeva pärast selle lõppu. Enne materjali võtmist on vaja hoiduda 3-4 tunni jooksul urineerimisest ja seksuaalvahekorrast. Naised läbivaatuse eelõhtul ei tohiks läbi viia väliste suguelundite tualettruumi ja dušši. Uuritav materjal peab olema vere lisanditeta. Uurimiseks ei tohiks võtta vabalt voolavat ureetra eritist. Eesnäärme saladust tuleks võtta alles pärast prostatiidi ägedate ilmingute lõppu. Aeglase ja kroonilise gonorröa korral on enne uuringut vajalik provokatsioon.

Gonorröa provokatsioonimeetodid:

• bioloogiline: gonovatsiini (500 miljonit mikroobset keha) manustamine täiskasvanutele üks kord intramuskulaarselt, üle 3-aastastele lastele - 100-200 miljonit mikroobset keha; alla 3-aastastele lastele ei ole gonovatsiini kasutuselevõtt soovitatav;
• termiline: 3-päevane diatermia kasutamine elektroodide abdominaal-tupe-sakraalse paigutusega 30, 40, 50 minutiks või induktotermia 10, 15, 20 minutiks; kõige parem on võtta materjal ureetrast, emakakaela kanalist 1 tund pärast iga soojendamist;
• mehaaniline: metallkorgi paigaldamine naiste emakakaelale 4 tunniks, ureetra massaaž meestel 10 minutiks;
• toitumine: soolase, vürtsika toidu ja alkoholi tarbimine 24 tundi enne uuringut.

Materjal võetakse pärast provokatsiooni ja 24-48-72 tunni pärast.

Kõige usaldusväärsemate tulemuste saamiseks on vaja läbi viia korduvad uuringud.

TRIHHOMONIAAS

Uurimismaterjal Eraldatav kusiti (meestel), tupest, eesnäärme sekreedist.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali võtmine ja selle transportimise tingimused Vt urogenitaalne klamüüdia, urogenitaalne mükoplasmoos.

TUBERKULOOS (ekstrapulmonaalsed kohad)

Uurimismaterjal Uriin, tampoonid emakakaela kanalist, kusiti.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali võtmine ja selle transportimise tingimused 10 päeva enne materjali uurimist võtmist on vaja lõpetada keemiaravi ravimite ja meditsiiniliste protseduuride võtmine. Vt urogenitaalne klamüüdia.

HINGAMISTEED HAIGUSED, MIS SEOTUD Mycoplasma pneumoniae

Uurimismaterjal Nasofarüngeaalne tampoon.

Ninaneelust tampooni võtmise tunnused Tampoon võetakse tühja kõhuga või mitte varem kui 2-4 tundi pärast söömist. Materjali võtmisel on vajalik hea valgustus, patsient istub vastu valgusallikat, keelejuur surutakse spaatliga alla, materjal võetakse steriilse sondiga, puudutamata keelt, põse limaskesta ja hambaid ning langetatakse DNA-EXPRESS transpordisöötmega katseklaasi. Pärast materjali võtmist lastakse sond DNA-EXPRESS transpordisöötmega katseklaasi. Pärast sondi sisestamist transpordikeskkonda pööratakse seda mitu korda ja eemaldatakse seejärel torust. Toru on suletud. Kui bioloogilise materjali transportimise aeg alates võtmise hetkest kuni selle laborisse toimetamise hetkeni on üle 2 tunni, siis tuleb toru külmutada temperatuuril -200C. Bioloogilise materjali transportimine peaks toimuma ainult külmakotis. Külmutatud bioloogilist materjali võib säilitada mitte rohkem kui 2 nädalat.

SEADEGA SEOTUD HAIGUSED (gastriit, mao- või kaksteistsõrmiksoole haavand) Helicobacter pylori

Materjal uurimistööks Mao antrumi biopsiad, kaksteistsõrmiksoole biopsiad, igemete biopsiad, määrded parodonditaskust.

Biopsia materjali võtmise tunnused

Biopsia materjal võetakse endoskoopilise uuringu käigus. Enne H. pylori ravi alustamist võetakse mao antrumist biopsiaproov. Ravi jälgimisel võetakse mao kehast biopsiaproov mitte varem kui 4 nädalat pärast Helicobacter-vastast ravi. Võetud biopsiaproov lastakse steriilsesse kuiva katseklaasi (eppendorf) ja toimetatakse kohe laborisse. Pikemaks säilitamiseks on võimalik võetud biopsiamaterjal külmutada temperatuuril -20 0 С.

Igemete biopsiaproovide võtmise tunnused, parodonditaskust ja süljest määrdumised

Igemepõletiku ja periodontaalse haigusega patsientidelt, kellel on anamneesis kaksteistsõrmiksoole patoloogia, võetakse igemete biopsiamaterjal, parodonditasku määrded ja sülg.

Võetud biopsiaproov lastakse steriilsesse kuiva katseklaasi (eppendorf) ja toimetatakse kohe laborisse. Pikemaks säilitamiseks on võimalik võetud biopsiamaterjal külmutada temperatuuril -20 0 С.

Periodontaalsest taskust saadud määrded kogutakse soolalahusega steriilsesse katseklaasi (eppendorf). Sel juhul võib katseklaase hoida külmkapis (+4 0 C - +6 0 C) mitte rohkem kui 12 tundi ja neid transporditakse külmkapis.

Viirusnakkused

Herpes simplex viirus II; tsitomegaloviirus; H. papiloma viirus 16, 18

Uuritud materjal - määrded

Herpesinfektsiooni korral on kraapimine kõige parem võtta suguelundite kahjustustest (vesiikulid, haavandid). Suguelundite kahjustuste puudumisel võetakse emakakaela kanalist kraapimine. Tsütomegaloviiruse infektsiooni diagnoosimisel võib uuringuteks kasutada määrdumist neelu tagumisest seinast, tupest, ureetrast ja emakakaelakanalist pärit kraapimist, sülge ja tserebrospinaalvedelikku. Inimese papilloomiviiruse infektsiooni diagnoosimisel võetakse tampooni ninaneelust, silma sidekestast, kraapimine emakakaelakanalist, emakakaelast, s.o. limaskestad (keratiniseerumata epiteel).

Bioloogilise materjali võtmine Bioloogilise materjali võtmine tuleks võimalusel läbi viia nakkuse ägenemise perioodil. Vt urogenitaalne klamüüdia, urogenitaalne mükoplasmoos.

Herpes simplex viirus I; Herpes simplex viirus II; Herpes simplex viirus VI
tsitomegaloviirus; Epstein Barri viirus

Uuritud materjal Põlisveri.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali võtmine ja transportimise tingimused Uuringuks on soovitatav võtta verd tühja kõhuga.

Venoosne veri koguses 1-1,5 ml võetakse steriilsesse katseklaasi (eppendorf) mahuga 1,5 ml EDTA lahusega. Katseklaasi verega võib hoida külmkapis (+4 0 C - +6 0 C) mitte kauem kui 24 tundi. Ärge külmutage toru. Uuring viiakse läbi plasmast ja vererakkudest.

HBV-DNA; HBV-DNA kontsentratsiooni määramine konkureeriva PCR abil
HCV-RNA (poolkvantitatiivne hindamine) + anti-HCV; HCV-RNA koos HCV+ anti-HCV genotüpiseerimisega; G-hepatiit; TTV-DNA

Uuritav materjal Vereseerum.

Patsiendi ettevalmistamine, bioloogilise materjali kogumine ja tingimused selle transportimiseks Veenivere kogumise ja seerumi valmistamise kohta vt peatükki homoonide kontsentratsiooni määramine ELISA abil. Uuritakse seerumit, mis ei sisalda erütrotsüütide lisandeid. Kui analüüsitavat vereproovi on vaja pikema aja jooksul säilitada (ainult B-, C-, G-hepatiidi korral), on vaja võtta 1 ml seerumit või vereplasmat ja hoida seda temperatuuril -20 0 C mitte. rohkem kui 2 nädalat.

BAKTERIALSE VAGINOOSI PÕHJALIK UURING

Uuritav materjal Tupe tagumise alumise forniksi määrded.

Bakteriaalse vaginoosi terviklikuks diagnoosimiseks on vajalik:
Võtke eraldi ühekordselt kasutatavale klaasklaasile tupe tagumise või külgmise eesmise osa epiteelirakud, allkirjastage ja kuivatage. Hoidke klaasi toatemperatuuril.
Eemaldage lima ja kraapige epiteelirakud tupe tagumisest või lateraalsest forniksist ühekordse emakakaela harjaga sondiga DNA-EXPRESS reagendiga PCR katsutisse. Hoia katseklaasi sügavkülmas temperatuuril miinus 20°C kuni 10 päeva.
Saatke klaasklaas ja PCR toru täielikult täidetud suunaga "Litekh" laborisse.

Bioloogilise materjali kogumine ja tingimused selle transportimiseks

Vaadake tupest materjali võtmise funktsioone tsütoloogiliste ja PCR-uuringute jaoks.

Saada oma head tööd teadmistebaasi on lihtne. Kasutage allolevat vormi

Üliõpilased, magistrandid, noored teadlased, kes kasutavad teadmistebaasi oma õpingutes ja töös, on teile väga tänulikud.

postitatud http://www.allbest.ru/

"Nižni Novgorodi meditsiinikolledž"

(GBOU SPO NO "NMK")

Test

Teema: "Biomaterjali vastuvõtu, märgistamise ja registreerimise korraldamine"

Lõpetatud:

221-IV rühma õpilane.

Stepanychev M.N.

Õpetaja:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Sissejuhatus

1. Teoreetiline osa

1.1 Juhiste registreerimine

1.2 Laborirežiimid

1.3 Kliinilise laborimaterjali ladustamis- ja transporditingimused

1.4 Reguleerimisala

1.5 Biomaterjali kulleri transportimise protsessi korraldamine ja kulleri vastutus

1.6 Biomaterjali vastuvõtmine laboris

1.7 Biomaterjali ja saatekirjade üleandmine labori vastavatesse osakondadesse

1.8 Tellimuslehtede registreerimine operaatorite poolt

2. Praktiline osa

Järeldus

Sissejuhatus

Laboratoorsed uuringud on patsiendi seisundi kõige tundlikumad näitajad. Kliinilise laboridiagnostika spetsialistid on juba ammu mõistnud, et laboriuuringute tulemusi võivad mõjutada paljud tegurid. Nende tegurite hulgas: õigesti tarnitud ja hästi vormitud biomaterjali proovid ja nendega seotud dokumentatsioon. Sellise toetava teabe (laboratoorseid analüüse mõjutavad tegurid) puudumisel võib arst saadud tulemust valesti tõlgendada ja teha patsiendi suhtes ebaõigeid toiminguid.

Selle kontrolli eesmärk on juhtida tähelepanu vajadusele vaadata üle bioloogilise materjali dokumentatsiooni vastuvõtmise ja töötlemise eeskirjad. Teabe õige kasutamine peaks kaasa tooma tarbetute uuringute vähenemise, kulude vähenemise ja uurimistulemuste parema mõistmise.

Sihtmärk:

Uurida biomaterjali vastuvõtmise, märgistamise ja registreerimise korraldust.

Ülesanded:

1. Biomaterjali omastamise uurimine.

2. Selle dokumentatsiooni koostamine.

1. Teoreetiline osa

Praegu on haiguste diagnoosimisel ja ravimisel võtmerolli laboratoorsed uurimismeetodid. Patsientide uurimisel on suure tähtsusega laboridiagnostika korralduslikud aspektid, laboratoorsete uuringute täpsuse ja korrektsuse tagamine, stabiilsete, tehniliselt töökindlate analüüsimeetodite kasutamine ning uuringute kvaliteedikontroll.

Tervishoiuasutustes kasutatakse üsna laia arsenali laboratoorseid meetodeid ning ühtsete rutiinsete meetodite kõrval kasutatakse ka kaasaegseid kõrge spetsiifilisuse ja teabesisaldusega uurimismeetodeid.

Väga spetsiifiliste laboratoorsete meetodite kasutuselevõtt haiguste diagnoosimiseks tervishoiupraktikas nõuab standardimist diagnostikaprotsessi kõikides etappides.

Preanalüütiliste vigade osakaal laboratoorsete vigade koguarvust jääb vahemikku 50% kuni 95%. Laboratoorsete uuringute eelanalüütilises etapis esinevad vead devalveerivad kogu edasise laboriuuringute käigu, viivad märkimisväärsete rahaliste vahendite kaotuseni, diskrediteerivad laborimeetodeid raviarsti silmis saadud tulemuste ebausaldusväärsuse tõttu.

Igat tüüpi laboriuuringute puhul ühendab eelanalüütiline etapp enne tegelikku laborianalüüsi protsesside komplekti, mis koosneb:

ainete hoolikas ettevalmistamine;

Biomaterjali (veri, uriin jne) saamine;

biomaterjali transport laborisse;

· biomaterjali esmane töötlemine laboris;

biomaterjali jaotamine ja ladustamine laboris.

Eelanalüütilise protsessi nende etappide põhiülesanne on tagada uurimistööks võetud biomaterjalide komponentide stabiilsus (säilivus) ja minimeerida erinevate nende kvaliteeti muutvate tegurite mõju.

Sellega seoses peetakse silmas eelanalüütilist etappi.

1.1 Juhiste registreerimine

Materjali võtmisel peate õigesti täitma suuna. Katseklaase ja kaasasolevaid dokumente, etikette ei tohi segi ajada. Katseklaasile on märgitud osakonna ja seerianumber. Katseklaasil verega rühma ja Rh-kuuluvuse määramiseks - lisaks patsiendi perekonnanimi.

Biomaterjali võtmisel analüüsimise suunal tuleb märkida: (kõik andmed, võttes arvesse Valgevene Vabariigi tervishoiuministeeriumi korraldust 09.28.

patsiendi andmed - perekonnanimi, eesnimi, isanimi, sünniaeg, sugu, aadress, haigusloo number, diagnoos.

biomaterjali analüüsiks saatnud arsti nimi;

biomaterjali võtmise kuupäev ja kellaaeg;

Kirjeldage lühidalt saadetavat biomaterjali (märkige biomaterjali tüüp), deklareeritud materjalile mittevastavat materjali ei uurita - näiteks röga asemel sülg, plasma asemel seerum;

Biomaterjali võtmise tunnused (võtmiskoht - vere jaoks, uriini jaoks - maht, portsjon, kogumise aeg);

Kõik vajalikud uuringud ja mitte ainult "biokeemiline vereanalüüs".

Analüüsi suuna allkirjastab arst.

Vältige analüüside dubleerimist.

1.2 Laborirežiimid

Kogu veri peab tulema ainult tsentrifuugis, laborist võetud keemiliselt puhastes katsutites. Erakorralise analüüsi režiimis uuringute jaoks tuleb veri tarnida eraldi, mitte panna lauale koos rutiinsete analüüsidega ilma hoiatuseta. Kiiranalüüsi edastanud osakonna töötaja peab tagama analüüsi aktsepteerimise laboritöötaja poolt.

Kiireloomulised uuringud tehakse 2 tunni jooksul, ainult raskes seisundis patsientidele, kui on vaja erakorralist sekkumist. Kiireloomulise analüüsi tegemiseks eraldatakse eraldi laborant ja laboridiagnostika arst. Uuringute läbiviimine kiiranalüüsi režiimis nõuab suuremat reaktiivide tarbimist ja spetsialistide tööaega ning sellest tulenevalt suuri finantskulusid.

Praegu teeb erakorralise analüüsi labor avariirežiimis järgmisi vereanalüüse:

Hemoglobiini kontsentratsiooni määramine

hematokriti arvutamine

Punaste vereliblede arvu loendamine

Leukotsüütide arvu loendamine

Leukotsüütide valemi loendamine

Trombotsüütide arvu loendamine

Valveanalüüs tehakse tööpäeva jooksul - äsja vastuvõetud patsientidele või patsiendi seisundi halvenemisel, mis ei vaja erakorralist sekkumist.

Märkus: Laboratoorsete parameetrite normaalväärtused viitavad tühja kõhuga kogutud materjalile. Seetõttu ei saa kiireloomulise ja valves oleva uuringu tulemuste tõlgendamine olla lihtne võrdlus normaalväärtustega.

Plaanilised uuringud on kõik eelmisel päeval planeeritud uuringud, mille materjal jõuab laborisse hommikul kella 7-9. Täitmise aeg on kuni 6 tundi, mõnel juhul on vajalik pikem analüütiline protseduur.

Töötajate laboriuuringud viiakse läbi töötajate tervisekontrolli eest vastutava arsti korraldusel. Kõigil muudel juhtudel on küsitlus tasuline.

1.3 Kliinilise laborimaterjali ladustamis- ja transporditingimused

Kutseinfektsiooni vältimiseks tuleb igasugust bioloogilist vedelikku käsitleda potentsiaalselt nakkusohtliku materjalina, järgides kõiki asjakohaseid reegleid selle transportimisel, ladustamisel ja käitlemisel. Nakkusohtlike patsientide biomaterjalid tuleb spetsiaalselt märgistada ja neid tuleb käsitseda äärmise ettevaatusega. Kõik HIV-nakkusega patsientide biomaterjalid tuleb märgistada suunaga "kood 120" koos haigusloo numbri kohustusliku viitega.

Saadud bioloogiline vedelik tuleks võimalikult kiiresti laborisse toimetada. Kui on vaja määrata glükoosisisaldust ja happe-aluse seisundi näitajaid, tuleb veri viivitamatult laborisse toimetada.

Kõigil transpordi ja töötlemise etappidel tuleb verd hoida korgiga katsutites, et vältida aurustumist ning saastumist mikroobide ja erinevate ainetega väljastpoolt.

Tarnetorud tuleb asetada vertikaalselt, kaanega ülespoole, mis aitab kaasa proovide ohutusele ja kiirendab trombide teket seerumi vastuvõtmisel, vähendab transportimisel loksutamist ja hemolüüsi ohtu.

Torusid ei tohi ääreni täita. Ilma antikoagulantideta saadud täisverd ei tohi hemolüüsi vältimiseks enne laborisse toimetamist külmkapis hoida.

Tsentrifuugimine toimub hiljemalt 1 tund pärast biomaterjali võtmist.

1.4 Reguleerimisala

Käesolev standardne töökord (edaspidi - SOP) määrab kindlaks protseduuride ruumist (asutuse nimi) ja teistest labori poolt teenindatavatest asutustest laborisse siseneva biomaterjali vastuvõtmise, registreerimise, samuti ebakõlade tuvastamise ja kõrvaldamise korra.

See SOP on mõeldud laborandile ja labori operaatorile.

1.5 Biomaterjali kulleri transportimise protsessi korraldamine ja kulleri vastutus

Külmiku temperatuuri, mis on näidatud auto sõitjateruumi ekraanil, registreerib kuller ajakirjas “Autode külmikute temperatuurirežiimi arvestuse ajakiri” ja ka selles ajakirjas kuller. märgib vahetult enne asutustesse minekut ära oma täisnime, auto registreerimismärgi ja auto biomaterjalile väljumise aja .

Terviseasutusse saabunud kuller läheb selle asutuse registratuuri, kus korjab ära erinevate biomaterjalidega konteinerid. Igale konteinerile on märgitud asutuse nimi ja biomaterjali liik (veri, uriin, väljaheited, tampooniga klaasklaasid, kraabid). Kuller asetab konteinerid horisontaalasendisse masina külmikusse, nagu on näha fotol.

Kuller vastutab konteinerite terviklikkuse, nende ohutuse, õige temperatuuri tagamise eest auto külmikus (+4 - +8 °C), samuti asutustest laborisse toimetatud biomaterjali ohutuse eest. . Reisi ajal jälgib kuller auto külmiku temperatuuri, mis kuvatakse autosse paigaldatud ekraanil.

1.6 Biomaterjali vastuvõtmine laboris

Temperatuuri, mis on näidatud auto külmikus konteinerite väljavõtmise ajal, märgib kuller ajakirjas "Autode külmikute temperatuurirežiimi register" vastavas veerus. auto riiginumber. Ja ka samasse logisse märgib juht asutuste biomaterjaliga auto saabumise aja.

Märgitud anumad vereproovide, määrde ja kaabitsatega annab kuller edasi parameedik-laborandile.

Kabinetis avab laborant anuma kaane ja võtab sealt välja verega katseklaasid, määrde- ja kaabitsatega slaidid, kaustad uurimisjuhistega.

Sorteerib veresondid eraldi riiulitesse, lähtudes katsutite tüübist (biokeemilised, hematoloogilised ja koaguloloogilised) ning riiulitele märgitud asutuste nimetustest.

1.7 Biomaterjali ja saatekirjade üleandmine labori vastavatesse osakondadesse

Kabinetis paneb parameedik - laborant riiulid biokeemiliste, immunoloogiliste, koaguloloogiliste uuringute katseklaasidega konteineritesse, millel on märge "biomaterjali ülekandeks" ja viib need tsentrifuugimisele.

Parameedik - laborant helistab hematoloogia ja PCR osakonda, et vastavate osakondade parameditsiinilised laborandid võtaksid biomaterjali.

Seejärel annab uuringute suunad üle registreerimisoperaatoritele.

1.8 Tellimuslehtede registreerimine operaatorite poolt

Registreerimise protseduur:

- operaator loeb saatelehele kleebitud skanneriga vöötkoodi;

- seejärel sisestab operaator LIS-i patsiendi passi andmed: täisnimi, sünniaeg, elukoha aadress ja muud andmed: tellimuse allikas (kohustuslik tervisekindlustus, VHI, sularahamakse, tervisekontroll), asutuse number, osakond, täisnimi uuringu tellinud arsti, diagnoosi, MES-koodi (meditsiiniline ja majandusstandard).

- pärast seda sisestab operaator LIS-i need näitajad, mille raviarst määras, ja salvestab loodud tellimuse LIS-i.

2. Praktiline osa

Linna kliiniline haigla nr 40 avati 1966. aastal ja on praegu ainuke multidistsiplinaarne meditsiinikompleks Nižni Novgorodis, kuhu kuuluvad: haigla, sünnitushaigla, sünnituseelne kliinik, laste- ja täiskasvanute kliinik. See on kirurgiaosakonna peamine kliiniline baas, spetsialistide täiendõppe ja erialase ümberõppe keskus, Nižni Novgorodi Riiklik Meditsiiniakadeemia, mis on tegutsenud haigla baasil selle avamisest alates. Haigla nr 40 funktsionaalne omadus on peaaegu igasuguse patoloogiaga patsientide vastuvõtt erakorralistel juhtudel ööpäevaringselt. Kiirabi toimetab päevas üle 100 patsiendi.

Haigla ja selle struktuuriüksused on loonud kõik vajalikud tingimused patsientidele õigeaegseks abistamiseks ja nende kvaliteetseks raviks. Siin kasutatakse ja täiustatakse enesekindlalt traditsioonilisi meetodeid ning aktiivselt juurutatakse uusimaid meditsiinitehnoloogiaid. Kaasaegseid diagnostikaseadmeid meisterdatakse kõikjal. Viimase kahe aasta jooksul sai haigla tervishoiu moderniseerimisprogrammi raames 216 ühikut meditsiinitehnikat, sealhulgas kaasaegseid endoskoop-, labori- ja ultrahelidiagnostika seadmeid, mis võimaldasid teha keerukamaid sekkumisi hepatopankreatoloogias, koloproktoloogias ja fleboloogias. .

Juhtivad eksperdid osalevad aktiivselt Venemaa ja rahvusvahelise tasandi erialaseminaride, konverentside, sümpoosionide töös. labori kliiniline biomaterjal

Linnahaigla nr 40 on laia profiiliga kliiniline baas, kus rakendatakse praktikas kaasaegseid teaduslikke arenguid ja meetodeid. Siin on pikka aega ja viljakalt tehtud ühistööd Nižni Novgorodi Riikliku Meditsiiniakadeemia spetsialistide süvauuringute ja erialase ümberõppe keskuse kirurgiaosakonnaga. Selle korraldaja professor Igor Leonidovitš Rotkov asutas kirurgiakooli, kus osalesid peaaegu kõik haigla kirurgid ja täna jätkavad nad oma kogunenud kogemuste arendamist, tutvustades uusi arenguid ja tehnikaid. Haigla baasil loodi linna fleboloogiakeskus. Lastekirurgia osakond on Nižni Novgorodi pediaatriainstituudi filiaalina juhtinud pediaatrilise gastroenteroloogia teaduslikku osakonda juba mitu aastakümmet. Sünnitusmaja baasil on sünnitusabi ja günekoloogia osakonnad arstide täiendamiseks ja NSMA üliõpilaste koolitamiseks. Siin täiendavad oma oskusi spetsialistid paljudest Venemaa piirkondadest. Praktiseerivate teadlaste ja haiglaarstide ühine töö aitab kaasa nende oskuste kasvule ning innovatsioon erinevates meditsiinivaldkondades võimaldab saavutada unikaalseid tulemusi patsientide ravis.

Linna kliinilise haigla nr 40 töö tulemuste põhjal kaitsti 9 doktori- ja 29 magistritööd. Haigla spetsialistide poolt välja töötatud operatsioonimeetodite, diagnostika ja kasulike mudelite kohta on saadud üle 70 autoriõiguse tunnistuse ja patendi.

Arstide meeskond hindas kõrgelt 2012. aasta Nižni Novgorodi linnaauhinna autasu meditsiini valdkonnas. Töö on pühendatud ühele kiireloomulisemale ja keerulisemale kirurgiaprobleemile - alajäsemete flebotromboosi ravile, viimase viie aasta jooksul jälgimisele ning erakorralise ja plaanilise kirurgilise abi osutamisele flebotromboosiga patsientidele linna tingimustes. fleboloogiline keskus GBUZ NO "Linna kliiniline haigla nr 40" baasil.

Haigla struktuuri kuuluvas sünnitusmajas on 205 voodikohta ja see on Nižni Novgorodi oblasti suurim. Praegu täidab see piirkondliku perinataalkeskuse funktsiooni, võttes aastas 4500-5000 sündi. Kogu sünnitusarstide-günekoloogide töö eesmärk on vähendada rasedate raseduse katkemise ja üleküpsuse juhtude arvu, saavutada loomulikku sünnitust ja parandada vastsündinute elulemust.

Alates 2010. aasta jaanuarist tegutseb Tervisekeskus edukalt piirkondlikul tasandil üheks parimaks tunnistatud täiskasvanute polikliiniku seinte vahel. Oma töökogemust tutvustas keskuse juht Ülevenemaalisel Foorumil - "Terve rahvas on Venemaa õitsengu alus."

2012. aastal korraldati arstiabi kättesaadavuse suurendamiseks kõrvalises piirkonnas perearsti kabinet, mis tegutseb edukalt täiskasvanute polikliiniku struktuuris.

Rohkem kui tuhat asutuse töötajat, sealhulgas arstid, õed, laborandid, õed, tehnilised töötajad, loovad oma raske töö, hoolitsuse ja soojusega humanismi ja halastuse õhkkonna, mis on iseloomulik GBUZ NO "City" töötajatele. Kliiniline haigla nr 40".

Praktika käigus õpiti selgeks kogu biomaterjali vastuvõtmise ja registreerimise protsess.

1. biomaterjali ja vormide vastuvõtmine.

2. Biomaterjali uurimine

3. Tulemuste fikseerimine vormile

4. Tulemuse arvestus analüüsipäevikutes

5. Biomaterjali utiliseerimine

Järeldus

Biomaterjali vastuvõtu, märgistamise ja registreerimise korralduse kontrollimise peamine vorm on perioodiline välis- ja sisekontroll. Kuid seda kontrollivormi ei saa pidada tõhusaks. Laboratoorsete uuringute selle etapi kontrollimise probleem on tänapäeval üks kaasaegse laborimeditsiini tõsisemaid probleeme.

Kõige tõhusam ja tõhusam samm on luua standardtingimused patsiendi bioloogiliste proovide võtmiseks, transportimiseks ja säilitamiseks (vaakum- või muude süsteemide kasutamine). Selliste süsteemide juurutamine praktikasse ei mõjuta laboriuuringute kõiki etappe ja üldiselt viib labori korralduse teisele tasemele. Nende kasutamine mitte ainult ei hõlbusta korraldamist ja soodustab oluliselt eelanalüütilise etapi standardimist, vaid loob ka tingimused, mis on vajalikud kaasaegsete laborisüsteemide kasutuselevõtuks. Analüsaatorite olemasolul saab neid kasutada esmaste katseklaasidena, mis lihtsustab oluliselt laboriuuringu analüütilist etappi.

Majutatud saidil Allbest.ru

...

Sarnased dokumendid

Kliinilise laboratoorse diagnostika mikrobioloogiliste uuringute põhiülesanded. Bakterioloogialabori seadmed, suure jõudlusega automatiseeritud seadmed mikroorganismide tuvastamiseks, mikrobioloogilise diagnostika standardiseerimine.

abstraktne, lisatud 09.10.2010


Süüfilise edasikandumise viisid - sugulisel teel leviv nakkushaigus, mis mõjutab nahka, limaskesti, siseorganeid, luid, närvisüsteemi koos järjestikuse muutusega haiguse staadiumides. Hambalabori haavatavused infektsioonide suhtes.

esitlus, lisatud 27.04.2016


Kliinilise diagnostika labori tegevuse iseloomustus kaasaegsetes tingimustes, personali tegevuse hindamine ja selle efektiivsuse tõstmise tehnoloogiad. Õendustöötajate töö kirjeldamine laboris, soovituste väljatöötamine optimeerimiseks.

kursusetöö, lisatud 28.06.2016


Venemaa reguleerivad dokumendid, mis reguleerivad ravimite tootmist. Ravimite kvaliteedikontrolli katselabori struktuur, funktsioonid ja põhiülesanded. Vene Föderatsiooni õigusaktid mõõtmiste ühtsuse tagamise kohta.

kasutusjuhend, lisatud 14.05.2013


Tutvumine kaasaegsete proteeside valmistamisel kasutatud materjalidega. Automatiseeritud töökorralduse skeemi uurimine, mis võimaldab valmistada CAD\CAM tehnoloogial proteese. Hambalabori automatiseerimise eelised.

esitlus, lisatud 11.10.2015


Hambalabori põhielemendiks on hambatehniku ​​töölaud. Selle laua disain, selle varustus ja valgustus. Kontoris kasutatavate seadmete parameetrid. Kõige olulisemad kriteeriumid, millest sõltub valumasina jõudlus.

esitlus, lisatud 14.03.2016


Õiguslik alus põhimõtteliselt uute ja seni kasutamata ravimite kliiniliste uuringute läbiviimiseks. Maailma Arstide Ühenduse Helsingi deklaratsioonis sõnastatud kliiniliste uuringute eetilised ja õiguslikud põhimõtted.

esitlus, lisatud 25.03.2013


Mikrobioloogilise labori töö etapid ja igale neist kulutatud aeg. Normatiivdokumendid. Üldnõuded bioloogilise materjali proovide kogumisele ja kohaletoimetamisele mikrobioloogilisteks uuringuteks. Testitulemuste tõlgendamine.

esitlus, lisatud 26.04.2016


Kasahstani Vabariigi tervishoiuministri määruse "Farmakoloogiliste ja ravimite kliiniliste uuringute ja (või) testimise juhendi kinnitamise kohta" üldsätted. Kliiniliste uuringute eetilise hindamise põhimõtted.

esitlus, lisatud 22.12.2014


Sissejuhatus skisofreenia peamistesse sümptomitesse. Patsiendi vaimse, somaatilise ja neuroloogilise seisundi analüüs. Vaimsete haiguste uurimise kliiniliste meetodite arvestamine. Laboratoorsete uuringute üldised omadused.

Kõige sagedamini saadetakse PCR-ile suguelundite limaskesta kraapimine ja see analüüs on kõige täpsem kõigist tänapäeval saadaolevatest suguhaiguste diagnostikavahenditest. Harva on vaja teha vere, uriini, sülje ja muude bioloogiliste vedelike PCR-i.

Analüüsi teostamise tehnika

Teatud reagentide mõjul suureneb analüüsiks saadetud materjalis bakteri DNA kordades ning muutub seadmete jaoks eristatavaks ja tuvastatavaks.

Analüüsi tulemuste tähendus

PCR on alati kvalitatiivne analüüs, see tähendab, et vastust saab ainult "avastada" või "ei tuvastada". Mõelgem lahti, mis nende väärtuste taga peitub. "Tuvastatud" või "positiivne" või lihtsalt "+" - uuritavast materjalist eraldati vastava bakteri DNA ja 97% tõenäosusega võib öelda, et inimene on selle infektsiooniga nakatunud. “Ei leitud”, “negatiivne”, “-” – uuritavast materjalist ei eraldatud vastava bakteri DNA-d, 97% tõenäosusega võib väita, et patsiendi organismis neid baktereid suurel hulgal ei ole, tõenäosusega 60% – et patsient ei ole sellesse infektsiooni nakatunud.

Selleks, et bakter analüüsiks saadetud materjaliga katseklaasi jõuaks, on vajalik, et see sisalduks inimese organismis teatud koguses. Kui baktereid on inimkehas minimaalne, ei satu need peaaegu kindlasti katseklaasi ja analüüsi tulemus on negatiivne. Inimene on aga endiselt nakatunud ja haige. Seetõttu on tulemuse maksimeerimiseks enne PCR-i diagnostikat vaja spetsiaalset ettevalmistust.

KÕRGE TUNDLIKKUS JA KONKREETSUS

PCR on molekulaardiagnostika meetod, millest on saanud paljude infektsioonide “kuldstandard”, mis on ajaproovitud ja kliiniliselt põhjalikult testitud.

Meetodi erakordne tundlikkus võimaldab meie spetsialistidel nende geneetilise teabe põhjal usaldusväärselt tuvastada üksikuid patogeene bioloogilises materjalis. AmpliSense PCR testsüsteemide analüütiline tundlikkus enamiku viiruste ja bakterite puhul – 100 mikroorganismi reprodutseeritav tuvastamine uuritavas bioloogilises proovis (1000 MIKROORGANISMI 1 ml-s)

PCR-i spetsiifilisus AmpliSense tehnoloogia kasutamisel isegi kõigi viirus-, klamüüdia-, mükoplasma-, ureaplasma- ja enamiku teiste bakteriaalsete infektsioonide korral ulatub 100% -ni.

Bioloogilise materjali proovide võtmine laboratoorseteks uuringuteks PCR meetodil

Veri võetakse tühja kõhuga kubitaalveenist ühekordse nõelaga (läbimõõt 0,8-1,1 mm) ühekordselt kasutatavasse 5 ml süstlasse või spetsiaalsesse Venoject tüüpi vaakumsüsteemi (EDTA-ga). Süstlasse võetud veri kantakse ettevaatlikult (vahutamata) antikoagulandiga (6% EDTA lahus vahekorras 1:19 või 3,8% Na-tsitraadi lahus vahekorras 1:9) ühekordsesse katseklaasi. . Hepariini ei saa kasutada antikoagulandina) , toru suletakse ja keeratakse mitu korda ümber (segamaks antikoagulandiga). Katseklaasi verega hoitakse kuni uuringuni külmkapis +4°C - +8°C.

Maksimaalne säilitusaeg:

Viirusliku hepatiidi uuringus - 2 päeva

Teiste infektsioonide uurimisel - 5 tundi

Analüüsiks võetakse esimene portsjon hommikust uriini koguses 10 ml spetsiaalsesse viaali või katseklaasi ilma säilituslahuseta.

Valitud materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C.

Enne sülje võtmist loputatakse suud kolm korda soolalahusega. Sülg kogutakse ühekordselt kasutatavatesse katseklaasidesse koguses 3-5 ml.

Materjal tuleb võtta vahetult enne uuringut või toimetada kohe laborisse. Kui kiire kohaletoimetamine ei ole võimalik, külmutatakse materjal -20°C juures. Edasine transport toimub külmutatuna (jääga termoses).

Orofarüngeaalne tampoon

Materjali proovide võtmine toimub steriilse ühekordselt kasutatava aplikaatori tööosaga neelu tagumisest seinast ja mandlite krüptidest. Pärast materjali võtmist asetatakse aplikaator steriilsesse ühekordselt kasutatavasse torusse.

Röga ja pleuraefusioon

Materjal võetakse spetsiaalsetesse viaalidesse mahuga 5-10 ml.

Materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

biopsia materjal

Biopsia materjal asetatakse kuiva ühekordselt kasutatavasse Eppendorfi katsutisse.

Materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

sünoviaalvedelik

Materjal võetakse ühekordselt kasutatava süstlaga koguses 1 ml. Valitud materjal asetatakse kuiva ühekordselt kasutatavasse Eppendorfi tüüpi katseklaasi.

Materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

Materjali proovide võtmine urogenitaalinfektsioonide analüüsiks

Materjali proovid naistelt:

Kraapimine toimub kolmest erinevast punktist:

emakakaela kanal

tupe tagumine fornix

Vajadusel võetakse materjali uurimiseks suguelundite haavanditest (uuring HSV-II, Haemophilus ducrei jaoks).

Proovide võtmine toimub universaalse sondi või Volkmanni lusikaga. Kui kraapimine toimub universaalse sondiga, lõigatakse või murtakse ära uuritavat materjali sisaldav sondi tööosa ja asetatakse säilituslahusega ühekordsesse Eppendorfi tuubi. Kui proovide võtmine toimub Volkmanni lusikaga, loputatakse instrumendi tööosa ühekordses Eppendorfi katseklaasis sisalduvas säilituslahuses.

Materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

Materjalide kogumine meestelt:

Kraapimine (määrimine).

Materjal võetakse universaalse sondiga ureetrast. Vajadusel võetakse materjali uurimiseks suguelundite haavanditest (uuring HSV-II, Haemophilus ducrei jaoks).

Katsematerjali sisaldav sondi tööosa lõigatakse ära või murtakse ära ja asetatakse säilituslahusega ühekordselt kasutatavasse Eppendorfi tuubi.

Materjali maksimaalne säilivusaeg on 1 ööpäev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

Eesnäärme mahl:

Pärast eesnäärme massaaži kogutakse mahl 0,5-1 ml ühekordselt kasutatavasse kuiva Eppendorfi tüüpi katseklaasi. Kui mahla ei ole võimalik saada, kogutakse kohe pärast massaaži esimene portsjon uriini (mis sisaldab eesnäärme mahla) koguses 10 ml (vt uriiniproovide võtmise reegleid eespool).

Maksimaalne säilivusaeg on 1 päev külmkapis temperatuuril +4°C - +8°C.

Bioloogilise materjali (vere) kogumine ja säilitamine ELISA uuringute jaoks (infektsioonid)

Veri võetakse tühja kõhuga kubitaalveenist ühekordse nõelaga (läbimõõt 0,8–1,1 mm) ühekordselt kasutatavasse 5 ml süstlasse või spetsiaalsesse „Venoject“ tüüpi vaakumsüsteemi (EDTA-ga või ilma). Süstlasse võetud veri kantakse ettevaatlikult (ilma vahutamata) ühekordselt kasutatavasse "kuiva" katseklaasi või antikoagulandiga (6% EDTA lahus vahekorras 1:19 või 3,8% Na-tsitraadi lahus) katseklaasi. vahekorras 1:9).

Vadaku maksimaalne säilivusaeg temperatuuril +4°C - +8°C - 48 tundi

Vadaku maksimaalne säilivusaeg -20°C juures on pikaajaline säilitamine.

Bioloogilise materjali (vere) proovide võtmine ja säilitamine süüfilise uurimiseks (Syphilis RPR, Syphilis TPHA, Syphilis TPHA (poolkvantitatiivne analüüs), hormoonide, kasvajamarkerite, autoantikehade kontsentratsiooni määramiseks seerumis ELISA abil ja biokeemilisteks uuringuteks

Vereproovid võetakse:

Hommikul tühja kõhuga (dünaamilise vaatlusega - alati samadel kellaaegadel);

Ainult "kuivas" torus või spetsiaalses kaubanduslikus vaakumsüsteemis ilma antikoagulandita.

Veri võetakse tühja kõhuga kubitaalveenist ühekordse nõelaga (läbimõõt 0,8-1,1 mm) kuiva 5 ml katsutisse või spetsiaalsesse "Venoject" tüüpi vaakumsüsteemi (ilma antikoagulandita). Süstlast proovide võtmine on hemolüüsi ohu tõttu ebasoovitav.

Veri tuleb laborisse toimetada kogumise päeval. Katseklaasi verega hoitakse kuni uuringuni külmkapis +4°C - +8°C.

Vadaku maksimaalne säilivusaeg temperatuuril +4°С - +8°С on 48 tundi.

Vadaku maksimaalne säilivusaeg -20 °C juures on pikaajaline säilitamine.

Lubatud on ainult üks vadaku sulatamine.

Vereproovide võtmine lümfotsüütide ja neutrofiilide alampopulatsioonide ja funktsionaalse aktiivsuse määramiseks

Vereproovid võetakse:

Hommikul tühja kõhuga (5 ml verd).

Hüübimise vältimiseks lisatakse võtmisel verele antikoagulanti: 20 ühikut hepariini 1 ml vere kohta. Parem on kasutada standardseid hepariinituube (VACUTAINER on-hepariin või li-hepariin 5-7 ml roheliste korkidega firmalt Becton Dickinson).

Enne vere võtmist jaotage hepariin ühtlaselt mööda toru seinu.

Süstlaga võtmisel, et vältida hemolüüsi, langetage veri katseklaasi sujuvalt, ilma surveta.

Pärast kogumist pöörake prooviklaasi mitu korda ümber. Ärge raputage ega loksutage šeikeril.

Verd ei tohi hoida toatemperatuuril kauem kui 48 tundi

Transpordi ajal peaks vere temperatuur olema +18 °С - +24 °С

Immunoglobuliinide ja CEC määramiseks vereseerumis,

vereproovide võtmine toimub ainult kuivas katseklaasis!!!

Kogumise ja transpordi tingimused on samad.

Bioloogilise materjali (vere) kogumine ja säilitamine veregrupi määramiseks AB0 süsteemi ja Rh faktori järgi

Veri võetakse tühja kõhuga kubitaalveenist ühekordse nõelaga (läbimõõt 0,8-1,1 mm) ühekordselt kasutatavasse 5 ml süstlasse või spetsiaalsesse Venoject tüüpi vaakumsüsteemi (EDTA-ga). Süstlasse viimisel kantakse sellest veri ettevaatlikult (vahutamata) antikoagulandiga (6% EDTA lahus vahekorras 1:19 või 3,8% Na-tsitraadi lahus vahekorras 1:9) ühekordsesse katseklaasi. .

Veri tuleb laborisse toimetada kogumise päeval. Katseklaasi verega hoitakse kuni uuringuni külmkapis +4°C - +8°C.

Bioloogilise materjali (uriin) kogumine ja säilitamine 17-KS päevase eritumise määramiseks

Hommikune uriin visatakse ära, järgmised uriinikogused, sealhulgas järgmise päeva hommikune osa, kogutakse eraldi kaussi. Kogutud uriini maht segatakse, mõõdetakse (!). 50 ml uriini valatakse purki.

Diureesi näitava proovi kättetoimetamine – samal päeval.

Pikemaks säilitamiseks (üle päeva) on vajalik külmutamine.

Uuritava materjali kogumine bakterioloogiliste uuringute jaoks

UROGENITAALTRAKTI VÄLJENDAMINE.

Patsiendi uurimis- ja proovimaterjali ettevalmistamise reeglid:

Naiste uurimistöö materjali tuleks võtta enne menstruatsiooni või 1-2 päeva pärast selle lõppu. Enne materjali võtmist on soovitatav hoiduda urineerimisest 3-4 tundi ja seksuaalvahekorrast.

Naised ei tohiks uuringule ilmumise päeval dušitada ega kasutada välissuguelundite tualetti.

Uuritav materjal võetakse spetsiaalsete ühekordsete sondide, Volkmanni lusika, bakterioloogilise silmuse või tömbi otsaga kõrvasondiga.

5-7 päeva enne materjali proovide võtmist on vaja lõpetada keemiaravi ravimite ja meditsiiniliste protseduuride võtmine.

Uuritav materjal peab olema vere lisanditeta.

Urogenitaaltrakti aeglaste ja krooniliste infektsioonide korral on soovitatav kasutada ühte järgmistest provokatsioonimeetoditest:

bioloogiline: gonovatsiini (500 miljonit mikroobset keha) manustamine täiskasvanutele üks kord intramuskulaarselt, üle 3-aastastele lastele - 100-200 miljonit mikroobset keha. Alla 3-aastastele lastele ei soovitata gonovatsiini manustada;

termiline: 3-päevane diatermia kasutamine elektroodide abdominaal-tupe-sakraalse paigutusega 30,40,50 minutiks või induktotermia 10,15,20 minutiks. Eritus kusiti, emakakaela kanalist ja pärasoolest tuleb võtta üks tund pärast iga soojendamist;

mehaaniline: metallkorgi paigaldamine naiste emakakaelale 4 tunniks, meeste kusiti massaaž bougie'le 10 minutiks;

toitumine: soolase, vürtsika toidu ja alkoholi tarbimine 24 tundi enne uuringut.

Keemilisi provokatsioone ei tohiks läbi viia, kuna need avaldavad kahjulikku mõju mõnele patogeenile.

Materjal võetakse pärast provokatsiooni ja 24-48-72 tunni pärast.

Materjali võtab sünnitusarst-günekoloog patoloogilise protsessi nakkusliku olemuse kahtluse korral.

Emakakaela kanali, õõnsuse ja emaka lisandite sisu on tavaliselt steriilne.

UREETRA

Enne materjali võtmist tuleb ureetra välist avaust töödelda steriilse soolalahusega niisutatud tampooniga.

Mädase eritise olemasolul tuleb kraapid teha kas kohe või 15-20 minutit pärast urineerimist, sekreedi puudumisel masseerida kusiti materjali võtmiseks sondiga.

Naistel tuleb enne sondi ureetrasse sisestamist masseerida seda vastu häbemeliigest.

Sisestage sond naiste kusiti 1-1,5 cm sügavusele, meestele - 3-4 cm sügavusele ja tehke mitu pöörlevat liigutust. Lastel võetakse materjal ainult ureetra välisavast.

VULVA, VAGIINA VASTANE. Väljavool võetakse steriilse vatitupsuga. Bartholini näärmete põletiku korral need torgatakse, näärme abstsessi avamisel võetakse sisu steriilse vatitikuga.

VAGIINA. Uurimiseks mõeldud materjal võetakse steriilse tampooniga tagumisest forniksist või limaskesta patoloogiliselt muutunud piirkondadest. Kultuurimaterjal tuleks võtta enne käsitsi kontrollimist.

EMAKAKAELA KANAL.

Enne materjali võtmist on vaja eemaldada lima vatitikuga ja töödelda emakakaela steriilse soolalahusega.

Peate kasutama kolposkoopi.

Sisestage sond emakakaela kanalisse 0,5-1,5 cm sügavusele.

Emakakaela kanali erosioonide korral on vaja neid töödelda steriilse soolalahusega ning materjal tuleb võtta terve ja muutunud koe piirilt.

Sondi eemaldamisel on vaja täielikult välistada selle kokkupuude tupe seintega.

Külvamiseks võib kasutada emakakaela kanali seinte diagnostilise kaapimise käigus saadud limaskesta kaabitsaid.

EMAKAS Materjal võetakse spetsiaalsete instrumentide abil nagu süstal-aspiraator, mille sondil on kate.

EMAKA LISANDUSED

Põletikulise protsessiga emaka lisandites võetakse nakkuskoldest materjali (mäda, eksudaat, elunditükid) kas operatsiooni ajal või väikese vaagna diagnostilise punktsiooni käigus tupevõlvide kaudu.

Transpordisöötmes uurimiseks võetud materjali võib säilitada kuni 24 tundi temperatuuril +4° C. Proovi külmutamine ei ole lubatud.

URINE

Enne antibiootikumravi alustamist tuleb läbi viia uriini mikrobioloogiline uuring. Terve inimese uriin on steriilne.

Hommikul pärast välissuguelundite põhjalikku tualetti kogutakse steriilsesse nõusse keskmiselt 3-5 ml vabalt eralduvat uriini. Prostatiidi kahtluse korral võetakse 4 proovi: 3 portsjonit uriini (esimene ja keskmine portsjon spontaanse urineerimisega ning viimased 5-10 minutit pärast eesnäärme massaaži) ja eesnäärme sekretsiooni massaaži ajal.

Uriini kogumine kateetriga on seotud kuseteede infektsiooni riskiga ja seetõttu tuleks seda vältida. Kateteriseerimine viiakse läbi juhtudel, kui patsient ei suuda urineerida ega eristada neerude ja põie põletikulist protsessi. Selleks tühjendatakse põis ja sinna süstitakse 50 ml lahust, mis sisaldab 40 mg neomütsiini ja 20 mg polümüksiini. 10 minuti pärast võetakse uurimiseks uriiniproovid. Kui protsess lokaliseerub põies, jääb uriin steriilseks. Kui neerud on nakatunud, täheldatakse bakteriuuriat.

Patsiendi uriini saab kätte põie suprapubilise punktsiooniga. See uriini võtmise meetod annab kõige usaldusväärsemad tulemused.

Uriini mikrobioloogiline uuring tuleks läbi viia võimalikult kiiresti pärast patsiendilt selle saamist, sest. uriinis sisalduvad mikroobid paljunevad toatemperatuuril kiiresti, mis võib bakteriaalse saastatuse määra määramisel anda valetulemusi. Sellega seoses ei tohiks uriiniproovi võtmise hetkest kuni laboris uuringu alguseni mööduda uriini bakteriuuria astme uurimisel rohkem kui 1-2 tundi.

Uriini uurimisel urogenitaalsete infektsioonide patogeenide esinemise suhtes võib proovi säilitada kuni 18 tundi temperatuuril +4 ° C.

Uriiniproovide transportimisel tuleb arvestada ümbritseva õhu temperatuuriga.

SOELE DÜSBAKTERIOOOS

Enne antibakteriaalsete ja kemoterapeutiliste ravimitega ravi alustamist võetakse materjal (väljaheited) soole düsbakterioosi jaoks.

Kliinilise materjali valiku teostavad meditsiinitöötajad, järgides epideemiavastase režiimi reegleid, ainult steriilsete ühekordselt kasutatavate instrumentidega (süstlad, vastavad sondid, tsütoharjad jne), ühekordselt kasutatavates kinnastes.

Koguge materjal valitud lookusest võimalikult täielikult kokku, kasutades sobivaid aplikaatoreid – sondid, tsütoharjad (et tagada kliinilise proovi adekvaatsus).

Säilitage saadud materjal (mikroorganismide DNA/RNA), kasutades PCR labori poolt pakutavat usaldusväärset transpordikeskkonda ja säilitusaineid. Kliinilise materjali transportimise ja säilitamise sööde tagab RNA ja DNA stabiilsuse toatemperatuuril kuni 28 päevaks.

Võetud materjal asetada EDTA-ga (veri) vaakuttidesse, ühekordselt kasutatavatesse keemiliselt puhastesse Eppendorfi tuubidesse (äigepreparaadid, tserebrospinaalvedelik, biopsia jne). Materjali kogumise põhitingimus on vältida DNaaside ja ribonukleaaside sattumist proovi, kuna ribonukleaasid ja DNaasid on ensüümid RNA ja DNA lagundamiseks. Need on keskkonnas äärmiselt stabiilsed, taluvad pikaajalist keetmist. Peamine nukleaaside allikas on nahk, tolmuosakesed. Plasttorud ja otsikud peavad olema märgistatud "DNase, RNase-free" (nukleaasivaba).

Vahetult pärast proovide võtmist sulgege katseklaasid, viaalid kliinilise materjaliga tihedalt, puudutamata nende sisepinda ja kaante sisepinda.

Kliinilise materjaliga töötades ärge tehke katseklaaside, viaalide avamisel järske liigutusi ning vältige pritsimist ja pritsimist, mis võib viia proovide ja tööpindade saastumiseni.

Ristsaastumise vältimiseks hoidke ja transportige proove eraldi kilekotis või riiulites. Kui proovi ülekandmine on vajalik, kasutage automaatseid mikropipette, millel on vahetatavad ühekordselt kasutatavad aerosoolitõkkega otsad.

Enne PCR laborisse transportimist tuleks valitud biomaterjali hoida temperatuuril 2–4 °C mitte üle 48 tunni. Proovide kogumisest PCR analüüsini kuluv aeg on vajalik minimeerida. Proovide transport toimub jahutuskottides, termokonteinerites, termokotiga termostes, jääs või kuivas jääs.

Veri, plasma, seerum

Vereproovide võtmine on soovitatav vaakumsüsteemide abil. Selliste süsteemide kasutuselevõtt võimaldab standardiseerida verega manipuleerimisi, avaldab positiivset mõju laboriuuringute kõikidele etappidele ja üldiselt viib labori töö üle teisele, kõrgemale kvaliteeditasemele. Nende kasutamine tagab personali kaitse infektsioonide eest, vähendab vereproovide võtmisele kuluvat aega, sellega kaasneb palju vähem hemolüüsi, võimaldab säilitada vereproovide steriilsust ja transportida neid hermeetiliselt.

Venepunktuuri soovitatakse teha tühja kõhuga kubitaalveenist spetsiaalsesse antikoagulandiga vaakumtorusse, misjärel keeratakse toru mitu korda segamiseks ümber. Katseklaase verega hoitakse külmkapis +4 °С - +8 °С juures. Vere maksimaalne säilivusaeg on 1 päev (mitte külmutada!). Pikaajalise säilitamise vajaduse korral tuleb võtta 1 ml seerumit või vereplasmat ja hoida temperatuuril -16o -20o C mitte üle 2 nädala.

PCR diagnostikas kasutatavate vaakumsüsteemide omadused:

Vakuetid EDTA-ga (6%) – kasutatakse kvalitatiivseks ja kvantitatiivseks uuringuks. EDTA-antikoagulant fikseerib hästi raku nukleiinhapped.

Kvalitatiivseks ja kvantitatiivseks uuringuks kasutatakse naatriumtsitraadiga (3,8%) vakuette. Ei sobi pikaajaliseks transportimiseks, sest tsitraat on hea toitainekeskkond kõrvalise mikrofloora jaoks.

Antikoagulantideta vakuetid (vereseerum) - kasutatakse kvalitatiivseks uurimiseks. Vereseerumi kasutamine kvantitatiivseteks uuringuteks on ebasoovitav, kuna. osa nakkustekitajast settib trombi, samal ajal väheneb võimalus määrata selle kvantitatiivne sisaldus veres.

Hepariiniga vakuetid ei sobi kategooriliselt PCR reaktsioonide jaoks. Hepariin on polüanioon, nagu DNA, seega konkureerib see PCR reaktsioonis DNA-ga.

Vereanalüüsi optimaalne aeg on vahemikus 1 kuni 4 tundi pärast võtmist. Vahemikus 5 kuni 30 minutit toimub trombotsüütide ajutine kohanemine antikoagulandiga ja nende agregatsioon, mis võib viia nende veresuhkru eksliku vähenemiseni. vereproov.

Ei ole soovitav verd uurida hiljem kui 8 tundi pärast võtmist, sest. mõned rakkude omadused muutuvad: leukotsüütide maht väheneb, erütrotsüütide maht suureneb, mis lõppkokkuvõttes toob kaasa ekslikud mõõtmistulemused ja tulemuste ebaõige tõlgendamise. Vere säilitamise päeva jooksul püsivad stabiilsed ainult hemoglobiini kontsentratsioon ja trombotsüütide arv.

Verd ei saa külmutada. K 2 EDTA-ga kapillaarverd tuleb hoida toatemperatuuril ja analüüsida 4 tunni jooksul pärast kogumist.

Uuringute kvalitatiivse tulemuse tagamiseks on vaja enne analüüsi rangelt kontrollida proovide säilitamise aega ja tingimusi.

Kui on vaja teha hilinenud analüüs (transport pikkadel vahemaadel, seadme tehniline rike jne), hoitakse vereproove külmkapis (4 o - 8 o C) ja uuritakse 24 tunni jooksul. Siiski tuleb arvestada, et rakud paisuvad ja nende mahuga seotud parameetrid muutuvad. Praktiliselt tervetel inimestel ei ole need muutused kriitilised ega mõjuta kvantitatiivseid parameetreid, kuid patoloogiliste rakkude olemasolul võivad viimased mõne tunni jooksul alates vere võtmisest muutuda või isegi kokku kukkuda.

Vahetult enne uuringut tuleb verd mitu minutit põhjalikult segada, et lahjendada antikoagulant ja jaotada moodustunud elemendid plasmas ühtlaselt. Proovide pikaajaline pidev segamine kuni nende uurimise hetkeni ei ole soovitatav patoloogiliste rakkude võimaliku vigastuse ja lagunemise tõttu.

Vereanalüüs automaatse analüsaatoriga tehakse toatemperatuuril. Külmkapis säilitatav veri tuleb esmalt soojendada toatemperatuurini, kuna madalal temperatuuril suureneb vere viskoossus ja vererakud kipuvad kokku kleepuma, mis omakorda toob kaasa segunemise halvenemise ja mittetäieliku lüüsi. Külma vere uurimine võib leukotsüütide histogrammi kokkusurumise tõttu põhjustada "häiresignaalide" ilmumist.

Hematoloogiliste uuringute tegemisel vereproovi võtmise kohast märkimisväärsel kaugusel tekivad paratamatult probleemid, mis on seotud ebasoodsate transporditingimustega. Analüüside kvaliteeti võivad mõjutada mehaanilised tegurid (raputamine, vibratsioon, segunemine jne), temperatuuritingimused, lekke tõenäosus ja proovide saastumine. Nende põhjuste kõrvaldamiseks on veresontide transportimisel soovitatav kasutada hermeetiliselt suletud plasttorusid ja spetsiaalseid isotermilisi transpordikonteinereid. Transpordi ajal ei ole proovi (natiivse materjaliga) ja saatelehe kokkupuude bioloogilise ohutuse reeglite kohaselt lubatud.

^ 4.3. Bioloogilise materjali vastuvõtt ja registreerimine

Venoosse vereproovidega tuubid toimetatakse laborisse nende võtmise päeval spetsiaalsetes bioloogilise materjali kohaletoimetamiseks mõeldud kottides, milles tuubid peavad olema vertikaalses asendis ja kaugemal transportimisel spetsiaalsetes konteinerites. .

Materjali saav laboritöötaja peab kontrollima:

Saatekirja õigsus: saatelehele on märgitud uuritava andmed (perenimi, ees- ja isanimi, vanus, haiguslugu või ambulatoorse kaardi number, osakond, diagnoos, teraapia);

Katseklaaside märgistamine vereproovidega (need peavad olema märgistatud patsiendi koodi või perekonnanimega, identsed uuringu materjali saatmise vormil oleva koodi ja perekonnanimega). Laborant peab registreerima tarnitud materjali, märkima katseklaaside arvu.

^ 4.4 Vere rakulise koostise arvutamine hematoloogilisel analüsaatoril

Vere rakulise koostise arvutamine hematoloogilisel analüsaatoril peab toimuma rangelt vastavalt seadme juhistele.

Hematoloogilise analüsaatoriga töötades peaksite:

Kasutage K-2 EDTA-ga stabiliseeritud verd soovitatud vahekorras konkreetsete soola- ja ühekordselt kasutatavate hematoloogiliste katsutite jaoks (tavaline või vaakum);

Enne analüüsimist segage katsuti hoolikalt, kuid põhjalikult verega (soovitav on kasutada vereproovide segamise seadet - selleks otstarbeks rotomix);

Kasutage ettenähtud viisil registreeritud reaktiive; reaktiivide vahetamisel teise tootja toodete vastu kontrollige ja seadistage instrumendi kalibreerimine;

Käivitage seade, jälgides loputuse kõiki etappe, saavutades kõigi kanalite indikaatorite nullväärtused (taust);

Pöörake tähelepanu instrumentide teadetele võimalike süstemaatiliste vigade kohta: pidage meeles, et MCHC tõus üle normaalväärtuste on tavaliselt mõõtmisvea tagajärg;

Kui tuvastatakse viga, on hädavajalik põhjus kõrvaldada, ärge töötage rikkis seadmega;

Viige läbi kvaliteedikontrolli protseduur vastavalt vastavale programmile. koos tulemuse hinnanguga;

Töötada mõtestatult, võrreldes saadud tulemusi patsiendi proovide kliiniliste tunnustega;

Pärast mõõtmiste lõppu loputage analüsaatorit põhjalikult;

Seadme pikemaks ajaks seiskamisel tuleb kindlasti läbi viia kõik konserveerimistoimingud (võimalusel koos hooldusinseneriga);

Tehniliste probleemide korral tuleks kasutada hoolduslitsentsi omava ettevõtte hooldusinseneri abi; Ärge usaldage töid väljaõppeta töötajatele.

Hematoloogilise analüsaatoriga tööle asudes tuleks arvestada analüüsitavate parameetrite mõõtmise lineaarsuse piiridega. Proovide hindamine analüüsitud parameetrite väärtustega, mis ületavad mõõtmise lineaarsuse piiri, võib viia ekslike tulemusteni. Enamikul juhtudel kuvab analüsaator hüpertsütoosiga proovide analüüsimisel mõõdetud parameetri väärtuse asemel "D" (lahjendus), mis viitab proovi lahjendamise ja uuesti mõõtmise vajadusele. Lahjendada tuleb seni, kuni kahel järgmisel lahjendusel saadakse sarnased lõpptulemused.

^ PRI me R ─ Hüperleukotsütoosiga patsiendi proovi analüüs kolmel erineval hematoloogilisel analüsaatoril on toodud tabelis.

Tabel 3

¦ Hüperleukotsütoosi loendamise tulemused kolme erineva hematoloogilise analüsaatoriga

^ Hematoloogilised analüsaatorid	Proovi lahjendusmäär				Lõppväärtus
	^ Terve veri	1:1	1:3	1:4	WBC
1	D	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	D	D	168,3	139,1	695,5

Tabelist on näha, et täisverd analüüsides andis ainult üks analüsaator (2.) leukotsüütide arvu digitaalse väärtuse, ülejäänud kaks näitasid proovi lahjendamise vajadust. Järgnev proovi samm-sammult mõõtmine kolmes lahjenduses võimaldas saavutada lähedased lõpptulemused kõigis seadmetes ainult lahjendusega 1:3 ja 1:4. Seega oli leukotsüütide üldarv 700,0 - 710,0 x 10 9 /l, mis on enam kui 2 korda kõrgem algväärtusest, mis saadi täisveres 2. analüsaatoril ja 1,5 - lahjendusel 1:1 1. ja 1. 2. analüsaatorid.

1. 
   ^ Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimine

Kalibreerimine viitab selle tulemusel analüsaatori reguleerimise protseduurile

Mis saavutab vea süstemaatilise komponendi võrdsuse nulliga (null bias) või kinnitab, et nihe on null, võttes arvesse kalibreerimisviga. Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimist saab läbi viia kahel põhilisel viisil:

täisvere jaoks;

Põhineb sertifitseeritud väärtustega stabiliseeritud vereproovidel.

^ 5.1 Täisvere kalibreerimine

Täisvere kalibreerimist saab läbi viia võrdlusanalüsaatoriga, mille kalibreerimine on kontrollitud ja mida võib võtta originaalina.

Võrdluseks võrdlusanalüsaatoriga kalibreerimiseks kasutatakse 20 patsiendi veenivere proovi, mis on juhuslikult valitud referentanalüsaatorit omava labori igapäevasest uurimisprogrammist. Veri tuleb võtta antikoagulandi K 2 EDTA-ga vaakumtorudesse. Pärast võrdlusanalüsaatoriga analüüsimist toimetatakse veretorud laborisse kalibreeritava seadmega analüüsimiseks. Aeg võrdlusanalüsaatori ja kalibreeritud analüsaatoriga tehtud mõõtmiste vahel ei tohi ületada 4 tundi. Kalibreeritava instrumendi kalibreerimisproovide analüüs tuleb läbi viia samamoodi nagu patsiendi proovide analüüs. Saadud tulemused kantakse tabelisse lisas 1 toodud kujul. Nende tulemuste põhjal määratakse vastavad kalibreerimistegurid, mis on arvuliselt võrdsed graafiku alguspunkti läbivate kalibreerimissirgete kalde koefitsientidega.

Kalibreerimistegurid arvutatakse arvutis, kasutades programmi EXCEL, mis sisaldub mis tahes versiooni Microsoft OFFICE paketis. Kalibreerimistegurite arvutamiseks selles programmis koostatakse hajuvusdiagramm, kus mõõdetud väärtused kantakse piki X-telge, võrdlusväärtused piki Y-telge ja regressioonijoon seatakse läbi algpunkti. Programm tõmbab kalibreerimisjoone ja määrab selle kalde, mis on soovitud kalibreerimisfaktor. Kui tuvastatakse jämedad vead - punktid, mis on graafikul kalibreerimisjoonest oluliselt eraldatud, tuleb need arvutusest eemaldada (EXCELi tabelist kogu rida kustutada). Saadud kalibreerimistegur kantakse 1. liite tabelisse ja seda kasutatakse seadme kalibreerimise käsitsi reguleerimiseks vastavalt selle kasutusjuhendile.

1. 
   ^ Kalibreerimine sertifitseeritud väärtustega stabiliseeritud vereproovide suhtes

See kalibreerimismeetod põhineb kaubanduslikel kalibreerimis- ja kontrollmaterjalidel, mis on kunstlik segu stabiliseeritud inimese erütrotsüütidest ja fikseeritud inimese või looma rakkudest, mis jäljendavad leukotsüüte ja trombotsüüte. Nende materjalide komponentide bioloogiliste omaduste olulise erinevuse tõttu looduslikust verest sõltuvad hematoloogiliste parameetrite sertifitseeritud väärtused konkreetsest analüsaatori tüübist.

Võimaluse korral tuleks kasutada kalibraatoreid, mis on tootja poolt spetsiaalselt loodud teatud tüüpi analüsaatorite kalibreerimiseks. Kaasaegsete hematoloogiliste kalibraatorite seadeväärtuse vead vastavad üldiselt meditsiinilistele nõuetele. Kuid mitte kõigil analüsaatoritüüpidel pole selliseid kalibraatoreid. Lisaks ei ole piiratud säilivusaja tõttu (tavaliselt mitte rohkem kui 45 päeva) alati võimalik saada proove, mille kehtivusaeg ei ole lõppenud.

Kontrollmaterjalid ei ole tootja poolt ette nähtud kalibreerimiseks: väärtuste tolerantsid on palju laiemad, valideerimis- ja tootmiskontrolli meetodid ei ole nii ranged kui kalibraatorite puhul. Kalibreerimisel saab kontrollmaterjale kasutada ainult ühe teabeallikana seadme metroloogiliste omaduste kohta.

Siiski tuleb meeles pidada, et kui kalibreerimiseks kasutatakse nii kontrollmaterjale kui ka kalibraatoreid, on proovi ettevalmistamise ja analüsaatorite töö omadustel oluline mõju süstemaatilise vea komponentidele. Neid mõjutegureid ei saa kaubanduslike materjalidega kalibreerimisel arvesse võtta. Sellest tulenevalt tuleb kõikidel juhtudel teostatud kalibreerimist kontrollida, analüüsides patsiendi proovides saadud tulemuste statistikat (erütrotsüütide indeksid, normaalväärtuste intervallid).

5.2.1 Hematoloogiliste analüsaatorite kalibreerimisintervallid

Kalibreerimisintervalli nõuded leiate tavaliselt analüsaatori kasutusjuhendist. Reeglina on kalibreerimine vajalik pärast remonti või kui ettevõttesiseste kvaliteedikontrolli protseduuride käigus tuvastatakse oluline triiv.

5.2.2 Kalibreerimisprotseduur

Kalibreerimisprotseduur viiakse läbi vastavalt analüsaatori kasutusjuhendile.

5.2.3 Kalibreerimistulemuste kontrollimine

See kontroll seisneb kalibreerimisproovi analüüsis vahetult pärast kalibreerimist. Teostatud kalibreerimine on aktsepteeritud, kui analüüsi tulemused vastavad kalibreerimisväärtustele, võttes arvesse analüsaatori analüütilist varieerumist.

5.2.4 Kalibreerimise kontrollimine RBC indeksite abil

See kalibreerimise kontrollimise ja täpsustamise meetod kasutab tõsiasja, et patsientide erütrotsüütide indeksite - MCHC, MCH ja MCV - keskmised väärtused varieeruvad üsna vähe ja seetõttu saab neid tõhusalt kasutada kalibreerimise kontrollimiseks ja edasiseks kvaliteedikontrolliks. Soovitatav proovide arv keskmistamiseks on 20. Keskmise MCHC määramiseks võib kasutada mis tahes patsiendi proovi, samas kui aneemiaga patsiendid tuleks keskmisest MCHC ja MCV hulgast välja jätta.

Paljudel kaasaegsetel hematoloogilistel analüsaatoritel on sisseehitatud programmid voolu keskmiste arvutamiseks, mis lihtsustab oluliselt andmetöötlust.

Erütrotsüütide indeksite sihtväärtused, mis on keskmistatud 20 18–60-aastaste patsientide proovi kohta, olenemata soost, on toodud tabelis 4.

Tabel 4

Erütrotsüütide indeksite sihtväärtused

Kui saadud keskmised väärtused on väljaspool kontrolltolerantsi, tähendab see, et MCV või Hgb või RBC kalibreerimist tuleb korrigeerida.

Ebarahuldava kalibreerimise põhjuste kindlaksmääramisel erütrotsüütide parameetrite uuringust kaubanduslike kalibreerimis-/kontrollmaterjalide kasutamisel tuleks arvesse võtta järgmist materjalide sertifitseeritud väärtuste usaldusväärsuse hinnangut:

Kõige täpsem ja ajaliselt stabiilsem parameeter on erütrotsüütide kontsentratsioon;

Hgb on stabiilne parameeter, kuid see võib sõltuda kasutatavatest reagentidest (näiteks tsüaniidi või tsüaniidivaba);

Kõige ebastabiilsem parameeter on MCV. MCV väärtus kipub muutuma kogu materjali säilivusaja jooksul üsna laias väärtusvahemikus. MCV kalibreerimise täpsustamisel on erütrotsüütide indeksite keskmiste analüüsist saadud andmed ülimuslikud stabiliseeritud vereproovide sertifitseeritud väärtuste suhtes.

Arvestades RBC kalibreerimist õigeks, on tabelis 5 toodud võimalikud põhjused, miks indeksite keskmised väärtused ületavad kontrolltolerantsi.

Tabel 5

Erütrotsüütide indeksite keskmiste väärtuste ületamise põhjused

Erütrotsüütide indeksid	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus	Keskmine indeksi väärtus
MCHC	Piiri all	Piiri kohal	Piiri kohal	Piiri all
MCH	tolerantsi piires	tolerantsi piires	Piiri kohal	Piiri all
MCV	Piiri kohal	Piiri all	tolerantsi piires	tolerantsi piires
Põhjus	Ülehinnatud MCV	alahinnatud MCV	Kõrge Hgb	Madal Hgb