Närvikoe uurimise meetodid. Sissejuhatus

Histoloogiline ettevalmistus on peamine uurimisobjekt.

See peaks olema õhuke (5-10 µm), läbipaistev, kergesti valguskiirt läbi laskma ja võib olla õhuke elundi osa, terve preparaat (näiteks pia mater), elundi jäljend (näiteks , maksa või põrna jäljend), määrdumine (nt vere või luuüdi määrdumine), koekile (lahtine sidekude).

Klassikaline ja peamine histoloogia uurimisobjekt on jätkuvalt koe või organi fikseeritud ja värvitud osa.

Histoloogilise preparaadi valmistamise protsess hõlmab järgmisi põhietappe:

1) materjali võtmine ja kinnitamine;

2) materjali tihendamine;

3) lõikude tegemine;

4) sektsioonide peitsimine;

5) lõikude sõlmimine palsamis või muus läbipaistvas kandjas (polüstüreen, tselloidiin).

Mikropreparaadi fikseerimine

Fikseerimine seisneb selles, et elundist võetud väike tükk (3-5 mm) kastetakse fiksaatorisse (formaliin, 70 0 alkohol jne). Fikseerimine takistab lagunemisprotsesse ja aitab seeläbi kaasa struktuuride terviklikkuse säilimisele, valkude koagulatsioonile ja elutegevuse lakkamisele ning struktuurid surevad, kinnistuvad.

Mikropreparaatide tihendamine

Tihendamiseks tükid, kasutatakse erinevaid aineid, kõige sagedamini parafiini, tselloidiini, orgaanilisi vaike. Tihendusmaterjalidesse valatud tükid omandavad nendest õhukeste lõikude valmistamiseks vajaliku plastilisuse.

Sektsioonide lõikamine

Sektsiooni ettevalmistamine paksus 5 kuni 50 mikronit toodetakse spetsiaalsetel seadmetel - mikrotoomidel .

Sektsiooni värvimine

Värvimine viilu kasutatakse üksikute histoloogiliste struktuuride kontrastsuse suurendamiseks mikroskoobi all vaadatuna. Histoloogiliste lõikude värvimise meetodid on väga mitmekesised. Sektsioonide töötlemisel värvainetega tekivad keerulised keemilised ja füüsikalised protsessid.

Histoloogilised plekid jagunevad happeline, aluseline ja neutraalne.

Happevärvidega hästi määrivaid struktuure nimetatakse oksüfiilne ja värvitud põhiliste värvainetega - basofiilne. Struktuurid, mis aktsepteerivad nii happelisi kui aluselisi värvaineid, on heterofiilne või neurofiilsed. Kõige sagedamini kasutatavad värvained on hematoksüliin ja eosiin. Hematoksüliin värvib raku tuumad lillaks, eosiin on happeline värvaine, mis värvib tsütoplasma roosakaskollaseks. Värvilised preparaadid dehüdreeritakse edasi suureneva kangusega alkoholides ja selitatakse ksüleenis.

Pikaajaliseks säilitamiseks, histoloogiline sektsioon järeldada slaidi ja katteklaasi vahele palsamiks või muudeks aineteks. Valmis histoloogilist preparaati võib säilitada mitu aastat ja kasutada mikroskoobi all uurimiseks.

Närvi- ja elastsete kudede elementide tuvastamise meetodid.

Närvikude histoloogiliseks uurimiseks valatakse parafiini, tselloidiini ja želatiini. Parafiini ja tselloidiini valamise tehnikal ei ole selles etapis närvikoe töötlemise erijooni

Histokeemia.

Histokeemia, histoloogia haru, mis uurib loomsete ja taimede kudede keemilisi omadusi.

G. ülesandeks on selgitada välja ainevahetuse tunnused koerakkudes (vt Rakk) ja interstitsiaalses keskkonnas. See uurib muutusi rakkude omadustes arengu käigus, seost töö, ainevahetuse ning küpsete rakkude ja kudede uuenemise vahel. Histokeemiliste tehnikate põhiprintsiip on rakkude teatud keemilise komponendi sidumine värvainega või värvi moodustumine reaktsiooni käigus. Mitmed meetodid (tsütofotomeetria, luminestsents- ja interferentsmikroskoopia) lähtuvad ainete füüsikalistest omadustest. Erinevate histokeemiliste meetodite abil on võimalik määrata paljude ainete paiknemist ja kogust kudedes, nende ainevahetust (koe autoradiograafia), seoseid submikroskoopilise struktuuriga (elektrooniline morfoloogia), ensüümide aktiivsust. Immunohistokeemia on samuti paljulubav suund. Kõige täpsemaid histokeemilisi meetodeid, mis võimaldavad uurida raku struktuuri, nimetatakse tsütokeemilisteks (vt Tsütokeemia).

Esimesed spetsiaalsed histokeemilised uuringud kuulusid prantsuse teadlasele F. Raspailile (1825-34). G. hakkas intensiivselt arenema alates 40ndatest. 20. sajand, mil ilmusid usaldusväärsed meetodid valkude, nukleiinhapete, lipiidide, polüsahhariidide ja mõnede anorgaaniliste komponentide määramiseks rakus. Histokeemiliste meetodite abil õnnestus näiteks esmakordselt näidata seost RNA koguse ja valgusünteesi muutuste ning DNA sisalduse püsivuse vahel kromosoomikomplektis.

Teadusliku fakti väljaselgitamist aju kui vaimse tegevuse organi rolli kohta võib kahtlemata pidada inimkonna kõige olulisemaks teaduslikuks avastuseks. Tõendid selle kohta, et vaimne tegevus on aju ja eriti ajukoore funktsionaalse aktiivsuse ilming, põhinevad erinevatel anatoomilistel teadmistel, embrüoloogial, füsioloogial, patoloogilisel anatoomial ja histoloogial, aga ka paljude aastate kliinilistel vaatlustel.

Ajust kui vaimse tegevuse organist on nüüdseks saanud mitmete erialade teaduslike huvide keskpunkt. Kui varasemad närvisüsteemi toimimise teooriad põhinesid puhtalt mehhaanilistel kontseptsioonidel, siis praegu peetakse aju kõige keerulisemaks terviklikku tüüpi seadmeks, mis tagab närvisüsteemi erinevate struktuuride koostoime, et tagada maksimaalne kohanemine närvisüsteemiga. isik tervikuna muutuvatele välis- ja sisekeskkonna tingimustele.

Vaimse tegevuse materiaalse substraadi uurimise probleem, mis oli pikka aega paljude teaduslike ja üldfilosoofiliste suundumuste esirinnas, tekitab endiselt suurt teoreetilist ja praktilist huvi. Uute väga informatiivsete meetodite ilmumine närvisüsteemi struktuuri ja funktsioonide uurimiseks, sealhulgas teadusuuringute molekulaarse taseme uurimiseks, samuti psühholoogiliste ideede väljatöötamine inimese vaimse tegevuse süsteemse korralduse kohta, määras strateegiliselt selle suuna edenemise.

Uute meetodite kasutamine erinevate närvistruktuuride funktsionaalse otstarbe uurimiseks nende kahjustuste võimalikult täpseks paikseks diagnoosimiseks oli võimas tõuge psühholoogiliste protsesside morfoloogiliste substraatide põhiideede läbivaatamiseks ja inimese vaimse tegevuse iseärasuste selgitamiseks.

Närvisüsteemi struktuurse ja funktsionaalse korralduse uurimise kaasaegsed meetodid võib jagada morfoloogilisteks, kliinilisteks ja eksperimentaalseteks, kuigi see klassifikatsioon on üsna meelevaldne.

I. Morfoloogilised meetodid närvisüsteemi uurimiseks sisaldama järgmist.

• 1. neurohistoloogilised meetodid. Spetsiaalsete tehnoloogiate abil valmistatakse koelõike ja neid värvitakse erinevate värvainetega. Närvistruktuuride uurimiseks kasutatakse mikroskoopilist valgus- ja luminestsentstehnikat.
• 2. Elektronmikroskoopia. Selleks tehakse üliõhukesed lõiked, värvitakse spetsiaalsete meetoditega ning uuritakse suure suurendusega närvirakkude komponente ja rakusiseseid struktuure.
• 3. Konfokaalne laserskaneeriv mikroskoopia. See meetod põhineb fluorestsentsi tuvastamisel laserkiire fookuses, mis võimaldab luua mõne struktuuri, sealhulgas üksikute neuronite kolmemõõtmelise rekonstrueerimise.
• 4. Rakukultuuri uurimine.Ühte või mitut närvirakkude populatsiooni kasvatatakse tehissöötmes. Aju ellujäänud kudesid ja rakukultuure kasvatatakse spetsiaalsel söötmel, muutes teatud ainete vahekorda, kasutades erinevaid koehormoone. See uuring võimaldab uurida üksikute närvirakkude ja nende protsesside ehitust ja toimemehhanisme, nende gliaal- ja vaskulaarse keskkonna olulisust jne.
• 5. Neurohistokeemilised meetodid. Need põhinevad spetsiaalsete markerite, nagu mädarõika peroksidaas, lutsiferkollane jne, kasutamisel. Näiteks pärast kunstlikku manustamist imendub mädarõika peroksüdaas aktiivselt neuroniprotsessides ja transporditakse rakukehasse. See võimaldab teil luua uuritud struktuuride neuronaalseid ühendusi.
• 6. Raadioautoograafia. Radioaktiivse märgise abil jälgitakse selle liikumist neuronite struktuuris in vivo. Märgistust võib seostada mitmesuguste ainetega (glükoos, aminohapped, nukleotiidid, oligopeptiidid jne). Neuronite kehad neelavad radioaktiivset materjali ja transpordivad seda mööda oma aksoneid. See meetod määrab mitte ainult närvistruktuuride lokaliseerimise, vaid ka nende aktiivsuse.
• 7. Monoklonaalsete antikehade kasutamine. See meetod võimaldab tuvastada rangelt määratletud neuronite rühmi nende moodustatud vahendaja järgi. Antigeen-antikeha reaktsiooni arenemise tulemusena on võimalik fikseerida närvikoe seisund rakusurma ajal ja seeläbi kujundada ettekujutus aju intravitaalsest korraldusest.

II. Kliinilised meetodid närvisüsteemi uurimiseks sisaldama järgmist.

• 1. Aju arvuti- ja magnetresonantstomograafia. Need meetodid võimaldavad selgitada seljaaju ja aju anatoomilise korralduse iseärasusi, hinnata nende kahjustuste kohalikke piirkondi.
• 2. Positronemissioontomograafia. Meetod põhineb lühiajalise positrone emiteeriva isotoobi viimisel ajuvereringesse. Andmeid radioaktiivsuse jaotuse kohta ajus töödeldakse aju kolmemõõtmelise rekonstrueerimise vormis ja sõltuvalt verevoolu jaotumisest on võimalik hinnata ainevahetuse intensiivsust ja ajupiirkondade funktsionaalset aktiivsust, ning võimaldab ka in vivo kaardistada aktiivseid aju struktuure.
• 3. Elektroentsefalograafia (EEG). Meetod põhineb ajukoore rakkude koguaktiivsuse registreerimisel, mis viiakse läbi peanaha pinnale asetatud elektroodide abil.
• 4. Elektrokortikograafia ja elektrosubkortikograafia. Nende meetodite abil registreeritakse subkortikaalsete ja kortikaalsete struktuuride elektrilised nähtused - mikroelektroodid viiakse teatud ajukoore piirkondadesse ja subkortikaalsetesse tuumadesse. Need meetodid, erinevalt EEG-st, võimaldavad hinnata üksikute rakkude funktsionaalset seisundit, mitte terve neuronite rühma aktiivsuse astet, et selgitada konkreetse närviraku lokaliseerimist ja spetsialiseerumist. Neid saab kasutada aju kirurgiliste sekkumiste ajal.
• 5. Reoentsefalograafia (REG). See on meetod ajuveresoonte verega täitumise astme uurimiseks, mis võimaldab kaudselt hinnata selle erinevate osakondade funktsionaalset aktiivsust.

III. Eksperimentaalsed meetodid närvisüsteemi uurimiseks sisaldama järgmist.

• 1. Närvikoe hävitamise meetod. Seda meetodit kasutatakse uuritavate struktuuride funktsioonide kindlaksmääramiseks. See viiakse läbi närvistruktuuride neurokirurgiliste ristumiskohtade abil vajalikul tasemel või vajalike struktuuride hävitamisega elektroodide ja mikroelektroodide abil, kui neid läbib elektrivool.
• 2. ekstirpatsiooni meetod. Teatud närvikoe piirkonnad eemaldatakse loomalt kirurgiliselt, võttes arvesse käimasolevaid muutusi pärast nende eemaldamist skalpelliga või keemilist kokkupuudet ainetega, mis võivad põhjustada närvirakkude selektiivset surma. Samasse meetodite rühma kuuluvad kliinilised vaatlused erinevate närvistruktuuride vigastustega vigastuste tagajärjel (sõjalised ja kodused).
• 3. Närvitegevuse meetod. See põhineb uuritava närviraku elektrilise aktiivsuse registreerimisel intratsellulaarse elektroodi abil.
• 4. ärritusmeetod. See põhineb närvisüsteemi erinevate struktuuride elektrivoolu või kemikaalide stimuleerimisel, millega seoses eristatakse:
  • a) retseptorite ärritus ja kesknärvisüsteemi struktuuride määramine, milles erutus toimub;
  • b) kesknärvisüsteemi tsoonide ärritus ja reaktsiooni jälgimine (Sechenovi eksperiment).
  • c) stereotaksiline elektristimulatsioon - kesknärvisüsteemi teatud tuumade stimuleerimine mikroelektroodide abil ja toimuvate muutuste registreerimine. See meetod paljastas ajukoore somatotoonia ja kaardistas ajukoore motoorse tsooni.

Tuleb mõista, et ükski neist meetoditest ei suuda täielikult selgitada kõiki närvisüsteemi erinevate struktuuride struktuuri ja toimimise tunnuseid. Ainult väga erinevate uuringute tulemuste integreerimine, arvestades närvistruktuure tervikliku süsteemi tasemest kuni molekulaarbiokeemiliste ja biofüüsikaliste uuringute andmeteni, suudab lahendada uurija ees kerkivaid probleeme.

Vaimsete protsesside analüüsi erivormide kasutamine erinevate ajustruktuuride rikkumiste korral võimaldas läheneda taju, emotsioonide, mõtlemise, mälu, kõne jne sisemise psühhofüsioloogilise olemuse mõistmisele.

Funktsionaalse anatoomia tihe seos selliste meditsiiniliste ja psühholoogiliste teadmiste valdkondadega nagu neuroloogia, logopeedia, eripsühholoogia jne võimaldab lahendada kiireloomulisi teoreetilise, kliinilise meditsiini ja psühholoogia probleeme.

Lühike ajalooline ekskursioon. Esimesed katsed lahendada inimkeha struktuurse korralduse ja vaimsete protsesside kulgemise iseärasuste mõistmise vahelise seose küsimusi viidi läbi olemasolevate filosoofiliste ja religioossete vaadete raames ning taandusid elundi otsimisele, võiks omistada psüühika "mahuti" rolli. Vana-Kreeka teadlased esitasid arvukalt ekslikke hüpoteese vaimsete funktsioonide lokaliseerimise kohta. Varasemad ideed taandusid tõsiasjale, et vaimsete funktsioonide täitmise eest vastutab kogu keha. Hiljem hakati uskuma, et kehalise ja vaimse elu peamine tegur on vereringesüsteem. Vana-Kreeka õpetustes oli "pneuma" erilise tähtsusega kui eriline kõige õhem aine, mis ringles läbi veresoonte ja täitis psüühika põhisubstraadi funktsiooni.

Tuleb märkida, et koos vaimsete funktsioonide humoraalse hüpoteesiga (kreeka keelest. huumor - vedel) oli ka teisi. Seega, viited, et aju on tunde- ja mõtteorgan, kuuluvad Vana-Kreeka arstile Alkmeon Crotonist(VI sajand eKr), kes jõudsid sarnasele järeldusele kirurgiliste operatsioonide ja patsientide käitumise vaatluste tulemusena. Eelkõige väitis ta, et tunne tekib perifeerse sensoorse aparatuuri erilise struktuuri tõttu, millel on otsene seos ajuga.

Tuleks nimetada peamised teadlased, kes püüdsid mõista inimese vaimse tegevuse saladusi.

Pythagoras(570-490 eKr) - filosoof ja hinge surematuse ja selle kehast kehasse ümberpaigutamise doktriini rajaja füüsilise elu lõpus. Ta seostas mõistuse funktsiooni ajuga ja pidas südant hinge asukohaks.

Hippokrates(umbes 460 eKr – umbes 370 eKr) uskusid, et aju on suur käsnjas nääre ja vaimsete funktsioonidega seotud organ. Hiljem lõi ta õpetuse neljast vedelikust (veri, lima, must ja kollane sapp), mille kombinatsioon määrab inimese tervise ja vaimsed omadused. Ta ühendas tunded ja kired südamega.

Aristoteles(384-322 eKr) sõnastas "terve mõistuse" õpetuse. Selle olemus seisnes selles, et piltide tajumiseks on meeleelundid ja keskne organ - aju, mis täidab samaaegselt ka puuteorgani rolli. Aristotelese hingeorganiks oli süda ja aju peeti näärmeks, mis eritab lima, et jahutada "südamesoojust" ja verd.

Herophilus(335-280 eKr) ja Erazistrat(304-250 eKr) hakati lahkamiste põhjal eristama närve, mis varem ei olnud sidemetest ja kõõlustest eristatavad, samuti avastasid erinevused sensoorsete ja motoorsete närvide vahel. Lisaks juhtisid nad tähelepanu ajukoore reljeefi erinevustele ja arvasid ekslikult, et inimeste vaimsed võimed erinevad keerdude arvu järgi.

Claudius Galen(129-210 pKr) uskusid, et mõtteprotsessid on seotud ajuvatsakeste vedelikuga, samuti südame ja maksaga. Ta esindas närvisüsteemi hargnenud tüve kujul, mille iga haru elab iseseisvat elu.

Andreas Vesalius(1514-1564) - anatoomia reformija, uuris piisavalt üksikasjalikult aju struktuuri ja jõudis järeldusele, et vaimsete protsesside materiaalne substraat on aju aine, mitte vatsakeste süsteem.

R. Descartes(1596-1650), kes tegeles matemaatiliste ja füsioloogiliste uuringutega, arendas välja refleksi kontseptsiooni. Tema ideede kohaselt vahendab organismi vastasmõju välismaailmaga närvisüsteem, mis koosneb ajust (keskmena) ja sellest lahknevatest "närvitorudest". Tema ideede järgi lokaliseeriti hing käbinäärmesse, mis püüdis kinni elavate vaimude vähimadki liigutused ja suunas muljete mõjul need lihastesse. Sellest tulenevalt peeti väliste stiimulite tegevust motoorsete tegude põhjuseks prioriteetseks.

XVII-XVTTI sajandil. hakati laialdaselt kasutama eksperimentaalseid meetodeid ajustruktuuride funktsionaalse eesmärgi uurimiseks, mis põhinevad selle üksikute osade eemaldamisel. Nad arendasid märkimisväärselt ideid vaimsete protsesside ja nende võimaliku materiaalse kandja vahelise seose kohta. Jah, inglise anatoom T. Willis(1621-1675) juhtis esimesena tähelepanu "halli aine" (ajukoore) rollile looma "vaimu" kandjana. Aju "valgeaine" (valgeaine) tagab tema arvates "vaimu" toimetamise teistesse kehaosadesse, pakkudes neile aistinguid ja liikumist. Ta kuulub ühte esimestest arvamustest, mis puudutavad kehakeha ühendavat rolli kahe poolkera töös.

Tuntumate hulgas on 19. sajandi alguse suurima anatoomi uurimused. F. Gall(1758–1828). Esmalt kirjeldas ta halli ja valge aine erinevusi, pakkus välja, et inimese vaimsed ja psüühilised võimed on seotud eraldiseisvate piiratud ajupiirkondadega, mis kasvades moodustavad kolju välisreljeefi, mis võimaldab kindlaks teha. individuaalsed erinevused inimese võimetes. F. Galli ekslikud frenoloogilised kaardid, mis kujutasid endast põhjendamatut katset projitseerida ajukoore erinevaid funktsionaalseid piirkondi koljule, unustati peagi, kuid need andsid tõuke üksikute keerdude rolli uurimise jätkamiseks.

Menetlused M. Daxa(1771-1837) ja J. B. Buyo (1796-1881), meditsiiniliste vaatluste põhjal tehtud uuringud olid pühendatud oletustele kõne kaotuse kohta lokaalsete ajukahjustuste tagajärjel. Kuid alles 1861. aastal tegi prantsuse anatoom ja kirurg P. Broca(1824-1880) esines sellel teemal Pariisi antropoloogiaühingu koosolekul. Ta tutvustas materjale kahe kõnekaotusega patsiendi uuringust, juhtides tähelepanu asjaolule, et see on seotud vasaku ajupoolkera alumise eesmise gyruse kahjustusega. Nii pani P. Broca aluse funktsioonide dünaamilise lokaliseerimise teooriale ajukoores.

P. Brocki tähelepanekud stimuleerisid tervet rida uuringuid, mis olid seotud teatud ajuosade stimuleerimisega elektrivooluga. 1874. aastal saksa teadlane C. Wernicke(1848–1905) kirjeldasid kliinilisi juhtumeid ümberpööratud kõnest arusaamisega patsientidel, kellel oli kahjustus ülemise temporaalse gyruse tagumises osas.

E. Gitzig(1807-1875), ärritades koljuvigastustega patsientide aju nõrga elektrivooluga, avastas, et need mõjud aju tagumise piirkonnale panid silmad liikuma. Ta avas ajupoolkerade visuaalse ajukoore.

19. sajandi lõpp Seda iseloomustasid lokaliseerimisteadlaste suurimad edusammud, kes uskusid, et piiratud ajupiirkond võib olla mis tahes vaimse funktsiooni "ajukeskus". Leiti, et aju kuklasagara kahjustused põhjustavad nägemishäireid ja parietaalpiirkonna kahjustused põhjustavad sihipärase tegevuse korrektse sooritamise võime kaotust. Hiljem tuvastati ajukoores “kirjutuskeskus”, “loenduskeskus” jne. Samas ilmnevad vastuargumendina uuringud, mis viitavad teatud funktsioonide mittetäielikule kadumisele lokaalsetes ajukahjustustes, nende seosele astmega. aju aine üldine kadu.

Jah, inglise neuroloog D. H. Jackson(1835–1911), mis põhines dünaamilisel lähenemisel, põhjendas kesknärvisüsteemi tegevuse kolmetasandilise korralduse teooriat. Funktsioon on tema sõnul keerulise "vertikaalse" organisatsiooni tegevuse tulemus: alumist tasandit esindavad ajutüve piirkonnad, keskmist tasandit esindavad ajukoore sensoorsed ja motoorsed alad ning kõrgeimat tasandit. mida esindavad selle eesmised piirkonnad. Samuti pakkus ta välja, et patoloogilised protsessid ajus ei avaldu mitte ainult mõne funktsiooni kaotuses, vaid ka teiste funktsioonide kompenseerivas aktiveerumises. Seega tuleks häiret hinnata mitte ainult funktsioonide kaotuse sümptomite, vaid ka vabanemise ja vastastikuse (antagonistliku) aktivatsiooni sümptomite järgi.

19. sajandi kuulus patoloog. R. Virchow(1821 - 1902) põhjendasid rakulist patoloogiateooriat, mis oli stiimul üksikute närvirakkude rolli uurimiseks. Rakuteooria valguses Austria teadlane T. Meinert(1833-1892) kirjeldas ajukoore üksikuid rakke, omistades neile vaimsete protsesside kandja funktsiooni. Kiievi anatoom V. A. Panused(1834–1894) avastasid hiiglaslikud püramiidrakud eesmise tsentraalse gyruse ajukoores ja seostasid neid motoorsete funktsioonide täitmisega. Hispaania histoloog ja neuroanatoom S. Ramon y Cajal(1852-1934) põhjendasid närvisüsteemi struktuuri neuraalset teooriat ning näitasid selle keerukuse ja korra kõrget taset.

Vaimsete funktsioonide lokaliseerumise hindamisega piiratud ajupiirkondades kaasnes ulatusliku materjali saamine, mille põhjal Saksa psühhiaater 1934. a. K. Kleist(1879-1960), kes uuris sõjaväelisest ajuvigastusest tingitud kõrgemate vaimsete funktsioonide häireid, koostas aju lokaliseerimiskaardi. Selles seostas ta individuaalseid, sealhulgas sotsiaalselt määratud funktsioone, ajukoore teatud piirkondade aktiivsusega.

Teaduslikud tööd on hästi tuntud K. Brodman(1868–1918) histoloogilistel uuringutel põhineval ajukoore tsütoarhitektoonilisel kaardil. Ta tuvastas enam kui 50 erineva rakulise struktuuriga ajupiirkonda. Seega XIX sajandi lõpus. aju toimimise teaduslike vaadete süsteem taandati ideele, et see on "keskuste" kogum, milles on lokaliseeritud erinevad iseseisva iseloomuga võimed.

Füsioloogiline suund kõrgemate vaimsete funktsioonide lokaliseerimise uurimisel hakkas esile kerkima alates 19. sajandi keskpaigast. ja kõige enam arenenud Venemaal. Esimene range anatoomilise lokaliseerimise teooria kriitik oli I. M. Sechenov(1829–1905). Oma seisukohti tõi ta välja raamatus "Aju refleksid".

P. F. Lesgaft(1837–1909) põhjendas esimesena kehalise kasvatuse suunatud mõju võimalikkust inimkehale, et muuta sajas struktuuris teatud omadusi. Tänu tööle A. F. Lesgaft, lähtudes ideest organismi ja keskkonna, vormi ja funktsiooni ühtsusest, pani aluse funktsionaalsele suunale anatoomias. P. F. Lesgaft polnud mitte ainult silmapaistev arst ja anatoom, vaid ka õpetaja ja psühholoog. 1884. aastal ilmus esimene trükk tema raamatust "Koolitüübid", mis oli 20-aastase laste ja noorukite isiksuse uurimise tulemus. Ta tõi välja kuus põhilist kooliõpilaste tüüpi ja kirjeldas neile iseloomulikke jooni. Kavandatavas "koolitüüpides" Π. F. Lesgaft käsitles isikuomadusi kui keskkonna väliste sotsiaalpsühholoogiliste tegurite ja individuaalse eelsoodumuse kombinatsiooni produkti. Mitmetes töödes on autor püüdnud ennustada laste käitumist erinevatel vanuseperioodidel. Selle raamatuga sai Venemaal alguse selline psühholoogia suund nagu pedagoogiline psühholoogia.

V. M. Bekhterev(1857-1927) - silmapaistev kodumaine neuropatoloog ja psühhiaater, kes andis olulise panuse aju ja seljaaju funktsionaalse anatoomia uurimisse. Ta laiendas oluliselt ajukoore funktsioonide lokaliseerimise doktriini, süvendas refleksiteooriat. Teadusliku töö "Aju ja seljaaju juhtimisradade" (1894) ettevalmistamise käigus avastas ta hulga ajukeskusi, mis said hiljem ka tema nime.

Märkimisväärne panus anti närvitegevuse küsimuste uurimisse I. P. Pavlov(1849–1936). Ta töötas välja uuringud funktsioonide dünaamilise lokaliseerimise, erutus- ja inhibeerivate protsesside ruumilise orientatsiooni aju varieeruvuse kohta. Tema töödes sõnastati ja põhjendati ideid esimese ja teise signaalisüsteemi kohta, töötati välja analüsaatorite kolmetasandilise organisatsiooni kontseptsioon.

XX sajandi esimesel poolel. Inglise füsioloog C. Sherrington(1857–1952) põhjendas doktriini närvikontaktidest – sünapsist. Ta viis läbi katseid, et luua seoseid nõrga elektrivooluga ärritunud motoorse ajukoore tsoonide ja keha vastaskülje rangelt määratletud lihaste reaktsioonide vahel. Hiljem kasutas sarnaste metodoloogiliste põhimõtete väljatöötamist Kanada neurokirurg W. Penfield(1891–1976), kes põhjendas lokaliseerimise (projektsiooni) teooriat inimkeha erinevate osade ajukoore sensoorsete ja motoorsete piirkondade kohta.

Meie riigis hakati läbi viima esimesi neuropsühholoogilisi uuringuid L. S. Võgotski(1896–1934). Ta analüüsis muutusi, mis tekivad kõrgemates vaimsetes funktsioonides koos aju lokaalsete kahjustustega, kirjeldas funktsioonide dünaamilise lokaliseerimise põhimõtteid, mis eristavad inimese aju tööd loomade aju tööst.

See neuromorfoloogia ja füsioloogia osa muudeti teoreetiliste seisukohtade sidusaks süsteemiks A. R. Luria(1902–1977) ja tema õpilased. Nad on kogunud ja süstematiseerinud tohutul hulgal faktilist materjali otsmikusagara ja teiste ajustruktuuride rollist psüühiliste protsesside organiseerimisel, teinud kokkuvõtteid arvukatest varasematest uuringutest ning jätkanud üksikute vaimsete funktsioonide – mälu, kõne, intellektuaalsete protsesside – häirete uurimist. , vabatahtlikke liigutusi ja tegevusi lokaalsetes ajukahjustustes, analüüsis nende taastumise tunnuseid.

Oluline mõju vaimsete funktsioonide ja aju vaheliste seoste mõistmisele oli N. A. Bernstein(1896–1966) ja P. K. Anokhina(1898–1974), kes põhjendas funktsionaalsete süsteemide teooriat.

B. G. Ananiev(1907–1972) ja tema õpilased viisid läbi rea töid, mis olid pühendatud vaimse tegevuse kahepoolse ajuregulatsiooni rolli uurimisele. Need tööd viisid mitmete oluliste sätete sõnastamiseni ajupoolkerade kombineeritud töö rolli kohta ruumilises orientatsioonis ja seejärel elusorganismi elutegevuse ja käitumise kontrollimise üldistes protsessides. Ta lõi ka aistingute teooria kontseptsiooni ja inimese analüsaatorisüsteemi funktsionaalse struktuuri tekkeloo.

Akadeemik Η. P. Bekhtereva(1924–2008) on aastate jooksul tehtud tööd subkortikaalsete moodustiste rolli uurimiseks erinevate vaimsete protsesside elluviimisel.

Silmapaistvad Leningradi teadlased Η. N. Traugott, L. I. Wasserman ja Jah A. Meyerson 20. sajandi keskel. põhjendas teooriat ajust kui infot tajuvast, talletavast ja töötlevast süsteemist. Nad tutvustasid uusi, hiljem klassikaliseks saanud mõisteid "juhuslik mälu", "sõnumite filtreerimine", "mürakindlus", "teabe statistiline kodeerimine", "otsuste tegemine" jne.

XX lõpus - XXI sajandi alguses. jätkati uuringuid erinevate ajustruktuuride ja nende poolt täidetavate funktsioonide vaheliste seoste kohta. Tänu sellele vaadati üle klassikalised ideed vaimsete funktsioonide lokaliseerimise kohta ajukoores.

Mitmekülgsed uuringud on näidanud, et erinevalt elementaarsetest funktsionaalsetest protsessidest, mida põhjustavad somaatilised või vegetatiivsed refleksid ja mida juhib selgelt teatud rühm närvirakke, ei saa kõrgemad vaimsed funktsioonid paikneda ajukoore rangelt määratletud piirkondades. Need moodustavad keerukaid ühiselt töötavate tsoonide süsteeme, millest igaüks aitab kaasa keeruliste vaimsete protsesside elluviimisele. Lisaks võivad need paikneda aju erinevates osades, pakkudes teatud hierarhilist süsteemi. Selline lähenemine muudab ka psühholoogi praktilist tööd.

Arusaamine, et vaimne aktiivsus on kompleksne funktsionaalne süsteem, mis põhineb närvistruktuuride erilisel seosel, võimaldab läheneda küsimuste lahendamisele vaimse funktsiooni häirete lokaliseerimise kohta närvisüsteemi erinevates struktuurides, eelkõige ajus. uus viis. See avab laia silmaringi häirete polümorfse lokaliseerimise mõistmiseks ja nende sobivaks korrigeerimiseks.

Artikli sisu

HISTOLOOGIA, teadus, mis uurib loomseid kudesid. Kude on rühm rakke, mis on kuju, suuruse, funktsiooni ja ainevahetusproduktide poolest sarnased. Kõigil taimedel ja loomadel, välja arvatud kõige primitiivsemad, koosneb keha kudedest ning kõrgematel taimedel ja kõrgelt organiseeritud loomadel eristuvad kuded väga mitmekesise struktuuri ja toodete keerukuse poolest; üksteisega kombineerides moodustavad erinevad kuded keha eraldi organid.

Histoloogia on loomsete kudede uurimine; taimekudede uurimist nimetatakse tavaliselt taime anatoomiaks. Histoloogiat nimetatakse mõnikord mikroskoopiliseks anatoomiaks, kuna see uurib keha struktuuri (morfoloogiat) mikroskoopilisel tasemel (histoloogilise uurimise objektiks on väga õhukesed koelõigud ja üksikud rakud). Kuigi see teadus on peamiselt kirjeldav, hõlmab selle ülesanne ka nende muutuste tõlgendamist, mis toimuvad kudedes normaalsetes ja patoloogilistes tingimustes. Seetõttu peab histoloog olema hästi kursis sellega, kuidas kuded embrüonaalse arengu käigus moodustuvad, milline on nende kasvuvõime postembrüonaalsel perioodil ning kuidas nad läbivad muutusi erinevates looduslikes ja katsetingimustes, sealhulgas vananemise ja nende moodustavate rakkude surm.

Histoloogia kui omaette bioloogiaharu ajalugu on tihedalt seotud mikroskoobi loomise ja selle täiustamisega. M. Malpighit (1628-1694) nimetatakse "mikroskoopilise anatoomia" ja seega ka histoloogia isaks. Histoloogiat rikastasid vaatlused ja uurimismeetodid, mille viisid läbi või loonud paljud teadlased, kelle põhihuvid olid zooloogia või meditsiini valdkonnas. Sellest annab tunnistust histoloogiline terminoloogia, mis jäädvustas nende nimed nende esmakirjeldatud struktuuride või nende loodud meetodite nimedesse: Langerhansi saarekesed, Lieberkühni näärmed, Kupfferi rakud, Malpighi kiht, Maximovi plekk, Giemsa plekk jne.

Praeguseks on laialt levinud preparaatide valmistamise ja nende mikroskoopilise uurimise meetodid, mis võimaldavad uurida üksikuid rakke. Need meetodid hõlmavad külmutatud lõikude tehnikat, faasikontrastmikroskoopiat, histokeemilist analüüsi, koekultuuri, elektronmikroskoopiat; viimane võimaldab üksikasjalikult uurida rakulisi struktuure (rakumembraanid, mitokondrid jne). Skaneeriva elektronmikroskoobi abil oli võimalik paljastada rakkude ja kudede vabade pindade huvitav kolmemõõtmeline konfiguratsioon, mida tavapärase mikroskoobiga näha ei ole.

Kudede päritolu.

Embrüo areng viljastatud munarakust toimub kõrgematel loomadel rakkude mitmekordse jagunemise (purustamise) tulemusena; sel juhul moodustunud rakud jaotuvad järk-järgult oma kohtadesse tulevase embrüo erinevates osades. Algselt on embrüonaalsed rakud üksteisega sarnased, kuid nende arvu suurenedes hakkavad nad muutuma, omandades iseloomulikud tunnused ja võime täita teatud spetsiifilisi funktsioone. See protsess, mida nimetatakse diferentseerumiseks, viib lõpuks erinevate kudede moodustumiseni. Iga looma kõik koed pärinevad kolmest algsest idukihist: 1) välimisest kihist ehk ektodermist; 2) sisemine kiht ehk endoderm; ja 3) keskmine kiht ehk mesoderm. Näiteks lihased ja veri on mesodermi derivaadid, soolestiku vooder areneb endodermist ja ektoderm moodustab sisekudesid ja närvisüsteemi.
süsteem.

peamised kangatüübid.

Histoloogid eristavad inimestel ja kõrgematel loomadel tavaliselt nelja peamist kudet: epiteeli-, lihas-, side- (sealhulgas veri) ja närvikude. Mõnes koes on rakkudel ligikaudu sama kuju ja suurus ning need on üksteisega nii tihedalt külgnevad, et nende vahel puudub rakkudevaheline ruum või see puudub peaaegu üldse; sellised koed katavad keha välispinna ja vooderdavad selle sisemisi õõnsusi. Teistes kudedes (luu, kõhr) ei ole rakud nii tihedalt pakitud ja on ümbritsetud nende poolt toodetava rakkudevahelise ainega (maatriksiga). Aju- ja seljaaju moodustavatest närvikoe rakkudest (neuronitest) väljuvad pikad protsessid, mis lõpevad rakukehast väga kaugel, näiteks kokkupuutepunktides lihasrakkudega. Seega saab iga kudet teistest eristada rakkude asukoha olemuse järgi. Mõnedel kudedel on süntsüütiline struktuur, milles ühe raku tsütoplasmaatilised protsessid lähevad üle naaberrakkude sarnasteks protsessideks; sellist struktuuri täheldatakse germinaalses mesenhüümis, lahtises sidekoes, retikulaarkoes ja võib esineda ka mõne haiguse korral.

Paljud elundid koosnevad mitut tüüpi kudedest, mida saab ära tunda nende iseloomuliku mikroskoopilise struktuuri järgi. Allpool on kirjeldatud kõigi selgroogsete kudede peamisi tüüpe. Selgrootutel, välja arvatud käsnad ja koelenteraadid, on ka selgroogsete epiteeli-, lihas-, side- ja närvikoega sarnased spetsiaalsed kuded.

epiteeli kude.

Epiteel võib koosneda väga lamedatest (kettendavatest), kuubikujulistest või silindrilistest rakkudest. Mõnikord on see mitmekihiline, s.t. mis koosneb mitmest rakukihist; selline epiteel moodustab näiteks inimese naha väliskihi. Teistes kehaosades, näiteks seedekulglas, on epiteel ühekihiline, s.t. kõik selle rakud on ühendatud aluseks oleva basaalmembraaniga. Mõnel juhul võib ühekihiline epiteel tunduda mitmekihiline: kui selle rakkude pikad teljed ei ole üksteisega paralleelsed, siis tundub, et rakud asuvad erinevatel tasanditel, kuigi tegelikult asuvad nad samal pinnal. keldri membraan. Sellist epiteeli nimetatakse mitmekihiliseks. Epiteelirakkude vaba serv on kaetud ripsmetega, s.o. protoplasma õhukesed karvataolised väljakasvud (nt tsiliaarne epiteel, näiteks hingetoru) või otsad "harjaäärega" (peensoole vooderdav epiteel); see piir koosneb ultramikroskoopilistest sõrmetaolistest väljakasvudest (nn mikrovillidest) rakupinnal. Lisaks kaitsefunktsioonidele toimib epiteel elava membraanina, mille kaudu rakud absorbeerivad gaase ja lahustunud aineid ning vabastavad need väljapoole. Lisaks moodustab epiteel spetsiaalseid struktuure, näiteks näärmeid, mis toodavad kehale vajalikke aineid. Mõnikord on sekretoorsed rakud hajutatud teiste epiteelirakkude vahel; näiteks on lima tootvad pokaalrakud kalade naha pinnakihis või imetajatel soolestiku limaskestas.

Lihas.

Lihaskude erineb ülejäänutest oma kokkutõmbumisvõime poolest. See omadus on tingitud lihasrakkude sisemisest korraldusest, mis sisaldab suurt hulka submikroskoopilisi kontraktiilseid struktuure. Lihaseid on kolme tüüpi: skeletilihased, mida nimetatakse ka vöötlihasteks või vabatahtlikeks; sujuv või tahtmatu; südamelihas, mis on vöödiline, kuid tahtmatult. Silelihaskoe koosneb spindlikujulistest mononukleaarsetest rakkudest. Vöötlihased moodustuvad mitmetuumalistest piklikest kontraktiilsetest ühikutest, millel on iseloomulik põikvööt, s.t. vahelduvad heledad ja tumedad triibud risti pikiteljega. Südamelihas koosneb mononukleaarsetest rakkudest, mis on ots-otsa ühendatud ja millel on põikvööt; samas kui naaberrakkude kontraktiilsed struktuurid on ühendatud arvukate anastomoosidega, moodustades pideva võrgu.

Sidekoe.

Sidekude on erinevat tüüpi. Selgroogsete loomade olulisemad tugistruktuurid koosnevad kahte tüüpi sidekoest – luust ja kõhrest. Kõhrerakud (kondrotsüüdid) eritavad enda ümber tihedat elastset alusainet (maatriksit). Luurakud (osteoklastid) on ümbritsetud jahvatatud ainega, mis sisaldab soolaladestusi, peamiselt kaltsiumfosfaati. Kõigi nende kudede konsistentsi määrab tavaliselt põhiaine olemus. Keha vananedes suureneb mineraalsete lademete sisaldus luu põhjaaines ja see muutub rabedamaks. Väikelastel on luu põhiaine, aga ka kõhre rikas orgaaniliste ainete poolest; tänu sellele pole neil enamasti päris luumurrud, vaid nn. luumurrud ("rohelise oksa" tüüpi luumurrud). Kõõlused koosnevad kiulisest sidekoest; selle kiud moodustuvad kollageenist, fibrotsüütide (kõõluserakkude) sekreteeritavast valgust. Rasvkude paikneb erinevates kehaosades; See on omapärane sidekoe tüüp, mis koosneb rakkudest, mille keskel on suur rasvakera.

Veri.

Veri on väga eriline sidekoe tüüp; mõned histoloogid eristavad seda isegi iseseisva tüübina. Selgroogsete veri koosneb vedelast plasmast ja moodustunud elementidest: punased verelibled ehk hemoglobiini sisaldavad erütrotsüüdid; mitmesugused valged rakud ehk leukotsüüdid (neutrofiilid, eosinofiilid, basofiilid, lümfotsüüdid ja monotsüüdid) ja trombotsüüdid ehk trombotsüüdid. Imetajatel ei sisalda vereringesse sisenevad küpsed erütrotsüüdid tuumasid; kõigil teistel selgroogsetel (kalad, kahepaiksed, roomajad ja linnud) sisaldavad küpsed, funktsioneerivad erütrotsüüdid tuuma. Leukotsüüdid jagunevad kahte rühma - granuleeritud (granulotsüüdid) ja mittegranulaarsed (agranulotsüüdid) - sõltuvalt graanulite olemasolust või puudumisest nende tsütoplasmas; lisaks on neid lihtne eristada spetsiaalse värviseguga värvimisega: eosinofiilide graanulid omandavad selle värvimisega erkroosa, monotsüütide ja lümfotsüütide tsütoplasma - sinaka varjundi, basofiilide graanulid - lilla varjundi, neutrofiilide graanulid - a. nõrk lilla toon. Vereringes on rakud ümbritsetud läbipaistva vedelikuga (plasma), milles on lahustunud erinevad ained. Veri toimetab kudedesse hapnikku, eemaldab neist süsihappegaasi ja ainevahetusproduktid ning kannab toitaineid ja sekretsiooniprodukte, näiteks hormoone, ühest kehaosast teise.

närvikude.

Närvikude koosneb väga spetsiifilistest rakkudest, mida nimetatakse neuroniteks ja mis on koondunud peamiselt aju ja seljaaju halli ainesse. Neuroni (aksoni) pikk protsess ulatub pikkade vahemaade kaugusele kohast, kus asub tuuma sisaldava närviraku keha. Paljude neuronite aksonid moodustavad kimpe, mida me nimetame närvideks. Dendriidid lahkuvad ka neuronitest - lühemad protsessid, tavaliselt arvukad ja hargnenud. Paljud aksonid on kaetud spetsiaalse müeliinkestaga, mis koosneb rasvataolist materjali sisaldavatest Schwanni rakkudest. Naabruses asuvad Schwanni rakud on eraldatud väikeste vahedega, mida nimetatakse Ranvieri sõlmedeks; need moodustavad aksonile iseloomulikud lohud. Närvikude on ümbritsetud spetsiaalset tüüpi tugikoega, mida nimetatakse neurogliaks.

Kudede asendamine ja regenereerimine.

Kogu organismi eluea jooksul toimub pidev üksikute rakkude kulumine või hävimine, mis on normaalsete füsioloogiliste protsesside üks aspekte. Lisaks tekib vahel näiteks mingi vigastuse tagajärjel ühe või teise, erinevatest kudedest koosneva kehaosa kaotus. Sellistel juhtudel on keha jaoks äärmiselt oluline kaotatud osa taastoota. Regenereerimine on aga võimalik ainult teatud piirides. Mõned suhteliselt lihtsalt organiseeritud loomad, nagu planaariad (lamedused), vihmaussid, vähid (krabid, homaarid), meritähed ja holotuurid, suudavad taastada mis tahes põhjusel, sealhulgas spontaanse vetteheitmise (autotoomia) tõttu täielikult kaotatud kehaosi. Regeneratsiooni toimumiseks ei piisa ainult uute rakkude moodustamisest (proliferatsioon) säilinud kudedes; vastloodud rakud peavad olema võimelised diferentseeruma, et tagada igat tüüpi rakkude asendamine, mis olid osa kadunud struktuuridest. Teistel loomadel, eriti selgroogsetel, on taastumine võimalik vaid mõnel juhul. Tritoonid (sabaga kahepaiksed) on võimelised taastama oma saba ja jäsemeid. Imetajatel see võime puudub; Kuid isegi neil võib pärast maksa osalist eksperimentaalset eemaldamist teatud tingimustel täheldada maksakoe üsna olulise ala taastumist.

Regeneratsiooni ja diferentseerumise mehhanismide sügavam mõistmine avab kahtlemata palju uusi võimalusi nende protsesside kasutamiseks terapeutilistel eesmärkidel. Alusuuringud on juba andnud suure panuse naha ja sarvkesta siirdamise tehnikate arendamisse. Enamik diferentseerunud kudesid säilitavad rakke, mis on võimelised prolifereeruma ja diferentseeruma, kuid on kudesid (eriti inimese kesknärvisüsteem), mis täielikult moodustununa ei ole võimelised taastuma. Ligikaudu aastaselt sisaldab inimese kesknärvisüsteem talle määratud arvu närvirakke ja kuigi närvikiud, s.o. Närvirakkude tsütoplasmaatilised protsessid on võimelised taastuma, vigastuse või degeneratiivse haiguse tagajärjel hävinud aju- või seljaaju rakkude taastumise juhud pole teada.

Klassikalised näited normaalsete rakkude ja kudede asendamisest inimkehas on vere ja naha ülemise kihi uuendamine. Naha välimine kiht - epidermis - asetseb tihedal sidekoekihil nn. dermis, mis on varustatud pisikeste veresoontega, mis tarnivad sinna toitaineid. Epidermis koosneb kihilisest lameepiteelist. Selle ülemiste kihtide rakud muudetakse järk-järgult, muutudes õhukesteks läbipaistvateks kaaludeks - seda protsessi nimetatakse keratiniseerumiseks; lõpuks need soomused maha libisevad. Selline ketendus on eriti märgatav pärast naha tugevat päikesepõletust. Kahepaiksetel ja roomajatel esineb korrapäraselt sarvkihi eraldumist (sulamist). Igapäevase pindmiste naharakkude kadu kompenseerivad uued rakud, mis tulevad aktiivselt kasvavast epidermise alumisest kihist. Epidermise kihti on neli: välimine sarvkiht, selle all on läikiv kiht (milles algab keratiniseerumine ja selle rakud muutuvad läbipaistvaks), selle all on teraline kiht (selle rakkudesse kogunevad pigmendigraanulid, mis põhjustab naha tumenemist). nahk, eriti päikesekiirguse toimel). kiired) ja lõpuks sügavaim - algeline ehk basaalkiht (selles toimuvad kogu organismi eluea jooksul mitootilised jagunemised, mis annavad koorivate rakkude asemele uued) .

Samuti uuendatakse pidevalt inimeste ja teiste selgroogsete vererakke. Iga rakutüüpi iseloomustab enam-vähem kindel eluiga, mille järel need hävitavad ja verest eemaldavad teised rakud - fagotsüüdid (“rakusööjad”), mis on spetsiaalselt selleks kohandatud. Vereloomeorganites (inimestel ja imetajatel - luuüdis) moodustuvad uued vererakud (hävitatud asemel). Kui verekaotus (verejooks) või vererakkude hävitamine kemikaalidega (hemolüütilised ained) põhjustab vererakkude populatsioonidele suurt kahju, hakkavad vereloomeorganid tootma rohkem rakke. Suure hulga kudesid hapnikuga varustavate punaste vereliblede kadumisel ähvardab keharakke hapnikunälg, mis on eriti ohtlik närvikoele. Leukotsüütide puudumisega kaotab keha võime seista vastu infektsioonidele, samuti eemaldada verest lagunenud rakud, mis iseenesest põhjustab täiendavaid tüsistusi. Normaalsetes tingimustes on verekaotus piisav stiimul hematopoeetiliste organite regeneratiivsete funktsioonide mobiliseerimiseks.

Kudede reaktsioonid ebanormaalsetele seisunditele.

Kui kuded on kahjustatud, on võimalik nende tüüpilise struktuuri mõningane kaotus reaktsioonina toimunud rikkumisele.

Mehaaniline kahjustus.

Mehaanilise kahjustuse (lõige või murd) korral on koereaktsioon suunatud tekkinud tühimiku täitmisele ja haava servade taasühendamisele. Nõrgalt diferentseeritud koeelemendid, eriti fibroblastid, tormavad rebenemiskohta. Mõnikord on haav nii suur, et kirurg peab sellesse sisestama koetükke, et stimuleerida paranemisprotsessi algfaasis; selleks kasutatakse amputatsiooni käigus saadud ja "luupangas" hoiustatud luutükke või isegi terveid luutükke. Juhtudel, kui suurt haava ümbritsev nahk (näiteks põletushaavadega) ei suuda paraneda, kasutatakse teistest kehaosadest võetud tervete nahaklappide siirdamist. Sellised siirikud mõnel juhul ei juurdu, kuna siirdatud koel ei õnnestu alati kontakti luua nende kehaosadega, kuhu see üle kantakse, ja see sureb või retsipient lükkab selle tagasi.

võõrkehad.

Surve.

Kallused tekivad naha pideva mehaanilise kahjustusega, mis on tingitud sellele avaldatavast survest. Need ilmnevad tuntud konnasilmade ja nahapaksenditena jalataldadel, peopesadel ja muudel kehapiirkondadel, mis kogevad pidevat survet. Nende paksendite eemaldamine väljalõikamisega ei aita. Kuni surve püsib, kalluse teke ei peatu ja nende ära lõigates paljastame ainult tundlikud aluskihid, mis võib viia haavade tekkeni ja infektsiooni tekkeni.

Kudede uurimise meetodid.

Mikroskoopiliseks uurimiseks mõeldud koepreparaatide valmistamiseks on välja töötatud palju erimeetodeid. Samuti on olemas spetsiaalne meetod, mida nimetatakse koekultuuriks, mis võimaldab jälgida ja uurida eluskudesid.

koekultuur.

Eraldatud kudede või elundite tükid asetatakse toitainete lahustesse tingimustes, mis välistavad mikroobidega nakatumise võimaluse. Selles ebatavalises keskkonnas kasvavad kuded edasi, ilmutades paljusid omadusi (nt toitainete, hapniku, teatud ruumi vajadus jne), mis on neile omased tavatingimustes, s.t. kui nad on elusorganismis. Kultiveeritud koed võivad säilitada paljusid oma struktuurseid ja funktsionaalseid tunnuseid: südamelihase killud jätkavad rütmilist kokkutõmbumist, embrüo nahk jätkab kasvamist ja diferentseerumist tavapärases suunas. Kuid mõnikord ilmnevad kultiveerimisel koe sellised omadused, mis tavatingimustes selles ei avaldu ja võivad jääda teadmata. Seega ei ole ebanormaalsete kasvajate (kasvajate) rakkude struktuuri uurides alati võimalik kindlaks teha nende kuuluvust konkreetsesse koesse või embrüonaalset päritolu. Tehislikus toitekeskkonnas kasvatades omandavad nad aga konkreetse koe või elundi rakkudele iseloomulikud tunnused. See võib olla väga kasulik mitte ainult kasvaja õigel tuvastamisel, vaid ka organi tuvastamisel, millest see algselt tekkis. Mõnda rakku, nagu fibroblastid (sidekoe rakud), on väga lihtne kultiveerida, mistõttu on need väärtuslikud katseobjektid, eriti juhtudel, kui uute ravimite testimiseks on vaja homogeenset materjali.

Koekultuuri kasvatamine nõuab teatud oskusi ja seadmeid, kuid see on eluskudede uurimisel kõige olulisem meetod. Lisaks võimaldab see saada täiendavaid andmeid tavapäraste histoloogiliste meetoditega uuritud kudede seisundi kohta.

Mikroskoopilised uuringud ja histoloogilised meetodid.

Isegi kõige pealiskaudseim uurimine võimaldab eristada ühte kudet teisest. Palja silmaga tunneb ära lihased, luud, kõhred ja närvikuded, aga ka vere. Üksikasjalikuks uurimiseks on aga vaja kudesid uurida mikroskoobi all suure suurendusega, mis võimaldab näha üksikuid rakke ja nende jaotumise olemust. Märgpreparaate saab uurida mikroskoobi all. Sellise preparaadi näiteks on vereproov; selle valmistamiseks kantakse slaidile tilk verd ja määritakse see õhukese kilena. Kuid need meetodid ei anna tavaliselt täielikku pilti rakkude jaotumisest, samuti piirkondadest, kus kuded on ühendatud.

Kehast eemaldatud eluskudedes toimuvad kiired muutused; vahepeal põhjustavad vähimadki muutused koes histoloogilise preparaadi pildi moonutamist. Seetõttu on väga oluline tagada selle ohutus kohe pärast koe eemaldamist kehast. See saavutatakse fiksaatorite abil – erineva keemilise koostisega vedelikud, mis tapavad rakke väga kiiresti, moonutamata nende struktuuri detaile ja tagades koe säilimise selles – fikseeritud – olekus. Kõigi arvukate fiksaatorite koostis töötati välja korduva katsetamise tulemusena ja nendes leiduvate erinevate komponentide soovitud suhe määrati kindlaks sama korduva katse-eksituse meetodil.

Pärast fikseerimist allutatakse kude tavaliselt dehüdratsioonile. Kuna kiire ülekandmine kõrge kontsentratsiooniga alkoholile tooks kaasa rakkude kortsumise ja deformatsiooni, toimub dehüdratsioon järk-järgult: kude juhitakse läbi anumate, mis sisaldavad järjest kasvavas kontsentratsioonis kuni 100% alkoholi. Seejärel viiakse kude tavaliselt vedelikku, mis seguneb hästi vedela parafiiniga; kõige sagedamini kasutatakse selleks ksüleeni või tolueeni. Pärast lühikest kokkupuudet ksüleeniga suudab kude parafiini absorbeerida. Impregneerimine toimub termostaadis, nii et parafiin jääb vedelaks. Kõik see nö. juhtmestik tehakse käsitsi või proov asetatakse spetsiaalsesse seadmesse, mis teeb kõik toimingud automaatselt. Kiiremat juhtmestikku kasutatakse ka lahustite (näiteks tetrahüdrofuraani) abil, mida saab segada nii vee kui ka parafiiniga.

Pärast seda, kui koetükk on täielikult parafiiniga küllastunud, asetatakse see väikesesse paber- või metallvormi ja sellele lisatakse vedel parafiin, valades sellega kogu proovi. Kui parafiin kõveneb, saadakse tahke plokk, millesse on suletud kude. Nüüd saab kangast lõigata. Tavaliselt kasutatakse selleks spetsiaalset seadet - mikrotoomi. Operatsiooni käigus võetud koeproove saab pärast külmutamist lõigata, s.o. ilma dehüdratsioonita ja parafiini täitmata.

Ülalkirjeldatud protseduuri tuleb veidi muuta, kui kude, näiteks luu, sisaldab kõvasid lisandeid. Kõigepealt tuleb eemaldada luu mineraalsed komponendid; selleks töödeldakse kude pärast fikseerimist nõrkade hapetega - seda protsessi nimetatakse katlakivi eemaldamiseks. Katlakivi eemaldamata luuploki olemasolu deformeerib kogu kude ja kahjustab mikrotoomi noa lõikeserva. Luu väikesteks tükkideks saagides ja mingi abrasiiviga lihvides on aga võimalik saada lõike – üliõhukesi luutükke, mis sobivad mikroskoobi all uurimiseks.

Mikrotoom koosneb mitmest osast; peamised on nuga ja hoidik. Parafiiniplokk on kinnitatud hoidiku külge, mis liigub noa serva suhtes horisontaaltasapinnas, samal ajal kui nuga ise jääb paigale. Pärast ühe lõike saamist liigutatakse hoidikut mikromeetrikruvide abil teatud vahemaa võrra, mis vastab soovitud lõikepaksusele. Sektsioonid võivad olla õhukesed kuni 20 µm (0,02 mm) või 1–2 µm (0,001–0,002 mm); see sõltub rakkude suurusest antud koes ja jääb tavaliselt vahemikku 7-10 mikronit. Parafiiniplokkide lõigud, millesse on suletud kude, asetatakse slaidile. Seejärel eemaldatakse parafiin, asetades slaidid koos sektsioonidega ksüleeni. Kui rasvkomponente on vaja säilitada osade kaupa, siis parafiini asemel kasutatakse koe täitmiseks sünteetilist vees lahustuvat polümeeri karbovaksi.

Pärast kõiki neid protseduure on preparaat valmis värvimiseks – see on väga oluline samm histoloogiliste preparaatide valmistamisel. Sõltuvalt koe tüübist ja uuringu iseloomust kasutatakse erinevaid värvimismeetodeid. Need meetodid, nagu ka kanga valamise meetodid, töötati välja paljude aastate pikkuse katsetamise käigus; aga pidevalt luuakse uusi meetodeid, mida seostatakse nii uute uurimisvaldkondade arendamise kui ka uute kemikaalide ja värvainete tulekuga. Värvained on histoloogiliste uuringute oluliseks vahendiks, kuna need imenduvad erinevatesse kudedesse või nende üksikutesse komponentidesse (raku tuumad, tsütoplasma, membraanistruktuurid) erinevalt. Värvimise aluseks on keemiline afiinsus värvaineid moodustavate kompleksainete ning rakkude ja kudede teatud komponentide vahel. Värvaineid kasutatakse vesi- või alkoholilahustena, olenevalt nende lahustuvusest ja valitud meetodist. Pärast värvimist pestakse preparaate vees või alkoholis, et eemaldada liigne värvaine; pärast seda jäävad värviliseks ainult need struktuurid, mis seda värvainet neelavad.

Et preparaat säiliks piisavalt kaua, kaetakse värviline osa mingi liimiga määritud katteklaasiga, mis järk-järgult kivistub. Selleks kasutatakse Kanada palsamit (looduslikku vaiku) ja erinevaid sünteetilisi materjale. Sel viisil valmistatud preparaate säilib aastaid. Kudede uurimiseks elektronmikroskoobis kasutatakse muid fikseerimismeetodeid (tavaliselt osmiinhapet ja glutaaraldehüüdi kasutades) ja muid sisestuskeskkondi (tavaliselt epoksüvaike), mis võimaldab paljastada rakkude ja nende komponentide ultrastruktuuri. Spetsiaalne klaasist või teemantnoaga ultramikrotoom võimaldab saada alla 1 mikroni paksuseid sektsioone ja püsivad preparaadid paigaldatakse mitte klaasalustele, vaid vaskvõrkudele. Hiljuti on välja töötatud tehnikad, mis võimaldavad rakendada mitmeid tavapäraseid histoloogilisi värvimisprotseduure pärast koe fikseerimist ja sisestamist elektronmikroskoopia jaoks.

Siin kirjeldatud töömahukas protsess nõuab kvalifitseeritud personali, kuid mikroskoopiliste proovide masstootmisel kasutatakse konveiertehnoloogiat, mille puhul paljud dehüdratsiooni, kinnistamise ja isegi värvimise etapid viiakse läbi automaatsete koejuhikute abil. Juhtudel, kui on vaja kiiret diagnoosi, eriti operatsiooni ajal, fikseeritakse biopsia kude kiiresti ja külmutatakse. Selliste kangaste lõigud valmistatakse mõne minutiga, neid ei valata ja koheselt värvitakse. Kogenud patoloog saab rakkude üldise leviku mustri põhjal kohe diagnoosi panna. Sellised lõigud ei sobi aga üksikasjalikuks uurimiseks.

Histokeemia.

Mõned värvimismeetodid võimaldavad teil tuvastada rakkudes teatud kemikaale. Võimalik on rasvade, glükogeeni, nukleiinhapete, nukleoproteiinide, teatud ensüümide ja teiste raku keemiliste komponentide diferentsiaalne värvimine. On teada, et värvained värvivad intensiivselt kõrge metaboolse aktiivsusega kudesid. Histokeemia panus kudede keemilise koostise uurimisse suureneb pidevalt. Valitud on värvained, fluorokroomid ja ensüümid, mida saab siduda spetsiifiliste immunoglobuliinide (antikehadega) külge ja, jälgides selle kompleksi seondumist rakus, tuvastada rakustruktuure. See uurimisvaldkond on immunohistokeemia teema. Immunoloogiliste markerite kasutamine valgus- ja elektronmikroskoopias aitab kaasa meie rakubioloogiaalaste teadmiste kiirele laienemisele, samuti parandab meditsiiniliste diagnooside täpsust.

"Optiline värvimine".

Traditsioonilised histoloogilised värvimismeetodid hõlmavad fikseerimist, mis tapab koe. Optilised värvimismeetodid põhinevad sellel, et paksuse ja keemilise koostise poolest erinevatel rakkudel ja kudedel on ka erinevad optilised omadused. Tänu sellele on polariseeritud valguse, dispersiooni, interferentsi või faasikontrastsuse abil võimalik saada pilte, millel üksikud konstruktsioonidetailid on ereduse ja (või) värvierinevuste tõttu selgelt nähtavad, samas kui sellised detailid on tavapärases valguses raskesti eristatavad. valgusmikroskoop. Need meetodid võimaldavad uurida nii elusaid kui ka fikseeritud kudesid ning kõrvaldada artefaktide ilmnemine, mis on võimalik tavapäraste histoloogiliste meetodite kasutamisel.

Enne närvikoe allutamist histoloogilisele analüüsile on vaja valmistada preparaat, st. võtke materjal õigesti ja kinnitage see. Reeglina uuritakse surnud organismide närvikude. Ja kõige levinum õppimisviis on eelvärvimisega meetod. Värvuse määrab mõnede metallide omadus moodustada neuronite kehadel või protsessidel ühendeid, mis redutseeriva aine toimel annavad musta või mõne muu värvi.

Nissli aine paljastab värv metüleensinine. Kasutage fluorestsentsmikroskoopiat koos lahuse eelneva sisestamisega tripaflaviin, mis tekitab mittelihakate kiudude punase kuma ja pulbiliste kiudude roheka fluorestsentsi.

Närvikoe fikseerimiseks enne värvimist kasutatakse 10-20% lahust. formaliini, suured tükid (aju) asetatakse 24 tunniks 5% formaliini jaoks füsioloogiline soolalahus(NaCl), viidi seejärel 10% formaliini lahusesse. Pärast seda lõigatakse vajalikud tükid välja ja hoitakse kas värskes formaliinilahuses või muudes fiksaatorites (alkohol, surzha jne).

Mõned meetodid hõlmavad esialgset fikseerimist formaliini segus ammooniumbromiid või alkoholi ja ammoniaagi segus. Kasutatakse ka kloroformi, kaaliumdikromaati, lämmastikhapet.

Seejärel valatakse ajutükid parafiiniplokkidesse, mille abil tehakse kuni 120 mikroni paksused mikrolõiked. Valmis lõigud liimitakse slaidile ja jätkatakse värvimisega. Metallisoolade ladestumine rakumembraanidele muudab need nähtavaks. Kasutatakse ka külmutatud lõikude meetodit, kuivatamist. Preparaadid võivad olla värvitud hematoksüliin, eosiin, pikrofuksiin, kroomhape, tioniin, toluidiinsinine, kresüülviolett, gallotsüaniin, hõbedane, juhtima, kullast, molübdeen, osmiinhape.oh.

5. Kesknärvisüsteemi anatoomia uurimise kaasaegsed meetodid.

Igal teadusel on oma uurimismeetodid, omad viisid uuritava objekti tundmiseks, teadusliku tõe mõistmiseks. Anatoomias kasutatavad meetodid võimaldavad uurida nii inimese välist kui ka sisemist ehitust.

Somatoskoopia- keha kontroll - annab teavet keha ja selle osade kuju, nende pinna, reljeefi kohta. Kere reljeefi moodustavad mitmesuguse kujuga kõrgendused ja süvendid - lohud, augud, vaod, praod, kurrud, nahajooned. Tõusud ja süvendid sõltuvad osaliselt naha enda omadustest, kuid peamiselt anatoomilistest moodustistest, mis paiknevad vahetult naha all või sügavamal.

Somatomeetria- kere ja selle osade mõõtmine - täiendab ülevaatuse andmeid. Inimese kehaehituse hindamiseks, tema füüsilise arengu hindamiseks kasutatakse keha peamisi mõõtmeid - selle kogupikkus (kõrgus), rinnaümbermõõt, õlgade laius, jäsemete pikkus. Üksikute kehaosade mõõtmist kasutatakse paljudes meditsiinivaldkondades. Näiteks kasutatakse kehahoiaku iseloomustamiseks lülisamba mõõtmist, sünnitusabi praktikas on vajalik vaagna suuruse määramine.

Palpatsioon- keha sondeerimine käte ja sõrmedega - võimaldab leida luude identifitseerimispunkte, määrata arterite pulsatsiooni, siseorganite, lümfisõlmede asendit ja seisundit.

Lahkamine ja lahkamine- vanimad, kuid oma väärtust mitte kaotanud meetodid. Anatoomia kui teaduse areng on seotud eelkõige nende kahe meetodiga. Teaduslikel eesmärkidel lahkamisi tehti esmakordselt iidsetes orjariikides. Suur renessansi teadlane Andrei Vesalius töötas välja ja täiustas valmistamismeetodit. Alates Vesaliusest muutub anatoomias peamiseks ettevalmistusmeetodiks, selle abil saadi suurem osa teabest inimkeha ehituse kohta.

Leotamine- ka üks vanimaid anatoomia meetodeid. See on pehmete kudede leotamise protsess, millele järgneb nende pehmenemine ja lagunemine, ning seda kasutatakse eelkõige luude isoleerimiseks.

süstimise meetod- on kasutatud alates 17. - 18. sajandist. Laiemas mõttes tähendab see inimkehas olevate õõnsuste, pragude, tühimike, torukujuliste struktuuride täitmist värvilise või värvitu tihendusmassiga. Seda tehakse sageli selleks, et saada mulje uuritavast õõnsusest või veresoonest, samuti hõlbustada selle veresoone eraldamist ümbritsevatest kudedest. Praegu kasutatakse süstimismeetodit peamiselt vere- ja lümfisoonte uurimiseks. Sellel meetodil oli anatoomiliste teadmiste arendamisel progressiivne roll, eelkõige võimaldas see välja selgitada vere- ja lümfisoonte kulgu ja jaotumist elundites, määrata veresoonte pikkust ja nende kulgemise iseärasusi.

Korrosiooni meetod- üldiselt seisneb see selles, et raskesti tükeldatavad kuded eemaldatakse hapetega söövitades või soojas vees järk-järgult mädanedes. Varem on veresooned või elundi õõnsus täidetud massiga, mis happe toimel kokku ei kuku. Seetõttu on see meetod tihedalt seotud süstimismeetodiga. Korrosioonimeetod annab täpsemaid andmeid veresoonte kulgemise ja paiknemise kohta kui lihtne ettevalmistusmeetod. Meetodi puuduseks on see, et pärast kudede eemaldamist kaovad loomulikud topograafilised suhted elundi üksikute osade vahel.

värvimismeetod- selle eesmärk on keha erinevate elementide kontrastne värvide eristamine. Värvidena kasutatakse loomset (karmiin) või taimset (hematoksüliin) päritolu aineid, tehisaniliini või kivisöetõrva (metüleensinine, magenta) värve või metallisoolasid.

19. sajandil pakuti välja topograafiliste suhete uurimine kehas külmunud surnukehade saagimise meetod (pirogovi lõiked). Selle meetodi eeliseks on see, et teatud kehaosas säilib tegelik seos erinevate moodustiste vahel. Ta võimaldas selgitada anatoomilisi andmeid peaaegu kõigi inimkeha piirkondade kohta ja aitas seeläbi kaasa kirurgia arengule. Seda meetodit kasutades koostas suur vene kirurg ja topograafiline anatoom N. I. Pirogov atlase inimkeha eri suundadest tehtud lõigetest ja pani aluse kirurgilisele anatoomiale. Pirogovo lõikude kohta saadud andmeid saab täiendada teabega kudede suhte kohta, kui teha mitme mikromeetri paksune lõik ja töödelda seda histoloogiliste plekkidega. Sellist meetodit nimetatakse histotopograafia. Histoloogiliste lõikude ja histotopogrammide seeria põhjal on võimalik uuritavat moodustist taastada joonisel või mahus. Selline tegevus on graafiline või plastiline rekonstrueerimine.

19. sajandi lõpul arenes välja saksa anatoom W. Shpaltegolts valgustusmeetod anatoomilised preparaadid. Kudede valgustatuse all mõistetakse sellist elundite või nende osade käsitlemist, mille käigus uuritav objekt muutub valgustatud kudede taustal selgelt nähtavaks. Närvi- ja veresoonkonna uurimiseks kasutatakse kõige sagedamini valgustusmeetodit.

19. sajandi jooksul parandused mikroskoopilised meetodid, ja histoloogia eraldus anatoomiast kui iseseisvast teadus- ja haridusdistsipliinist.

20. sajandi alguses arenes välja Harkovi anatoom V. P. Vorobjov makromikroskoopiline uurimismeetod, mille põhiolemus seisneb peitsitud esemete (väikesed veresooned, närvid) õhukeses ettevalmistamises koos nende hilisema uurimisega binokulaarse suurendusklaasi all. See meetod on avanud uue piiriala anatoomiliste struktuuride uurimiseks. Sellel meetodil on mitmeid sorte: valmistamine langeva tilga all, veekihi all. Seda saab täiendada sidekoe kobestamise hapetega, uuritavate struktuuride (närvid, näärmed) valikuline värvimine, torukujuliste süsteemide (veresooned, kanalid) süstimine värvitud massidega.

Eelmise ja praeguse sajandi vahetusel sisenes anatoomia röntgeni meetod. Röntgenikiirgus avastati 1895. aastal. Ja juba 1896. aastal kasutasid neid luustiku uurimiseks kodumaised anatoomid P. F. Lesgaft ja V. N. Tonkov. Röntgenimeetodi eeliseks anatoomias varem kasutatud meetodite ees on see, et see võimaldab uurida elava inimese ehitust, näha toimivaid organeid ning uurida nende vanusega seotud dünaamikamuutusi. Röntgenianatoomiast on saanud eriline anatoomia osa, mis on kliinikule vajalik. Praegu kasutatakse lisaks fluoroskoopiale ja radiograafiale spetsiaalseid röntgenimeetodeid. stereoradiograafia annab kehaosadest ja elunditest kolmemõõtmelisi pilte. Röntgeni kinematograafia võimaldab uurida elundite liikumist, südame kokkutõmbeid, kontrastaine läbimist veresoonte kaudu. Tomograafia- kiht-kihiline röntgenuuring - annab selge, ilma kõrvaliste kihtideta pildi eemaldatavas kihis paiknevatest anatoomilistest moodustistest. CT skaneerimine võimaldab teil saada pilte pea, pagasiruumi, jäsemete põikilõikudest, millel elundid ja kuded erinevad oma tiheduse poolest. Elektroradiograafia võimaldab teil saada röntgenipilti pehmetest kudedest (nahk, nahaalune kude, sidemed, kõhred, parenhümaalsete organite sidekoe raamistik), mida tavalistel röntgenikiirgustel ei tuvastata, kuna need peaaegu ei viivita röntgenikiirgust. Röntgeni densitomeetria võimaldab määrata mineraalsoolade kogust luudes in vivo.

Anatoomia uurimine elaval inimesel on endoskoopia meetodid- elundite sisepinna vaatlused spetsiaalsete optiliste instrumentide abil: kõri - larüngoskoopia, bronhid - bronhoskoopia, mao - gastroskoopia ja teised.

Ultraheli kajalokatsioon(sonograafia), mis põhineb elundite ja kudede akustiliste omaduste erinevustel, võimaldab saada pilte mõnest raskesti röntgenitatavast elundist, nagu maks, põrn.

Mitmete anatoomiliste probleemide lahendamiseks histoloogiline ja histokeemilised meetodid kui uurimisobjekti on võimalik tuvastada valgusmikroskoopiat võimaldavate suurendustega.

Aktiivselt anatoomiasse tutvustatud elektronmikroskoopia, mis võimaldab näha nii õhukesi struktuure, et need pole valgusmikroskoobis nähtavad. paljutõotav skaneeriva elektronmikroskoopia meetod, mis annab uuritavast objektist justkui kolmemõõtmelise pildi nii väikese kui ka suure suurendusega.

Kaasaegne anatoomia, nagu meditsiin üldiselt, areneb kooskõlas teaduse ja tehnika arenguga. See väljendub anatoomia vahekorra tugevnemises teiste teadusdistsipliinidega, eksperimendi rolli suurenemises teaduslikus uurimistöös, uute tehniliste meetodite rakendamises. Anatoomias kasutatakse füüsika, keemia, küberneetika, informaatika, matemaatika, mehaanika saavutusi. Anatoomia seab oma saavutused meditsiini teenistusse.

6. Teised morfoloogiateadused on anatoomiaga tihedalt seotud:

Tsütoloogia;

Histoloogia on kudede teadus;

Embrüoloogia, mis uurib sugurakkude moodustumise protsesse, viljastumist, organismide embrüonaalset arengut .

1. Anatoomia (kreeka" anatemno”- lahkan) on inimkeha ehitust käsitlevatest teadustest vanim. Selle teaduse osa - kesknärvisüsteemi anatoomia - uurib närvisüsteemi morfoloogiat organite tasandil.

2. Kesknärvisüsteemi histoloogia (kreeka" histos"- kude) uurib närvisüsteemi struktuuri kudede ja raku tasandil.

3. Tsütoloogia (kreeka" tsütos"- rakk) uurib neuronite ja gliiarakkude struktuuri rakulisel ja subtsellulaarsel tasemel.

4. Biokeemia ja molekulaarbioloogia uurib närvisüsteemi neuronite ja abirakkude ehitust subtsellulaarsel ja molekulaarsel tasandil.

5. Närvisüsteemi talitlusi uurib eksperimentide ja selles toimuvate protsesside modelleerimise abil järgmine distsipliinide rühm:

6. Kesknärvisüsteemi füsioloogia uurib närvirakkude üldisi talitlusmustreid, kesknärvisüsteemi üksikuid struktuure ja kogu närvisüsteemi tervikuna.

7. Analüsaatorite füsioloogia (sensoorsed süsteemid) uurib informatsiooni tajuvate ja töötlevate struktuuride tööd.

Rakendusliku tähtsusega teadustest on kesknärvisüsteemi anatoomia tundmine vajalik ennekõike ravim (7). Kesknärvisüsteemi funktsioone ja nende seost aju erinevate osade ja struktuuridega uurivad arstid, kes jälgivad haigeid inimesi *. Eriti suure panuse andsid selliste meditsiinierialade arstid nagu neuropatoloogia ja neurokirurgia, otolarüngoloogia ja psühhiaatria.

Kõik ülaltoodud teadused uurivad kesknärvisüsteemi tööd objektiivsete uurimismeetodite abil. Erinevalt neist, psühholoogia (8) ja neuropsühholoogia (9) rõhutavad inimese psüühika ja selle aluseks olevate kesknärvisüsteemi protsesside subjektiivseid, kaudseid uurimismeetodeid. Kaasaegne psühholoogia, eriti kliiniline psühholoogia, pole aga enam mõeldav ilma täppisteaduste poolt omandatud teadmisteta, mis võimaldavad mitte spekulatiivselt oletada, vaid täpselt teada psüühikahäirete tekkemehhanisme ja võimalikke viise nende kompenseerimiseks. See on tingitud asjaolust, et hoolimata asjaolust, et inimesel on keeruline psüühika, kõne, teadvus, intellekt ja tema olemasolu sotsiaalne olemus (mida nimetatakse inimese vaimseks ja sotsiaalseks olemuseks), jääb ta bioloogiliseks subjektiks. ja bioloogilised seadused määravad või vähemalt mõjutavad inimese kõiki kõrgemaid funktsioone.

Kesknärvisüsteemi uurimine algab traditsiooniliselt anatoomiaga, kuna ilma närvisüsteemi põhielementide ja nende seoste tundmiseta on kesknärvisüsteemi funktsioonide uurimine võimatu. Uurides seost käitumise ning kesknärvisüsteemi struktuuride ja funktsioonide vahel, tuginevad teadlased kaasaegse neuroloogia peamine postulaat (neurobioloogia), mis väidab, et kogu inimese vaimse tegevuse mitmekesisus ja ainulaadsus, terve ja haige aju funktsioonid on seletatavad aju peamiste anatoomiliste struktuuride struktuuriliste iseärasuste ja omadustega

7. Kesknärvisüsteemi anatoomia tähendus psühholoogiale.

humanitaarteadus on teadus, mis uurib inimkeha ehitust ja selle struktuuri arengumustreid. Moodne anatoomia, olles osa morfoloogiast, ei uuri mitte ainult struktuuri, vaid püüab selgitada ka teatud struktuuride kujunemise põhimõtteid ja mustreid. Kesknärvisüsteemi (KNS) anatoomia on osa inimese anatoomiast. Kesknärvisüsteemi anatoomia tundmine on vajalik, et mõista psühholoogiliste protsesside seost teatud morfoloogiliste struktuuridega nii normaalsetes kui patoloogilistes tingimustes.

8. Ontogenees on organismi individuaalne areng, mille käigus muunduvad selle morfofüsioloogilised, füsioloogilised, biokeemilised ja tsütogeneetilised tunnused. Ontogenees hõlmab kahte protsesside rühma: morfogenees ja paljunemine (paljunemine): morfogeneesi tulemusena moodustub paljunemisküps isend. Ontogeneesile on iseloomulik stabiilsus – homöorees. Homöorees on stabiliseeritud sündmuste voog, mis on keha ehituse, arengu ja toimimise geneetilise programmi elluviimise protsess.

Ontogenees jaguneb kaheks perioodiks: sünnieelne (emakasisene) ja postnataalne (pärast sündi). Esimene jätkub viljastumise hetkest ja sigooti moodustumisest kuni sünnini; teine ​​on sünnist surmani. ontogeneesi arenev organism

Sünnieelne periood jaguneb omakorda kolmeks: esialgne, embrüonaalne ja looteperiood. Inimese esialgne (implantatsioonieelne) periood hõlmab esimest arengunädalat (viljastumise hetkest kuni emaka limaskesta implantatsioonini). Embrüonaalne (prefetaalne, embrüonaalne) periood - teise nädala algusest kuni kaheksanda nädala lõpuni (alates implantatsiooni hetkest kuni elundi munemise lõpetamiseni). Loote (loote) periood algab üheksandast nädalast ja kestab kuni sünnini. Sel ajal on keha suurenenud kasv.

Ontogeneesi sünnijärgne periood jaguneb üheteistkümneks perioodiks: 1. - 10. päev - vastsündinud; 10. päev - 1 aasta - imikueas; 1--3 aastat - varajane lapsepõlv; 4-7 aastat - esimene lapsepõlv; 8-12 aastat vana - teine ​​lapsepõlv; 13--16 aastat - noorukieas; 17--21 aastat vana - nooruslik vanus; 22-35 aastat - esimene küps vanus; 36--60 aastat - teine ​​küps vanus; 61 - 74 aastat - vanadus; alates 75 eluaastast - vanadus, pärast 90 aastat - saja-aastased. Ontogenees lõpeb loomuliku surmaga.

Ontogeneesi sünnieelne periood algab isas- ja naissugurakkude sulandumisega ning sügoodi moodustumisega. Sügoot jaguneb järjestikku, moodustades sfäärilise blastula. Blastula staadiumis toimub edasine killustumine ja primaarse õõnsuse ehk blastokoeli moodustumine.

Aju embrüogenees algab kahe primaarse ajuvesiikuli arenemisega ajutoru eesmises (rostral) osas, mis tulenevad neuraaltoru seinte (archencephalon ja deuterencephalon) ebaühtlasest kasvust. Deuterentsefalon, nagu ajutoru (hiljem seljaaju) tagumine osa, asub nookordi kohal. Tema ette laotakse Archencephalon. Seejärel, neljanda nädala alguses, jaguneb embrüos olev deuterentsefaal keskmisteks (mesencephalon) ja rombikujulisteks (rombencephalon) mullideks. Ja peaajupõletik muutub selles (kolme põie) staadiumis eesmise ajupõieks (prosencephalon). Eesaju alumises osas ulatuvad välja haistmissagarad (millest arenevad ninaõõne haistmisepiteel, haistmissibulad ja traktid). Aju eesmise vesiikuli dorsolateraalsetest seintest ulatuvad välja kaks oftalmoloogilist vesiikulit. Edaspidi arenevad neist välja võrkkest, nägemisnärvid ja traktid.

Embrüonaalse arengu kuuendal nädalal jagunevad eesmised ja rombikujulised mullid kumbki kaheks ja algab viiemulliline staadium.

Eesmine mull – telentsefalon – on jagatud pikisuunalise piluga kaheks poolkeraks. Ka õõnsus jaguneb, moodustades külgmised vatsakesed. Medulla suureneb ebaühtlaselt ja poolkerade pinnale tekivad arvukad voldid - keerdud, mis on üksteisest eraldatud enam-vähem sügavate soonte ja lõhedega.Iga poolkera jaguneb neljaks labaks, vastavalt sellele külgvatsakeste õõnsused. jagunevad ka 4 osaks: mao keskosa ja kolm sarve. Embrüo aju ümbritsevast mesenhüümist arenevad ajumembraanid. Perifeerias paikneb ka hallollus, moodustades ajukoore

poolkerades ja poolkerade põhjas, moodustades subkortikaalseid tuumasid.

Eesmise põie tagumine osa jääb jagamata ja seda nimetatakse nüüd diencefaloniks. Funktsionaalselt ja morfoloogiliselt on see seotud nägemisorganiga. Staadiumis, mil piirid telentsefaloniga on halvasti väljendunud, moodustuvad külgseinte basaalosast paaritud väljakasvud - silmamullid, mis on silmavarte abil ühendatud nende päritolukohaga, mis hiljem muutuvad nägemisnärvideks. . Suurima paksuse saavutavad vaheseina külgseinad, mis muudetakse visuaalseteks tuberkuliteks ehk talamuks. Vastavalt sellele muutub kolmanda vatsakese õõnsus kitsaks sagitaalseks lõheks. Ventraalses piirkonnas (hüpotalamuses) moodustub paaritu eend - lehter, mille alumisest otsast tuleb hüpofüüsi tagumine ajusagara - neurohüpofüüs.

Kolmas ajupõiik muutub keskajuks, mis areneb kõige lihtsamalt ja jääb kasvus maha. Selle seinad paksenevad ühtlaselt ja õõnsus muutub kitsaks kanaliks - Sylviuse akveduktiks, mis ühendab III ja IV vatsakest. Seljaseinast areneb nelipealihas, kõhuseinast aga keskaju jalad.

Romboidne aju jaguneb tagumiseks ja lisaajuks. Väikeaju moodustub tagumisest osast - kõigepealt väikeaju vermisest ja seejärel poolkeradest, samuti sillast. Lisaaju muutub medulla piklikuks. Romboidse aju seinad paksenevad - nii külgedelt kui ka alt, kõige õhema plaadi kujul jääb ainult katus. Õõnsus muutub IV vatsakeseks, mis on ühenduses Sylviuse akveduktiga ja seljaaju keskkanaliga.

Ajupõiekeste ebaühtlase arengu tagajärjel hakkab ajutoru painduma (keskaju tasemel - parietaalne läbipaine, tagaaju piirkonnas - sild ja abiaju üleminekupunktis dorsaalsesse – kuklaluu ​​läbipaine). Parietaalne ja kuklaluu ​​on pööratud väljapoole ja sild sissepoole.

Primaarsest ajupõiest moodustuvad ajustruktuurid: keskmine, tagaaju ja abiaju moodustavad ajutüve (trüncus cerebri). See on seljaaju rostraalne jätk ja sellel on ühised struktuurilised tunnused. Mööda seljaaju ja ajutüve külgseinu läbides jagab paaristatud piirsoon (sulcus limitons) ajutoru peamiseks (ventraalseks) ja pterigoidseks (dorsaalseks) plaadiks. Põhiplaadist moodustuvad motoorsed struktuurid (seljaaju eesmised sarved, kraniaalnärvide motoorsed tuumad). Sensoorsed struktuurid (seljaaju tagumised sarved, ajutüve sensoorsed tuumad) arenevad pterigoidplaadist piiripealse vao kohal ja autonoomse närvisüsteemi keskused arenevad piirivagu enda sees.

Archencephaloni derivaadid (telencephalon ja diencyphalon) loovad subkortikaalseid struktuure ja ajukoore. Siin puudub põhiplaat (see lõpeb keskajuga), seetõttu puuduvad motoorsed ja autonoomsed tuumad. Pterigoidplaadist areneb kogu eesaju, seega sisaldab see ainult sensoorseid struktuure.

Inimese närvisüsteemi sünnijärgne ontogenees algab lapse sündimise hetkest. Vastsündinu aju kaalub 300-400 g.Varsti pärast sündi peatub uute neuronite teke neuroblastidest, neuronid ise ei jagune. Kaheksandaks sünnijärgseks kuuks aga kahekordistub aju kaal ja 4-5. eluaastaks kolmekordistub. Aju mass kasvab peamiselt protsesside arvu suurenemise ja nende müeliniseerumise tõttu. Meeste aju saavutab maksimumkaalu 20-29-aastaselt ja naiste aju 15-19-aastaselt. 50 aasta pärast aju lameneb, selle kaal langeb ja vanemas eas võib see väheneda 100 g võrra.

9. närvitoru- rudiment 0% A6% D0% 9D% D0% A1 "KNS 0% A5% D0% BE% D1% 80% D0% B4% D0% BE% D0% B2% D1% 8B% D0% B5" akordid, moodustub protsessis 0% 9D% D0% B5% D0% B9% D1% 80% D1% 83% D0% BB% D1% 8F% D1% 86% D0% B8% D1% 8F "närviplaadi neurulatsioon .

Ristlõikes, vahetult pärast moodustamist, saab selles eristada kolme kihti, seestpoolt väljapoole:

Ependüüm - pseudokihistunud kiht, mis sisaldab algelisi rakke.

Vahevöötsoon ehk vahevöökiht – sisaldab ependüümikihist väljuvaid migreeruvaid D0% B8% D1% 8F "prolifereeruvaid rakke.

Välimine marginaalne tsoon on kiht, kus moodustuvad närvikiud.

Neuraaltoru keskel on esmane vatsake.

Neuraaltoru areng toimub vastavalt järgmisele mehhanismile: rakud jagunevad 0% AD% D0% BF% D0% B5% D0% BD% D0% B4% D0% B8% D0% BC% D0% B0 "ependyma enter vahevöö tsoon, kus nad arenevad kas mööda neuroblastide rada - need on fikseeritud ja lasevad välja protsesse, mis ulatuvad välimisse marginaalvööndisse või mööda glioblastide rada - nad ei kinnitu ja muutuvad gliiarakud.

Närviliste, rasvade elementide tuvastamise meetodid. elastsed struktuurid. Histokeemia.

Närvikoe värvimine Närvikoe morfoloogilistes uuringutes valgusoptilisel tasandil kasutatakse suurt hulka värvimismeetodeid, millest paljusid muudetakse. Enamasti on need valikulised (valikulised) meetodid, mida kasutatakse ühe või kahe elemendi tuvastamiseks. Konkreetsel eesmärgil kasutatakse kombineeritud meetodeid.

KINNITAMINE Lihtsatest fiksaatoritest närvikoe uurimisel kasutatakse kõige sagedamini 10-20% formaldehüüdi lahust ning 96% ja 100% alkoholi, fikseerivatest segudest - sublimaat ja püridiin. Samuti on olemas spetsiifilised fiksaatorid, mida kasutatakse ainult närvikoe elementide uurimisel.

Ramon y Cajal fikseeriv segu (glia tuvastamiseks):

neutraalne formaliin 15 ml ammooniumbromiid 20 g

destilleeritud vesi 85 ml

Segu kasutatakse glia hõbetamiseks Ramon y Cajal - Hortega järgi. Õhukeste (kuni 1,5 cm) materjalitükkide fikseerimise kestus on 2-15 päeva. Pesemine voolavas vees.

Ramon y Cajal fikseeriv segu (neurofibrillide tuvastamiseks):

püridiin 40 ml? 96% alkohol 30 ml

Fikseerimise kestus 2 tundi Pesemine voolavas vees 1 tund.

DESHIDRATSIOON

Närvikoe töötlemise tunnuseks on selle põhjalik dehüdratsioon. 5–6 mm paksuste tükkide kuivatamiseks kasutatakse järgmist skeemi:

50% alkoholi 2 tundi

70% alkoholi 6 tundi

80% alkoholi 6 tundi

96% alkoholi 6 tundi

100% alkohol I 6 tundi

100% alkohol II 6 tundi

Dehüdratsiooniaeg 32 h

MÕNED NÄRVIKOE TÄITMISE OMADUSED

Närvikude histoloogiliseks uurimiseks valatakse parafiini, tselloidiini ja želatiini. Parafiini ja tselloidiini valamise tehnikal ei ole selles etapis närvikoe töötlemisel mingeid iseärasusi.

Snesarevi järgi želatiini valades Meetod sobib embrüoloogilisteks uuringuteks. Selle eeliseks on see, et see ei kortsu materjali. Soovitatav sidekoe peenrakulise struktuuri paljastamiseks, aga ka mõneks tsütoloogiliseks uuringuks.

Täidiseks võta värvitu läbipaistev toiduželatiin ja valmista sellest esmalt 25% lahus. Selleks lõigake peeneks vajalik kogus želatiini, valage laia suuga purki ja asetage 37 ° C juures termostaadi, kuni see lahustub. Pärast seda lahjendatakse osa valmistatud želatiinist pooleks sooja 1% fenooli (karboolhappe) lahusega ja nii saadakse 12,5% lahus. Želatiinilahuseid on kõige parem valmistada väikestes kogustes vastavalt vajadusele. Pärast fikseerimist viiakse põhjalikult pestud materjal 12,5% želatiinilahusesse, kus seda hoitakse olenevalt tükkide suurusest 1-2 tundi kuni 1-2 päeva, seejärel viiakse see üle 25% želatiini lahusesse. 37 °C juures sama kaua. Pärast valamist järgneb kiire jahutamine külmikus ja tihendamine 5-10% formaliinis. Plokid lõigatakse ainult külmutatud mikrotoomil.

Histokeemia, histoloogia haru, mis uurib loomsete ja taimede kudede keemilisi omadusi. G. ülesandeks on selgitada välja ainevahetuse tunnused koerakkudes (vt Rakk) ja interstitsiaalses keskkonnas. See uurib muutusi rakkude omadustes arengu käigus, seost töö, ainevahetuse ning küpsete rakkude ja kudede uuenemise vahel. Histokeemiliste tehnikate põhiprintsiip on rakkude teatud keemilise komponendi sidumine värvainega või värvi moodustumine reaktsiooni käigus. Mitmed meetodid (tsütofotomeetria, luminestsents- ja interferentsmikroskoopia) lähtuvad ainete füüsikalistest omadustest. Erinevate histokeemiliste meetodite abil on võimalik määrata paljude ainete paiknemist ja kogust kudedes, nende ainevahetust (koe autoradiograafia), seoseid submikroskoopilise struktuuriga (elektrooniline morfoloogia), ensüümide aktiivsust. Immunohistokeemia on samuti paljulubav suund. Kõige täpsemaid histokeemilisi meetodeid, mis võimaldavad uurida raku struktuuri, nimetatakse tsütokeemilisteks (vt Tsütokeemia).

Esimesed spetsiaalsed histokeemilised uuringud kuulusid prantsuse teadlasele F. Raspailile (1825-34). G. hakkas intensiivselt arenema alates 40ndatest. 20. sajand, mil ilmusid usaldusväärsed meetodid valkude, nukleiinhapete, lipiidide, polüsahhariidide ja mõnede anorgaaniliste komponentide määramiseks rakus. Histokeemiliste meetodite abil õnnestus näiteks esmakordselt näidata seost RNA koguse ja valgusünteesi muutuste ning DNA sisalduse püsivuse vahel kromosoomikomplektis.

4. Mikroskoopia tüübid.

Valgusmikroskoopia meetodid
Valgusmikroskoopia meetodid (valgustus ja vaatlus). Mikroskoopiameetodid valitakse (ja esitatakse konstruktiivselt) sõltuvalt uuritavate objektide olemusest ja omadustest, kuna viimased, nagu eespool märgitud, mõjutavad pildi kontrastsust.

Bright field meetod ja selle sordid
Ereda välja meetodit läbiva valguse korral kasutatakse läbipaistvate preparaatide uurimisel, milles on neelavad (valgust neelavad) osakesed ja detailid. Need võivad olla näiteks õhukesed värvilised lõigud loomsetest ja taimsetest kudedest, õhukesed mineraalide lõigud jne.

Tumevälja meetod ja selle sordid
Kasutatakse spetsiaalset kondensaatorit, mis tõstab esile värvimata materjali kontrastsed struktuurid. Sel juhul langevad illuminaatorist tulevad kiired preparaadile kaldus nurga all ja uuritav objekt näib olevat valgustatud pimedas väljas.

Faasikontrastsuse meetod
Kui valgus läbib värvilisi objekte, muutub valguslaine amplituud ja kui valgus läbib värvimata objekte, muutub valguslaine faas, mida kasutatakse suure kontrastsusega pildi saamiseks.

Polariseeriv mikroskoopia
Polariseeriv mikroskoopia võimaldab uurida koekomponentide ultrastruktuurset organiseerumist anisotroopia ja/või kaksikmurde analüüsi põhjal

Häirekontrastsuse meetod
Häirekontrastsuse meetod (interferentsmikroskoopia) seisneb selles, et iga kiir jaguneb kaheks, sisenedes mikroskoopi. Üks saadud kiirtest suunatakse läbi vaadeldava osakese, teine ​​- mööda seda mööda mikroskoobi sama või täiendavat optilist haru. Mikroskoobi okulaarses osas ühenduvad mõlemad kiired uuesti ja segavad üksteist. Üks objekti läbivatest kiirtest jääb faasis maha (omab teeerinevuse võrreldes teise kiirtega). Selle viivituse väärtust mõõdab kompensaator

Uurimismeetod luminestsentsi valguses
Luminestsentsvalguses uurimismeetod (luminestsentsmikroskoopia ehk fluorestsentsmikroskoopia) seisneb mikroskoobi all mikroobjektide rohekasoranži kuma vaatlemises, mis tekib siis, kui neid valgustatakse sinakasvioletse valguse või ultraviolettkiirtega, mis pole nähtavad. silm.

ultraviolett mikroskoopia. See põhineb ultraviolettkiirte kasutamisel lainepikkusega alla 380 nm, mis võimaldab suurendada läätsede eraldusvõimet 0,2...0,3 µm-lt 0,11 µm-ni. Nõuab spetsiaalsete ultraviolettmikroskoopide kasutamist, mis kasutavad ultraviolettvalgusteid, kvartsoptikat ja UV-nähtavaks muundurit. Paljud rakke moodustavad ained (näiteks nukleiinhapped) neelavad selektiivselt ultraviolettkiirgust, mille põhjal määratakse nende ainete hulk rakus.