urogenitaalinen klamydioosi

Tutkimusmateriaali Kaapiminen virtsaputkesta tai kohdunkaulan kanavasta, eturauhasen erite, virtsan sedimentti. Vastasyntyneillä tutkimusmateriaalina käytetään silmien sidekalvon ja nielun takaseinän raapumista. Tytöillä ulkosynnyttäjän kaavinta käytetään tutkimusmateriaalina, pojilla virtsaa.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet 10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen, on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö.

Ominaisuudet materiaalin ottamiseen virtsaputkesta

• ennen materiaalin ottamista potilasta kehotetaan pidättäytymään virtsaamasta 1,5-2 tunnin ajan;
• välittömästi ennen materiaalin ottamista virtsaputken ulkoinen aukko on käsiteltävä steriilillä suolaliuoksella kostutetulla vanupuikolla;
• märkivien eritteiden läsnä ollessa on suositeltavaa ottaa raapi 15-20 minuuttia virtsaamisen jälkeen; jos eritteitä ei ole, on tarpeen hieroa virtsaputkea koettimella materiaalin ottamiseksi;
• naisilla ennen anturin asettamista virtsaputkeen se hierotaan häpyniveleen;
• naisten virtsaputkeen anturi työnnetään 1,0-1,5 cm:n syvyyteen, miehillä - 3-4 cm:n syvyyteen, ja sitten tehdään useita kiertoliikkeitä; lapsilla tutkimusmateriaali otetaan vain virtsaputken ulkoaukosta;

Kohdunkaulan kanavasta materiaalin ottamisen ominaisuudet

• ennen materiaalin ottamista on tarpeen poistaa lima vanupuikolla ja käsitellä kohdunkaula steriilillä suolaliuoksella;
• anturi työnnetään kohdunkaulan kanavaan 0,5-1,5 cm syvyyteen;
• kohdunkaulan kanavan eroosioiden esiintyessä ne on käsiteltävä steriilillä suolaliuoksella ja materiaali on otettava terveen ja muuttuneen kudoksen rajalta;
• kun koetinta poistetaan, sen kosketus emättimen seiniin on suljettava kokonaan pois;

Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimittamiseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -20 0 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukku. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Eturauhasen salaisuuden ottamisen ominaisuudet

Ennen eturauhasen salaisuuden ottamista, terskan penis käsitellään steriilillä, suolaliuoksella kostutetulla vanupuikolla. Eturauhasen salaisuus otetaan esirauhashieronnan jälkeen peräsuolen kautta. Lääkäri suorittaa painehieronnan useilla voimakkailla liikkeillä tyvestä yläosaan. Sitten eturauhasen salaisuus puristetaan ulos kavernoisesta osasta. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa.

Virtsan ottamisen (keräämisen) ominaisuudet

Virtsa kerätään aamulla tyhjään mahaan nukkumisen jälkeen tai aikaisintaan 2-3 tuntia viimeisen virtsaamisen jälkeen. Aamuvirtsa asettuu 1 tunnin ajan, sitten sulautuu varovasti jättäen vain alaosan - noin 10 ml. Tämä jäännös kaadetaan sentrifugiputkeen ja sentrifugoidaan. Sitten supernatantti valutetaan uudelleen ja sakka (ilman nestettä) siirretään koettimella PCR-putkeen.

Virtsaa ei saa jäähdyttää tai pakastaa ennen kuin sedimentti on saatu.

Ominaisuudet materiaalin ottamisesta nielun takaseinästä

Kertakäyttöinen anturi työnnetään pehmeän kitalaen taakse nenänieluun ja viedään nielun takaseinää pitkin. Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Ominaisuudet materiaalin ottamiseen silmien sidekalvosta

Jos märkivä vuoto on runsasta, se poistetaan steriilillä, suolaliuoksella kostutetulla pumpulipuikolla. Raapiminen otetaan alaluomen sisäpinnalta liikuttamalla kohti silmän sisäkulmaa. Kaapimista otettaessa on tarpeen pitää silmäluomea käsilläsi, jotta silmäripset eivät kosketa mittapäätä räpäyttäessään.

Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on tiiviisti suljettu. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

Urogenitaalinen mykoplasmoosi

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputki, emätin, kohdunkaulan kanava, virtsa (aamun ensimmäisen ja keskiosan sentrifugaatti), eturauhasen erite, siemenneste.

Materiaalin ottamisen ominaisuudet emättimestä

Materiaali on otettava ennen manuaalista tarkastusta. Ennen käsittelyä peili voidaan kostuttaa kuumalla vedellä; antiseptisten aineiden käyttö peilin käsittelyyn on vasta-aiheista. Emätinvuoto kerätään steriilillä kertakäyttöisellä anturilla takaraivosta tai limakalvon patologisesti muuttuneilta alueilta ja asetetaan koeputkeen DNA-EXTPESS-kuljetusväliaineen kanssa. Tytöillä materiaali otetaan emättimen eteisen limakalvolta ja joissakin tapauksissa emättimen takaosasta kalvonrenkaiden kautta. Sen jälkeen kun koetin on syötetty kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Injektiopullo on suljettu ja merkitty. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

GONORRHEA

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputki, kohdunkaulan kanava, eturauhasen erite, virtsan sedimentti.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Ks. urogenitaalinen klamydia.

10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö. Naisten tutkimusmateriaali tulee ottaa ennen kuukautisia tai 1-2 päivää kuukautisten päättymisen jälkeen. Ennen materiaalin ottamista on välttämätöntä pidättäytyä virtsaamisesta 3-4 tunnin ajan ja seksuaalisesta kanssakäymisestä. Naiset tutkimuksen aattona eivät saa suorittaa ulkoisten sukuelinten wc-istuinta ja huuhtelua. Testimateriaalissa ei saa olla veren epäpuhtauksia. Vapaasti virtaavaa virtsaputkea ei saa ottaa tutkimukseen. Eturauhasen salaisuus tulee ottaa vasta eturauhastulehduksen akuuttien ilmenemismuotojen päättymisen jälkeen. Hitaassa ja kroonisessa gonorreassa on provokaatio tarpeen ennen tutkimusta.

Provokaatiomenetelmät tippuriin:

• biologinen: gonovacciinin (500 miljoonaa mikrobirunkoa) käyttöönotto aikuisille kerran, lihaksensisäisesti, yli 3-vuotiaille lapsille - 100-200 miljoonaa mikrobirunkoa; alle 3-vuotiaille lapsille gonovaccinin käyttöönottoa ei suositella;
• lämpö: 3 päivän diatermia vatsa-emätin-sakraalisten elektrodien järjestelyillä 30, 40, 50 minuutin ajan tai induktiotermia 10, 15, 20 minuutin ajan; on parasta ottaa materiaali virtsaputkesta, kohdunkaulan kanavasta 1 tunti jokaisen lämmittelyn jälkeen;
• mekaaninen: metallisuojuksen asettaminen naisten kohdunkaulaan 4 tunniksi, virtsaputken hieronta miehillä bougielle 10 minuutin ajan;
• ravinto: suolaisen, mausteisen ruoan ja alkoholin nauttiminen 24 tuntia ennen tutkimusta.

Materiaali otetaan provokaation jälkeen ja 24-48-72 tunnin kuluttua.

Luotettavimpien tulosten saamiseksi on tarpeen suorittaa toistuvia tutkimuksia.

TRIKOMONIASI

Tutkimusmateriaali Irrotettava virtsaputkesta (miehillä), emättimestä, eturauhasen eritteestä.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Ks. urogenitaalinen klamydia, urogenitaalinen mykoplasmoosi.

TUBERKULOOSI (keuhkojen ulkopuoliset kohdat)

Tutkimusmateriaali Virtsa, vanupuikkoja kohdunkaulan kanavasta, virtsaputkesta.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet 10 päivää ennen materiaalin ottamista tutkimukseen, on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö. Katso urogenitaalinen klamydia.

HENGITYSTEITOSAIraudet, JOIHIN LIITTYVÄT Mycoplasma pneumoniae

Tutkimusmateriaali Nenänielun vanupuikko.

Vanupuikko nenänielusta otettaessa Vanupuikko otetaan tyhjään mahaan tai aikaisintaan 2-4 tuntia ruokailun jälkeen. Materiaalia otettaessa tarvitaan hyvä valaistus, potilas istuu valonlähdettä vasten, kielen juurta painetaan lastalla alas, materiaali otetaan steriilillä anturilla koskematta kieltä, suun limakalvoa ja hampaita, ja lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Materiaalin ottamisen jälkeen koetin lasketaan koeputkeen DNA-EXPRESS-kuljetusalustalla. Kun anturi on asetettu kuljetusväliaineeseen, sitä käännetään useita kertoja ja poistetaan sitten putkesta. Putki on suljettu. Jos biologisen materiaalin kuljetusaika ottamisesta sen laboratorioon toimitukseen on yli 2 tuntia, putki on pakastettava -200 C:een. Biologisen materiaalin kuljetus tulee suorittaa vain kylmälaukussa. Pakastettua biologista materiaalia voidaan säilyttää enintään 2 viikkoa.

RUOKOHTASULKKA-SAIraudet (gastriitti, maha- tai pohjukaissuolen mahahaava), JOIHIN LIITTYVÄT Helicobacter pylori

Tutkimusaineisto Mahalaukun antrumin biopsiat, pohjukaissuolen biopsiat, ikenien koepalat, parodontaalitaskusta tehdyt sivelynäytteet.

Biopsiamateriaalin ottamisen ominaisuudet

Biopsiamateriaali otetaan endoskooppisen tutkimuksen yhteydessä. Ennen H. pylori -hoidon aloittamista mahalaukun antrumista otetaan biopsianäyte. Hoitoa seurattaessa otetaan koepalanäyte mahalaukun kehosta aikaisintaan 4 viikon kuluttua anti-Helicobacter-hoidosta. Otettu koepalanäyte lasketaan steriiliin kuivaan koeputkeen (eppendorf) ja toimitetaan välittömästi laboratorioon. Pidempää säilytystä varten on mahdollista jäädyttää otettu biopsia -20 0 С lämpötilassa.

Ominaisuudet biopsianäytteiden ottamisesta ikenistä, sivelynäytteitä parodontaalitaskusta ja syljestä

Biopsiamateriaalia ikenistä, sivelynäytteitä parodontaalitaskusta ja sylkeä otetaan potilailta, joilla on ollut maha- pohjukaissuolen patologia ientulehduksen ja parodontaalisen sairauden yhteydessä.

Otettu koepalanäyte lasketaan steriiliin kuivaan koeputkeen (eppendorf) ja toimitetaan välittömästi laboratorioon. Pidempää säilytystä varten on mahdollista jäädyttää otettu biopsia -20 0 С lämpötilassa.

Parodontaalitaskusta otetut sivelynäytteet kerätään steriiliin koeputkeen (eppendorf), jossa on suolaliuosta. Tässä tapauksessa koeputkia voidaan säilyttää jääkaapissa (+4 0 C - +6 0 C) enintään 12 tuntia ja ne kuljetetaan jääkaappipussissa.

VIRUSINfektiot

Herpes simplex -virus II; Citomegalovirus; H. papilomavirus 16, 18

Tutkittu materiaali - tahrat

Herpesinfektion yhteydessä raapiminen on parasta ottaa sukupuolielinten vaurioista (rakkulat, haavaumat). Jos sukupuolielinten vaurioita ei ole, kohdunkaulan kanavasta otetaan raavi. Sytomegalovirusinfektion diagnosoinnissa tutkimukseen voidaan käyttää nielun takaseinämän sivelyä, emättimestä, virtsaputkesta ja kohdunkaulan kanavasta tehtyjä raapia, sylkeä ja aivo-selkäydinnestettä. Ihmisen papilloomavirusinfektiota diagnosoitaessa vanupuikko nenänielusta, silmän sidekalvosta, kaapiminen kohdunkaulan kanavasta, kohdunkaulasta, ts. limakalvot (keratinoitumaton epiteeli).

Biologisen materiaalin ottaminen Biologisen materiaalin ottaminen tulee mahdollisuuksien mukaan suorittaa infektion pahenemisaikana. Katso urogenitaalinen klamydia, urogenitaalinen mykoplasmoosi.

Herpes simplex -virus I; Herpes simplex -virus II; Herpes simplex -virus VI
Citomegalovirus; Epstein Barr virus

Tutkittu materiaali Alkuperäinen veri.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin ottaminen ja kuljetusolosuhteet Veri on suositeltavaa ottaa tutkimukseen tyhjään mahaan.

Laskimoverta 1-1,5 ml otetaan steriiliin koeputkeen (eppendorf), jonka tilavuus on 1,5 ml EDTA-liuoksella. Koeputki, jossa on verta, säilyy jääkaapissa (+4 0 C - +6 0 C) enintään 24 tuntia. Älä jäädytä putkea. Tutkimus tehdään plasmasta ja verisoluista.

HBV-DNA; HBV-DNA-konsentraation määritys kilpailevalla PCR:llä
HCV-RNA (puolikvantitatiivinen arviointi) + anti-HCV; HCV-RNA, jossa on HCV+ anti-HCV-genotyypitys; hepatiitti G; TTV-DNA

Tutkittu materiaali Veriseerumi.

Potilaan valmistelu, biologisen materiaalin kerääminen ja kuljetusolosuhteet Laskimoveren kerääminen ja seerumin valmistus, katso kappale homonipitoisuuden määrittäminen ELISA:lla. Seerumi, joka ei sisällä erytrosyyttiepäpuhtauksia, on tutkimuksen kohteena. Jos testiverinäytettä on tarpeen säilyttää pitkään (vain B-, C-, G-hepatiitti), on otettava 1 ml seerumia tai veriplasmaa ja säilytettävä se -20 0 C lämpötilassa ilman yli 2 viikkoa.

KATTAVA TUTKIMUS BAKTEERIVAGINOOSISTA

Tutkittu materiaali Naarmuja emättimen takaosan alemmasta haarasta.

Bakteerivaginoosin kattavaan diagnoosiin tarvitaan:
Ota epiteelisolujen raapiminen emättimen taka- tai sivusuunnasta erilliselle kertakäyttöiselle lasilevylle, allekirjoita ja kuivaa. Säilytä lasi huoneenlämmössä.
Poista lima ja ota epiteelisolut raapumalla emättimen taka- tai lateraalisesta forniksista kertakäyttöisellä kohdunkaulaharja-anturilla PCR-putkeen DNA-EXPRESS-reagenssilla. Säilytä koeputkea pakastimessa -20°C:ssa enintään 10 päivää.
Lähetä lasilevy ja PCR-putki "Litekh"-laboratorioon täysin täytettynä.

Biologisen materiaalin kerääminen ja kuljetusolosuhteet

Katso materiaalin ottamisen ominaisuudet emättimestä sytologisia ja PCR-tutkimuksia varten.

Lähetä hyvä työsi tietokanta on yksinkertainen. Käytä alla olevaa lomaketta

Opiskelijat, jatko-opiskelijat, nuoret tutkijat, jotka käyttävät tietopohjaa opinnoissaan ja työssään, ovat sinulle erittäin kiitollisia.

Lähetetty http://www.allbest.ru/

"Nižni Novgorodin lääketieteellinen korkeakoulu"

(GBOU SPO NO "NMK")

Testata

Aihe: "Biomateriaalin hyväksynnän, merkitsemisen ja rekisteröinnin järjestäminen"

Valmistunut:

ryhmän 221-IV laboratorion opiskelija.

Stepanychev M.N.

Opettaja:

Belova M.N.

N. Novgorod 2016

Johdanto

1. Teoreettinen osa

1.1 Reittiohjeiden rekisteröinti

1.2 Laboratoriotilat

1.3 Kliinisen laboratoriomateriaalin säilytys- ja kuljetusolosuhteet

1.4 Soveltamisala

1.5 Biomateriaalin kuljetusprosessin järjestäminen kuriirin toimesta ja kuriirin vastuu

1.6 Biomateriaalin hyväksyminen laboratorioon

1.7 Biomateriaalin ja lähetteiden siirto laboratorion asianomaisille osastoille

1.8 Toimijoiden suorittama tilauslomakkeiden rekisteröinti

2. Käytännön osa

Johtopäätös

Johdanto

Laboratoriotutkimukset ovat herkimpiä potilaan tilan indikaattoreita. Kliinisen laboratoriodiagnostiikan asiantuntijat ovat jo pitkään ymmärtäneet, että monet tekijät voivat vaikuttaa laboratoriotutkimusten tuloksiin. Näistä tekijöistä: oikein toimitetut ja hyvin muodostetut biomateriaalinäytteet ja niihin liittyvät asiakirjat. Tällaisten tukitietojen (laboratoriokokeisiin vaikuttavien tekijöiden) puuttuessa kliinikko voi antaa virheellisen tulkinnan saadusta tuloksesta ja ryhtyä virheellisiin toimenpiteisiin potilaan suhteen.

Tämän valvonnan tarkoituksena on kiinnittää huomiota tarpeeseen tarkistaa biologista materiaalia koskevien asiakirjojen hyväksymistä ja käsittelyä koskevia sääntöjä. Tiedon oikean käytön pitäisi johtaa tarpeettoman tutkimuksen vähentämiseen, kustannusten alenemiseen ja tutkimustulosten parempaan ymmärtämiseen.

Kohde:

Tutkia biomateriaalin hyväksymisen, merkitsemisen ja rekisteröinnin organisaatiota.

Tehtävät:

1. Biomateriaalin saannin tutkiminen.

2. Sen dokumentaation valmistelu.

1. Teoreettinen osa

Tällä hetkellä laboratoriotutkimusmenetelmillä on keskeinen rooli sairauksien diagnosoinnissa ja hoidossa. Potilaita tutkittaessa laboratoriodiagnostiikan organisatoriset näkökohdat, laboratoriotutkimusten tarkkuuden ja oikeellisuuden varmistaminen, vakaiden, teknisesti luotettavien analyysimenetelmien käyttö sekä tutkimusten laadunvalvonta ovat tärkeitä.

Terveydenhuollon laitoksissa käytetään varsin laajaa laboratoriomenetelmien arsenaalia, ja yhtenäisten rutiinimenetelmien rinnalla käytetään myös nykyaikaisia, erittäin tarkkoja ja tietosisältöisiä tutkimusmenetelmiä.

Erittäin spesifisten laboratoriomenetelmien ottaminen käyttöön sairauksien diagnosoimiseksi terveydenhuollon käytäntöön edellyttää standardointia diagnosointiprosessin kaikissa vaiheissa.

Preanalyyttisten virheiden osuus laboratoriovirheiden kokonaismäärästä vaihtelee 50 %:n ja 95 %:n välillä. Laboratoriotutkimuksen esianalyyttisessä vaiheessa tapahtuvat virheet devalvoivat koko laboratoriotutkimuksen jatkokulkua, johtavat merkittävien varojen menettämiseen, heikentävät laboratoriomenetelmiä hoitavan lääkärin silmissä saatujen tulosten epäluotettavuuden vuoksi.

Kaikentyyppisissä laboratoriotutkimuksissa esianalyyttinen vaihe yhdistää joukon prosesseja ennen varsinaista laboratorioanalyysiä, joka koostuu:

aiheiden huolellinen valmistelu;

Biomateriaalin (veri, virtsa jne.) hankkiminen;

biomateriaalin kuljetus laboratorioon;

· biomateriaalin esikäsittely laboratoriossa;

biomateriaalin jakelu ja varastointi laboratoriossa.

Näiden esianalyyttisen prosessin vaiheiden päätehtävänä on varmistaa tutkimukseen otettujen biomateriaalien komponenttien stabiilisuus (säilyvyys) ja minimoida erilaisten niiden laatua muuttavien tekijöiden vaikutus.

Tässä suhteessa tarkastellaan esianalyyttistä vaihetta.

1.1 Reittiohjeiden rekisteröinti

Kun otat materiaalia, sinun on täytettävä suunta oikein. Koeputkia ja mukana tulevia asiakirjoja, tarroja ei saa sekoittaa. Koeputkeen on merkitty osasto ja sarjanumero. Verikoeputkessa ryhmän ja Rh-kuuluvuuden määrittämiseksi - lisäksi potilaan sukunimi.

Analyysisuuntaan biomateriaalia otettaessa on ilmoitettava: (kaikki tiedot, ottaen huomioon Valko-Venäjän tasavallan terveysministeriön 09.28.

potilastiedot - sukunimi, etunimi, sukunimi, syntymäaika, sukupuoli, osoite, tapaushistorian numero, diagnoosi.

biomateriaalin analysoitavaksi lähettäneen lääkärin nimi;

biomateriaalin ottamisen päivämäärä ja kellonaika;

Anna lyhyt kuvaus lähetettävästä biomateriaalista (ilmoita biomateriaalin tyyppi), materiaalia, joka ei vastaa ilmoitettua, ei tutkita - esimerkiksi sylkeä ysköksen sijaan, seerumia plasman sijaan;

Biomateriaalin ottamisen ominaisuudet (ottopaikka - verelle, virtsalle - tilavuus, annos, keräysaika);

Kaikki tarvittavat tutkimukset, ei vain "biokemiallinen verikoe".

Analyysiohjeet allekirjoittaa lääkäri.

Vältä analyysien päällekkäisyyttä.

1.2 Laboratoriotilat

Kaikki veri saa tulla vain sentrifugeissa, kemiallisesti puhtaissa laboratoriosta otetuissa putkissa. Hätäanalyysitilassa tutkimukseen käytettävä veri tulee toimittaa erikseen, ei varoittamatta laittaa pöytään rutiinianalyysien kanssa. Kiireellisen analyysin toimittaneen osaston työntekijän on varmistettava, että laboratorion työntekijä hyväksyy analyysin.

Kiireelliset tutkimukset tehdään 2 tunnin sisällä, vain vakavassa tilassa oleville potilaille, jos hätäapua tarvitaan. Kiireellisen analyysin suorittamiseen on varattu erillinen laboratorioavustaja ja laboratoriodiagnostiikan lääkäri. Tutkimusten suorittaminen kiireellisen analyysin muodossa vaatii suurempaa reagenssien kulutusta ja asiantuntijoiden työaikaa ja sen seurauksena suuria taloudellisia kustannuksia.

Tällä hetkellä hätäanalyysilaboratorio tekee seuraavat verikokeet hätätilassa:

Hemoglobiinipitoisuuden määritys

hematokriitin laskeminen

Punasolujen määrän laskeminen

Leukosyyttien lukumäärän laskeminen

Leukosyyttikaavan laskeminen

Verihiutaleiden määrän laskeminen

Päivystysanalyysi tehdään työpäivän aikana - vasta vastaanotetuille potilaille tai potilaan tilan heikkeneessä, mikä ei vaadi kiireellistä puuttumista.

Huomautus: Laboratorioparametrien normaaliarvot viittaavat tyhjään mahaan kerättyyn materiaaliin. Siksi kiireellisen ja päivystävän tutkimuksen tulosten tulkinta ei voi olla pelkkä vertailu normaaliarvoihin.

Suunniteltuja tutkimuksia ovat kaikki edellisenä päivänä sovitut tutkimukset, joiden materiaali saapuu laboratorioon kello 7-9 aamulla. Suoritusaika on jopa 6 tuntia, joissakin tapauksissa tarvitaan pidempi analyyttinen toimenpide.

Työntekijöiden laboratoriotutkimukset suoritetaan työntekijöiden lääkärintarkastuksesta vastaavan lääkärin ohjeiden mukaan. Kaikissa muissa tapauksissa kysely on maksullinen.

1.3 Kliinisen laboratoriomateriaalin säilytys- ja kuljetusolosuhteet

Ammatillisen infektion estämiseksi kaikki biologiset nesteet on katsottava mahdollisesti tartuntavaarallisena materiaalina noudattaen kaikkia asiaankuuluvia käsittelysääntöjä kuljetuksen, varastoinnin ja käsittelyn aikana. Tartuntapotilaista peräisin olevat biomateriaalit on merkittävä erityisesti ja niitä tulee käsitellä äärimmäisen huolellisesti. Kaikki HIV-tartunnan saaneiden potilaiden biomateriaalit tulee merkitä suuntaan "koodi 120" ja pakollinen tapaushistorian numero.

Tuloksena oleva biologinen neste tulee toimittaa laboratorioon mahdollisimman pian. Jos on tarpeen määrittää glukoosi ja happo-emästilan indikaattorit, veri tulee toimittaa välittömästi laboratorioon.

Kaikissa kuljetuksen ja käsittelyn vaiheissa veri on säilytettävä suljetuissa putkissa, jotta estetään haihtuminen ja mikrobien ja erilaisten aineiden saastuminen ulkopuolelta.

Annosteluputket tulee sijoittaa pystysuoraan kannet ylhäällä, mikä edistää näytteiden turvallisuutta ja nopeuttaa hyytymän muodostumista seerumia vastaanotettaessa, vähentää tärinää kuljetuksen aikana ja hemolyysin riskiä.

Putkia ei saa täyttää ääriään myöten. Ilman antikoagulantteja saatua kokoverta ei saa säilyttää jääkaapissa ennen laboratorioon toimittamista hemolyysin välttämiseksi.

Sentrifugointi suoritetaan viimeistään 1 tunnin kuluttua biomateriaalin ottamisesta.

1.4 Soveltamisala

Tämä vakiotoimintamenettely (jäljempänä SOP) määrittelee menettelyn hoitohuoneesta (laitoksen nimi) ja muista laboratorion palvelemista laitoksista laboratorioon saapuvan biomateriaalin vastaanottamiseksi, rekisteröimiseksi sekä epäjohdonmukaisuuksien tunnistamiseksi ja poistamiseksi.

Tämä SOP on tarkoitettu laboratorioavustajalle ja laboratorion operaattorille.

1.5 Biomateriaalin kuljetusprosessin järjestäminen kuriirin toimesta ja kuriirin vastuu

Kuriiri tallentaa jääkaapin lämpötilan, joka näkyy auton matkustamon näytöllä, päiväkirjaan "Autojen jääkaapin lämpötilajärjestelmän kirjanpitopäiväkirja" ja myös tässä päiväkirjassa kuriiri. ilmoittaa koko nimensä, auton rekisterikilven ja auton lähtöajan biomateriaalia varten välittömästi ennen laitokseen menoa.

Terveyskeskukseen saapunut kuriiri menee tämän laitoksen rekisteriin, jossa hän poimii kontteja erilaisilla biomateriaaleilla. Jokaiseen säiliöön on merkitty laitoksen nimi ja biomateriaalin tyyppi (veri, virtsa, ulosteet, lasilevyt vanupuikolla, raaput). Kuriiri asettaa säiliöt vaakasuoraan asentoon koneen jääkaappiin kuvan osoittamalla tavalla.

Kuriiri vastaa konttien eheydestä, niiden turvallisuudesta, oikean lämpötilan varmistamisesta auton jääkaapissa (+4 - +8 °C) sekä laitoksista laboratorioon toimitetun biomateriaalin turvallisuudesta. . Matkan aikana kuriiri valvoo auton jääkaapin lämpötilaa, joka näkyy autoon asennetussa näytössä.

1.6 Biomateriaalin hyväksyminen laboratorioon

Lämpötila, joka näkyy auton jääkaapin näytöllä konttien poiston yhteydessä, kuriiri huomauttaa lehdessä "Autojen jääkaapin lämpötilajärjestelmän rekisteri" sarakkeessa, joka vastaa auton valtion numero. Ja myös samassa lokissa kuljettaja ilmoittaa auton saapumisajan laitosten biomateriaalilla.

Kuriiri luovuttaa merkityt säiliöt verinäytteineen, sivelynäytteitä ja raapia ensihoitajalle.

Toimistossa laborantti avaa säiliön kannen ja ottaa sieltä koeputkia, joissa on verta, objektilasit, joissa on sivelyä ja raapia, kansioita, joissa on tutkimusohjeet.

Lajittelee veriputket erikseen telineisiin putken tyypin (biokemiallinen, hematologinen ja koagulologinen) ja telineisiin merkittyjen laitosten nimien mukaan.

1.7 Biomateriaalin ja lähetteiden siirto laboratorion asianomaisille osastoille

Toimistossa ensihoitaja - laborantti laittaa telineet, joissa on koeputkia biokemiallisia, immunologisia, koagulologisia tutkimuksia varten "biomateriaalin siirtoa varten" merkittyihin astioihin ja vie ne sentrifugointiin.

Ensihoitaja - laborantti soittaa hematologian ja PCR:n osastoille, jotta vastaavien osastojen ensihoitajat ottavat biomateriaalin.

Sitten siirtää tutkimussuunnat rekisteröintioperaattoreille.

1.8 Toimijoiden suorittama tilauslomakkeiden rekisteröinti

Rekisteröintimenettely:

- operaattori lukee viivakoodin lähetelomakkeeseen liimatulla skannerilla;

- sitten operaattori syöttää potilaan passitiedot LIS:ään: koko nimi, syntymäaika, asuinosoite ja muut tiedot: tilauslähde (pakollinen sairausvakuutus, VHI, käteismaksu, lääkärintarkastus), laitoksen numero, osasto, koko nimi tutkimuksen tilannut lääkäri, diagnoosi, MES-koodi (lääketieteellinen ja taloudellinen standardi).

- sen jälkeen käyttäjä syöttää LIS:ään hoitavan lääkärin määräämät indikaattorit ja tallentaa luodun tilauksen LIS:ään.

2. Käytännön osa

Kaupungin kliininen sairaala nro 40 avattiin vuonna 1966, ja se on tällä hetkellä ainoa monitieteinen lääketieteellinen kompleksi Nižni Novgorodissa, joka sisältää: sairaalan, synnytyssairaalan, synnytysklinikan, lasten ja aikuisten klinikan. Se on kirurgian osaston pääasiallinen kliininen tukikohta, asiantuntijoiden jatkokoulutuksen ja ammatillisen uudelleenkoulutuksen keskus, Nizhny Novgorod State Medical Academy, joka on toiminut sairaalan pohjalta sen avaamisesta lähtien. Sairaalan nro 40 toiminnallinen piirre on lähes mistä tahansa patologiasta kärsivien potilaiden vastaanotto hätätapauksissa ympäri vuorokauden. Ambulanssit kuljettavat päivittäin yli 100 potilasta.

Sairaala ja sen rakenteelliset osat ovat luoneet kaikki tarvittavat edellytykset potilaiden oikea-aikaiselle avulle ja laadukkaalle hoidolle. Täällä perinteisiä menetelmiä käytetään ja parannetaan luottavaisesti, ja uusimmat lääketieteelliset tekniikat otetaan aktiivisesti käyttöön. Nykyaikaisia ​​diagnostiikkalaitteita hallitaan kaikkialla. Sairaala sai viimeisen kahden vuoden aikana osana terveydenhuollon modernisointiohjelmaa 216 yksikköä lääketieteellisiä laitteita, mukaan lukien modernit endoskooppiset, laboratorio- ja ultraäänidiagnostiikkalaitteet, jotka mahdollistivat monimutkaisempien interventioiden suorittamisen hepatopankreatologiassa, koloproktologiassa ja flebologiassa. .

Johtavat asiantuntijat osallistuvat aktiivisesti venäläisen ja kansainvälisen tason erikoisseminaarien, konferenssien, symposiumien työhön. laboratoriokliininen biomateriaali

Kaupunginsairaala nro 40 on laaja-alainen kliininen perusta, jossa nykyaikaista tieteellistä kehitystä ja menetelmiä sovelletaan käytännössä. Täällä on tehty pitkään ja hedelmällisesti yhteistä työtä Nizhny Novgorodin osavaltion lääketieteellisen akatemian syventävien opintojen ja asiantuntijoiden ammatillisen uudelleenkoulutuksen keskuksen kirurgian osaston kanssa. Sen järjestäjästä, professori Igor Leonidovich Rotkovista tuli kirurgisen koulun perustaja, johon osallistuivat lähes kaikki sairaalan kirurgit, ja nykyään he jatkavat kertyneen kokemuksensa kehittämistä uusien kehityskulkujen ja tekniikoiden käyttöönotolla. Sairaalan pohjalle perustettiin kaupungin flebologinen keskus. Lastenkirurgian osasto on johtanut lasten gastroenterologian tieteellistä osastoa useiden vuosikymmenten ajan Nižni Novgorodin pediatrian instituutin haaraosastona. Synnytyssairaalan pohjalta löytyy synnytys- ja gynekologian osastot lääkäreiden parantamiseksi ja NSMA:n opiskelijoiden koulutukseen. Asiantuntijat monilta Venäjän alueilta parantavat taitojaan täällä. Harjoittelevien tiedemiesten ja sairaalalääkäreiden yhteinen työ edistää heidän osaamisensa kasvua, ja innovaatiot lääketieteen eri aloilla mahdollistavat ainutlaatuisten tulosten saavuttamisen potilaiden hoidossa.

Kaupungin kliinisen sairaalan nro 40 työn tulosten perusteella puolustettiin 9 väitöskirjaa ja 29 gradua. Sairaalan asiantuntijoiden kehittämille toimintamenetelmille, diagnostiikalle ja hyödyllisyysmalleille on saatu yli 70 tekijänoikeustodistusta ja patenttia.

Lääkäriryhmä arvosti korkeasti Nizhny Novgorodin kaupungin lääketieteen palkinnon vuonna 2012. Työ on omistettu yhdelle kiireellisimmistä ja monimutkaisimmista kirurgian ongelmista - alaraajojen flebotromboosin hoidosta, viimeisen viiden vuoden aikana tapahtuneesta tarkkailusta ja kiireellisen ja suunnitellun kirurgisen hoidon tarjoamisesta potilaille, joilla on flebotromboosi kaupungin olosuhteissa. flebologinen keskus GBUZ NO "City Clinical Hospital No. 40" perusteella.

Sairaalan rakenteeseen kuuluvassa synnytyssairaalassa on 205 vuodepaikkaa ja se on Nižni Novgorodin alueen suurin. Tällä hetkellä se toimii alueellisena perinataalikeskuksena ja ottaa vuosittain 4500-5000 synnytystä. Kaiken synnytyslääkäri-gynekologien työn tavoitteena on vähentää raskaana olevien keskenmenojen ja ylikypsyyden määrää, saavuttaa luonnollinen synnytys ja parantaa vastasyntyneiden eloonjäämislukuja.

Terveyskeskus on tammikuusta 2010 lähtien toiminut menestyksekkäästi aluetason yhdeksi parhaista tunnustetun aikuispoliklinikan seinien sisällä. Hänen työkokemuksensa esitteli keskuksen johtaja All-Russian Forumissa - "Terve kansakunta on Venäjän vaurauden perusta."

Vuonna 2012 sairaanhoidon saatavuuden lisäämiseksi syrjäisellä alueella perustettiin yleislääkärin vastaanotto, joka toimii menestyksekkäästi aikuispoliklinikan rakenteessa.

Yli tuhat laitoksen työntekijää, mukaan lukien lääkärit, sairaanhoitajat, laboratorioavustajat, sairaanhoitajat, tekninen henkilökunta, luovat kovalla työllään, huolella ja lämmöllä humanismin ja armon ilmapiirin, joka on ominaista GBUZ NO "Cityn henkilökunnalle Kliininen sairaala nro 40".

Harjoituksen aikana hallittiin koko biomateriaalin vastaanotto- ja rekisteröintiprosessi.

1. biomateriaalin ja lomakkeiden hyväksyminen.

2. Biomateriaalin tutkimus

3. Tulosten kirjaaminen lomakkeelle

4. Tuloksen kirjaaminen analyysilokeihin

5. Biomateriaalin hävittäminen

Johtopäätös

Pääasiallinen valvontamuoto biomateriaalin hyväksynnän, merkitsemisen ja rekisteröinnin järjestämisessä on määräajoin tehtävät ulkoiset ja sisäiset tarkastukset. Mutta tällaista valvontaa ei voida pitää tehokkaana. Laboratoriotutkimuksen tämän vaiheen hallintaongelma on edelleen yksi nykyaikaisen laboratoriolääketieteen vakavimmista ongelmista.

Tehokkain ja tehokkain askel on luoda standardiolosuhteet potilaan biologisten näytteiden ottamiseen, kuljettamiseen ja varastointiin (tyhjiön tai muiden järjestelmien käyttö). Tällaisten järjestelmien käyttöönotto ei vaikuta laboratoriotutkimuksen kaikkiin vaiheisiin ja vie laboratorion organisoinnin yleensä uudelle tasolle. Niiden käyttö ei ainoastaan ​​helpota organisointia ja edistää merkittävästi esianalyyttisen vaiheen standardointia, vaan myös luo edellytykset nykyaikaisten laboratoriojärjestelmien käyttöönotolle. Jos analysaattoreita on saatavilla, niitä voidaan käyttää ensisijaisena koeputkina, mikä yksinkertaistaa huomattavasti laboratoriotutkimuksen analyyttistä vaihetta.

Isännöi Allbest.ru:ssa

...

Samanlaisia ​​asiakirjoja

Kliinisen laboratoriodiagnostiikan mikrobiologisten tutkimusten päätehtävät. Bakteriologisen laboratorion laitteet, korkean suorituskyvyn automatisoidut laitteet mikro-organismien tunnistamiseen, mikrobiologisen diagnostiikan standardointi.

tiivistelmä, lisätty 9.10.2010


Syfilis-tartuntatapoja - sukupuoliteitse tarttuva tartuntatauti, joka vaikuttaa ihoon, limakalvoihin, sisäelimiin, luihin, hermostoon, jossa taudin vaiheet muuttuvat peräkkäin. Hammaslaboratorion haavoittuvuudet infektioille.

esitys, lisätty 27.4.2016


Kliinisen diagnostisen laboratorion toiminnan ominaispiirteet nykyaikaisissa olosuhteissa, henkilöstön toiminnan arviointi ja teknologian tehokkuuden parantamiseksi. Hoitohenkilöstön työn kuvaus laboratoriossa, optimointisuositusten laatiminen.

lukukausityö, lisätty 28.6.2016


Venäjän lainsäädäntöasiakirjat, jotka säätelevät lääkkeiden tuotantoa. Lääkkeiden laadunvalvonnan testauslaboratorion rakenne, toiminnot ja päätehtävät. Venäjän federaation säädökset mittausten yhdenmukaisuuden varmistamisesta.

käsikirja, lisätty 14.5.2013


Tutustuminen nykyaikaisten hammasproteesien valmistukseen käytettyihin materiaaleihin. Opiskellaan automatisoidun työn organisoinnin kaaviota, joka mahdollistaa proteesien valmistamisen CAD\CAM-tekniikalla. Hammaslaboratorioautomaation edut.

esitys, lisätty 11.10.2015


Hammaslaboratorion pääelementti on hammasteknikon työpöytä. Tämän pöydän suunnittelu, sen varusteet ja valaistus. Toimistossa käytettävien laitteiden parametrit. Tärkeimmät kriteerit, joista valukoneen suorituskyky riippuu.

esitys, lisätty 14.3.2016


Oikeusperusta pohjimmiltaan uusien ja aiemmin käyttämättömien lääkkeiden kliinisten tutkimusten suorittamiselle. Kliinisen tutkimuksen eettiset ja juridiset periaatteet on muotoiltu Maailman Lääkäreiden Liiton Helsingin julistuksessa.

esitys, lisätty 25.3.2013


Mikrobiologisen laboratorion työvaiheet ja kuhunkin niihin käytetty aika. Normatiiviset asiakirjat. Yleiset vaatimukset biologisen materiaalin näytteiden keräämisestä ja toimittamisesta mikrobiologista tutkimusta varten. Testitulosten tulkinta.

esitys, lisätty 26.4.2016


Kazakstanin tasavallan terveysministerin määräyksen "farmakologisten ja lääkkeiden kliinisten tutkimusten ja (tai) testauksen suorittamista koskevien ohjeiden hyväksymisestä" yleiset määräykset. Kliinisten tutkimusten eettisen arvioinnin periaatteet.

esitys, lisätty 22.12.2014


Johdatus skitsofrenian pääoireisiin. Potilaan henkisen, somaattisen ja neurologisen tilan analyysi. Kliinisten menetelmien huomioiminen mielisairauden tutkimuksessa. Laboratoriotutkimuksen yleiset ominaisuudet.

Useimmiten sukuelinten limakalvon kaavinta lähetetään PCR:ään, ja tämä analyysi on tarkin kaikista nykyään saatavilla olevista sukupuolitautidiagnostiikkatyökaluista. Veren, virtsan, syljen ja muiden biologisten nesteiden PCR on harvoin tarpeen.

Analyysin suoritustekniikka

Tiettyjen reagenssien vaikutuksesta analysoitavaksi lähetetyssä materiaalissa oleva bakteeri-DNA moninkertaistuu ja siitä tulee laitteille erottuva ja tunnistettavissa oleva.

Analyysin tulosten merkitys

PCR on aina kvalitatiivinen analyysi, toisin sanoen vastaus voi olla vain "havaittu" tai "ei havaittu". Selvitetään, mitä näiden arvojen takana on. "Havaittu" tai "positiivinen" tai yksinkertaisesti "+" - vastaavan bakteerin DNA eristettiin testimateriaalista, ja 97%:n todennäköisyydellä voidaan sanoa, että henkilö on saanut tämän infektion. “Ei löytynyt”, “negatiivinen”, “-” – vastaavan bakteerin DNA:ta ei eristetty tutkitusta materiaalista, 97 %:n todennäköisyydellä voidaan väittää, ettei potilaan kehossa ole suuria määriä näitä bakteereita, 60 %:n todennäköisyydellä – että potilas ei ole saanut tämän infektion .

Jotta bakteeri pääsisi koeputkeen analysoitavaksi lähetetyn materiaalin mukana, on välttämätöntä, että sitä on ihmiskehossa tietyssä määrin. Jos bakteerien määrä ihmiskehossa on minimaalinen, ne eivät melkein varmasti pääse koeputkeen, ja analyysin tulos on negatiivinen. Henkilö on kuitenkin edelleen sairas ja sairas. Siksi tuloksen tarkkuuden maksimoimiseksi tarvitaan erityistä valmistelua ennen PCR-diagnostiikkaa.

KORKEA HERKKYYS JA ERITYISUUS

PCR on molekyylidiagnostiikan menetelmä, josta on tullut "kultastandardi" useille infektioille, aika-testattu ja perusteellisesti kliinisesti testattu.

Menetelmän poikkeuksellinen herkkyys mahdollistaa sen, että asiantuntijamme voivat luotettavasti havaita yksittäisiä taudinaiheuttajia biologisesta materiaalista geneettisen tiedon perusteella. AmpliSense PCR -testijärjestelmien analyyttinen herkkyys useimmille viruksille ja bakteereille - 100 mikro-organismin toistettava havaitseminen tutkittavasta biologisesta näytteestä (1000 MIKROORGANISMIA 1 ml:ssa)

PCR:n spesifisyys käytettäessä AmpliSense-tekniikkaa jopa kaikille virus-, klamydia-, mykoplasma-, ureaplasma- ja useimmille muille bakteeri-infektioille saavuttaa 100%.

Näytteenotto biologisesta materiaalista laboratoriotutkimusta varten PCR:llä

Veri otetaan tyhjään mahaan kynsilaskimosta kertakäyttöisellä neulalla (halkaisija 0,8-1,1 mm) kertakäyttöiseen ruiskuun, jonka tilavuus on 5 ml, tai erityiseen "Venoject"-tyyppiseen tyhjiöjärjestelmään (EDTA:lla). Ruiskuun otettu veri siirretään varovasti (vaahtoutumatta) kertakäyttöiseen koeputkeen, jossa on antikoagulanttia (6 % EDTA-liuosta suhteessa 1:19 tai 3,8 % Na-sitraattiliuosta suhteessa 1:9). Hepariinia ei voida käyttää antikoagulanttina), putki suljetaan ja käännetään ylösalaisin useita kertoja (sekoitetaan antikoagulantin kanssa). Koeputki verellä säilytetään jääkaapissa +4°C - +8°C tutkimukseen asti.

Suurin säilytysaika:

Virushepatiitin tutkimuksessa - 2 päivää

Muita infektioita tutkittaessa - 5 tuntia

Analysointia varten ensimmäinen 10 ml:n annos aamuvirtsasta otetaan erityiseen pulloon tai koeputkeen ilman säilöntäliuosta.

Valitun materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C lämpötilassa.

Ennen syljen ottamista suu huuhdellaan kolme kertaa suolaliuoksella. Sylki kerätään kertakäyttöisiin koeputkiin 3-5 ml.

Materiaali on otettava välittömästi ennen tutkimusta tai toimitettava välittömästi laboratorioon. Jos nopea toimitus ei ole mahdollista, materiaali jäädytetään -20°C:ssa. Myöhempi kuljetus tapahtuu pakastettuna (jäällä varustetussa termospullossa).

Suunielun vanupuikko

Näytteenotto materiaalista suoritetaan steriilin kertakäyttöisen applikaattorin työosalla nielun takaseinästä ja risojen kryptoista. Materiaalin ottamisen jälkeen appikaattori asetetaan steriiliin kertakäyttöiseen putkeen.

Yskös ja pleuraeffuusio

Materiaali otetaan erityisiin injektiopulloihin, joiden määrä on 5-10 ml.

Materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

biopsiamateriaalia

Biopsiamateriaali asetetaan kuivaan kertakäyttöiseen Eppendorf-putkeen.

Materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

nivelneste

Materiaali otetaan kertakäyttöisellä ruiskulla, jonka määrä on 1 ml. Valittu materiaali laitetaan kuivaan kertakäyttöiseen Eppendorf-tyyppiseen koeputkeen.

Materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

Näytteenotto materiaalista urogenitaalisten infektioiden analysointia varten

Materiaalinäytteet naisilta:

Kaapiminen tehdään kolmesta eri kohdasta:

kohdunkaulan kanava

emättimen takaosa

Tarvittaessa materiaalia tutkimukseen otetaan sukupuolielinten haavaumista (tutkimus HSV-II:lle, Haemophilus ducrei).

Näytteenotto suoritetaan yleisanturilla tai Volkmann-lusikalla. Jos kaapiminen tehdään yleisanturilla, koettimen työosa, joka sisältää koemateriaalin, leikataan tai murretaan ja asetetaan kertakäyttöiseen Eppendorf-putkeen, jossa on säilöntäaineliuosta. Jos näytteenotto suoritetaan Volkmann-lusikalla, instrumentin työosa huuhdellaan säilöntäaineliuoksessa, joka on kertakäyttöisessä Eppendorf-koeputkessa.

Materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

Kokoelma materiaalia miehiltä:

Kaapiminen (smea).

Materiaali otetaan yleismittapäällä virtsaputkesta. Tarvittaessa materiaalia tutkimukseen otetaan sukupuolielinten haavaumista (tutkimus HSV-II:lle, Haemophilus ducrei).

Testimateriaalia sisältävä koettimen työosa leikataan tai murretaan ja asetetaan kertakäyttöiseen Eppendorf-putkeen, jossa on säilöntäaineliuosta.

Materiaalin enimmäissäilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

Eturauhasen mehu:

Eturauhasen hieronnan jälkeen mehua 0,5-1 ml kerätään kertakäyttöiseen kuivaan Eppendorf-tyyppiseen koeputkeen. Jos mehua ei saada, heti hieronnan jälkeen kerätään ensimmäinen virtsaannos (joka sisältää eturauhasmehua) 10 ml (katso virtsanäytteenottosäännöt yllä).

Pisin säilyvyys on 1 vrk jääkaapissa +4°C - +8°C lämpötilassa.

Biologisen materiaalin (veren) kerääminen ja varastointi ELISA-tutkimuksia varten (infektiot)

Veri otetaan tyhjään mahaan kubitaalilaskimosta kertakäyttöisellä neulalla (halkaisija 0,8-1,1 mm) kertakäyttöiseen ruiskuun, jonka tilavuus on 5 ml, tai erityiseen "Venoject"-tyyppiseen tyhjiöjärjestelmään (EDTA:n kanssa tai ilman). Ruiskuun otettu veri siirretään varovasti (vaahtoutumatta) kertakäyttöiseen "kuivaan" koeputkeen tai koeputkeen, jossa on antikoagulanttia (6 % EDTA-liuos suhteessa 1:19 tai 3,8 % Na-sitraattiliuos). suhteessa 1:9).

Heran enimmäissäilyvyys lämpötilassa +4°C - +8°C - 48 tuntia

Heran enimmäissäilyvyys -20°C:ssa on pitkäaikainen varastointi.

Biologisen materiaalin (veren) näytteenotto ja varastointi kuppatutkimusta varten (Syphilis RPR, Syphilis TPHA, Syphilis TPHA (puolikvantitatiivinen analyysi), hormonien, kasvainmerkkiaineiden, autovasta-aineiden seerumipitoisuuksien määrittäminen ELISA:lla ja biokemiallisia tutkimuksia varten

Verinäytteet otetaan:

Aamulla tyhjään vatsaan (dynaamisella havainnolla - aina samoihin tunteihin);

Vain "kuivassa" putkessa tai kaupallisessa erityistyhjiöjärjestelmässä ilman antikoagulanttia.

Veri otetaan tyhjään mahaan kubitaalilaskimosta kertakäyttöisellä neulalla (halkaisija 0,8-1,1 mm) kuivaan 5 ml:n putkeen tai erityiseen "Venoject"-tyyppiseen tyhjiöjärjestelmään (ilman antikoagulanttia). Ruiskunäytteenotto ei ole toivottavaa hemolyysivaaran vuoksi.

Veri on toimitettava laboratorioon keräyspäivänä. Koeputki verellä säilytetään jääkaapissa +4°C - +8°C tutkimukseen asti.

Heran enimmäissäilyvyys +4°С - +8°С lämpötilassa on 48 tuntia.

Heran enimmäissäilyvyys -20 °C:ssa on pitkäaikainen varastointi.

Vain yksi heran sulatus on sallittu.

Verinäytteenotto lymfosyyttien ja neutrofiilien alapopulaatioiden ja toiminnallisen aktiivisuuden määrittämiseksi

Verinäytteet otetaan:

Aamulla tyhjään mahaan (5 ml verta).

Hyytymisen estämiseksi vereen lisätään ottamisen yhteydessä antikoagulanttia: 20 yksikköä hepariinia 1 ml:ssa verta. On parempi käyttää tavallisia hepariiniputkia (VACUTAINER on-heparin tai li-heparin 5-7 ml vihreillä korkilla Becton Dickinsonilta).

Levitä hepariini tasaisesti putken seinämiä pitkin ennen veren ottamista.

Kun otat ruiskulla, hemolyysin välttämiseksi laske veri koeputkeen tasaisesti, ilman painetta.

Käännä näyteputki ylösalaisin useita kertoja keräämisen jälkeen. Älä ravista tai pyörittele ravistimessa.

Veri tulee säilyttää enintään 48 tuntia huoneenlämmössä

Kuljetuksen aikana veren lämpötilan tulee olla +18 °С - +24 °С

Immunoglobuliinien ja CEC:n määrittäminen veren seerumissa,

verinäytteet otetaan vain kuivassa koeputkessa!!!

Nouto- ja kuljetusehdot ovat samat.

Biologisen materiaalin (veren) kerääminen ja varastointi veriryhmän määrittämiseksi AB0-järjestelmän ja Rh-tekijän mukaan

Veri otetaan tyhjään mahaan kynsilaskimosta kertakäyttöisellä neulalla (halkaisija 0,8-1,1 mm) kertakäyttöiseen ruiskuun, jonka tilavuus on 5 ml, tai erityiseen "Venoject"-tyyppiseen tyhjiöjärjestelmään (EDTA:lla). Ruiskuun otettu veri siirretään varovasti (vaahtoamatta) kertakäyttöiseen koeputkeen, jossa on antikoagulanttia (6 % EDTA-liuosta suhteessa 1:19 tai 3,8 % Na-sitraattiliuosta suhteessa 1:9) .

Veri on toimitettava laboratorioon keräyspäivänä. Koeputki verellä säilytetään jääkaapissa +4°C - +8°C tutkimukseen asti.

Biologisen materiaalin (virtsan) kerääminen ja varastointi 17-KS:n päivittäisen erittymisen määrittämiseksi

Aamuvirtsa heitetään pois, seuraavat virtsaannokset, mukaan lukien seuraavan päivän aamupala, kerätään erilliseen kulhoon. Kerätyn virtsan tilavuus sekoitetaan, mitataan (!). 50 ml virtsaa kaadetaan purkkiin.

Diureesia osoittavan näytteen toimitus samana päivänä.

Pidempään varastointiin (yli päivä) tarvitaan pakastaminen.

Testimateriaalin kokoelma bakteriologisia tutkimuksia varten

UROSGENITAALISTEN TIETOJEN POISTAMINEN.

Säännöt potilaan valmistelusta tutkimus- ja näytteenottomateriaaliin:

Naisten tutkimusmateriaali tulee ottaa ennen kuukautisia tai 1-2 päivää kuukautisten päättymisen jälkeen. On suositeltavaa pidättäytyä virtsaamisesta 3-4 tuntia ja yhdynnästä ennen materiaalin ottamista.

Naiset eivät sinä päivänä, jona he saapuvat tutkimuksiin, peseytyä ja käyttää ulkoisten sukuelinten wc:tä.

Testimateriaali otetaan erityisillä kertakäyttökoettimilla, Volkmann-lusikalla, bakteriologisella silmukalla tai tylppäpäisellä korvaanturilla.

5-7 päivää ennen materiaalin näytteenottoa on tarpeen lopettaa kemoterapialääkkeiden ja lääketieteellisten toimenpiteiden käyttö.

Testimateriaalissa ei saa olla veren epäpuhtauksia.

Virtsa- ja sukupuolielinten hitaissa ja kroonisissa infektioissa on suositeltavaa käyttää jotakin seuraavista provokaatiomenetelmistä:

biologinen: gonovacciinin (500 miljoonaa mikrobirunkoa) tuominen aikuisille kerran, lihaksensisäisesti, yli 3-vuotiaille lapsille - 100-200 miljoonaa mikrobirunkoa. Alle 3-vuotiaille lapsille ei suositella gonovaccinin antamista;

lämpö: käyttö 3 päivän diatermiaan vatsa-emätin-sakraalielektrodien järjestelyllä 30,40,50 minuuttia tai induktiotermia 10,15,20 minuuttia. Vuoto virtsaputkesta, kohdunkaulan kanavasta ja peräsuolesta tulee ottaa tunnin kuluttua kunkin lämpenemisen jälkeen;

mekaaninen: metallisuojuksen asettaminen naisten kohdunkaulaan 4 tunniksi, miesten virtsaputken hieronta bougielle 10 minuutin ajan;

ravinto: suolaisen, mausteisen ruoan ja alkoholin nauttiminen 24 tuntia ennen tutkimusta.

Kemiallisia provokaatioita ei pidä tehdä, koska niillä on haitallinen vaikutus joihinkin taudinaiheuttajiin.

Materiaali otetaan provokaation jälkeen ja 24-48-72 tunnin kuluttua.

Materiaalin ottaa synnytyslääkäri-gynekologi, jos epäillään patologisen prosessin tarttuvaa luonnetta.

Kohdunkaulan kanavan, ontelon ja kohdun lisäosien sisältö on normaalisti steriiliä.

URETHRA

Ennen materiaalin ottamista virtsaputken ulkoinen aukko on käsiteltävä steriilillä suolaliuoksella kostutetulla vanupuikolla.

Märkivän eritteen esiintyessä tulee kaavinta ottaa joko välittömästi tai 15-20 minuuttia virtsaamisen jälkeen, jos eritteitä ei ole, virtsaputkea hierotaan anturin avulla materiaalin ottamiseksi.

Naisilla ennen anturin asettamista virtsaputkeen on tarpeen hieroa sitä häpyniveltä vasten.

Työnnä anturi naisten virtsaputkeen 1-1,5 cm syvyyteen, miesten - 3-4 cm syvyyteen ja tee useita pyöriviä liikkeitä. Lapsilla materiaali otetaan vain virtsaputken ulkoaukosta.

VULVA, ANTI-VAGINA. Vuoto otetaan steriilillä pumpulipuikolla. Bartholin-rauhasten tulehduksen yhteydessä ne puhkaistaan, rauhasen paiseet avattaessa sisältö otetaan steriilillä vanupuikolla.

Emättimen. Tutkimusaineisto otetaan steriilillä vanupuikolla takaraivosta tai limakalvon patologisesti muuttuneilta alueilta. Viljelymateriaali tulee ottaa ennen manuaalista tutkimusta.

Kohdunkaulan KANAVA.

Ennen materiaalin ottamista on tarpeen poistaa lima vanupuikolla ja käsitellä kohdunkaula steriilillä suolaliuoksella

Sinun on käytettävä kolposkooppia.

Työnnä anturi kohdunkaulan kanavaan 0,5-1,5 cm syvyyteen.

Kohdunkaulan kanavan eroosioiden läsnä ollessa on tarpeen käsitellä niitä steriilillä suolaliuoksella, ja materiaali tulee ottaa terveen ja muuttuneen kudoksen rajalta.

Kun koetinta poistetaan, sen kosketus emättimen seiniin on suljettava kokonaan pois.

Kylvämiseen voidaan käyttää kohdunkaulan seinämien diagnostisessa kaapimisessa saatuja limakalvon kaapimia.

KODU Materiaali otetaan erikoisinstrumenttien, kuten ruisku-imulaitteen avulla, jonka anturin päällä on pinnoite.

Kohdun lisäykset

Kohdun lisäosien tulehdusprosessissa materiaalia infektiokohdasta (mätä, erite, elinten palaset) otetaan joko leikkauksen aikana tai diagnostisen pistoksen aikana pienessä lantiossa emättimen holvien kautta.

Tutkittavaksi otettu materiaali säilyy kuljetusväliaineessa enintään 24 tuntia +4°C:ssa. Näytteen jäätyminen ei ole sallittua.

VIRTSA

Virtsan mikrobiologinen tutkimus tulee tehdä ennen antibioottihoidon aloittamista. Terveen ihmisen virtsa on steriiliä.

Aamulla ulkoisten sukuelinten perusteellisen käymälän jälkeen steriiliin astiaan kerätään keskimäärin 3-5 ml vapaasti vapautuvaa virtsaa. Jos epäillään eturauhastulehdusta, otetaan 4 näytettä: 3 annosta virtsaa (ensimmäinen ja keskiosa spontaanin virtsaamisen yhteydessä ja viimeiset 5-10 minuuttia eturauhasen hieronnan jälkeen) ja eturauhasen eritystä hieronnan aikana.

Virtsan keräämiseen katetrilla liittyy virtsatieinfektion riski, joten sitä tulee välttää. Katetrointi suoritetaan tapauksissa, joissa potilas ei pysty virtsaamaan tai erottamaan munuaisten ja virtsarakon tulehdusprosessia. Tätä tarkoitusta varten rakko tyhjennetään ja siihen ruiskutetaan 50 ml liuosta, joka sisältää 40 mg neomysiiniä ja 20 mg polymyksiiniä. 10 minuutin kuluttua otetaan virtsanäytteet tutkimuksia varten. Kun prosessi sijoittuu virtsarakkoon, virtsa pysyy steriilinä. Kun munuaiset ovat infektoituneet, havaitaan bakteriuria.

Potilaan virtsa voidaan saada virtsarakon suprapubisella punktiolla. Tämä virtsanottomenetelmä antaa luotettavimman tuloksen.

Virtsan mikrobiologinen tutkimus tulee tehdä mahdollisimman pian sen jälkeen, kun se on saatu potilaalta, koska. virtsan mikrobit lisääntyvät nopeasti huoneenlämmössä, mikä voi antaa vääriä tuloksia määritettäessä bakteerikontaminaatioastetta. Tässä suhteessa tutkittaessa virtsaa bakteriuria-asteen suhteen ei saa kulua enempää kuin 1-2 tuntia virtsanäytteen ottamisen hetkestä tutkimuksen alkamiseen laboratoriossa.

Kun virtsaa tutkitaan urogenitaalisten infektioiden patogeenien varalta, näytettä voidaan säilyttää enintään 18 tuntia +4 °C:ssa.

Virtsanäytteitä kuljetettaessa on otettava huomioon ympäristön lämpötila.

Suoliston DYSBAKTERIOOSI

Materiaali (ulosteet) suoliston dysbakterioosia varten otetaan ennen antibakteeristen ja kemoterapeuttisten lääkkeiden hoidon aloittamista.

Kliinisen materiaalin valinnan suorittaa lääkintähenkilöstö epidemian vastaisen järjestelmän sääntöjen mukaisesti, vain steriileillä kertakäyttövälineillä (ruiskut, sopivat anturit, sytoharjat jne.), kertakäyttökäsineissä.

Kerää materiaali valitusta paikasta mahdollisimman täydellisesti käyttämällä sopivia applikaattoreita - koettimia, sytoharjoja (kliinisen näytteen riittävyyden varmistamiseksi).

Säilytä saatu materiaali (mikro-organismien DNA/RNA) käyttämällä PCR-laboratorion toimittamia luotettavia kuljetusväliaineita ja säilöntäaineita. Kliinisen materiaalin kuljetus- ja säilytysalusta varmistaa RNA:n ja DNA:n stabiilisuuden huoneenlämpötilassa jopa 28 päivän ajan.

Aseta otettu materiaali EDTA:ta (veri) sisältäviin tyhjiin, kertakäyttöisiin kemiallisesti puhtaisiin Eppendorf-putkiin (siivut, aivo-selkäydinneste, biopsia jne.). Pääehto materiaalin keräämiselle on estää DNaasien ja ribonukleaasien pääsy näytteeseen, koska ribonukleaasit ja DNaasit ovat entsyymejä, jotka hajottavat RNA:ta ja DNA:ta. Ne ovat erittäin vakaita ympäristössä, kestävät pitkäaikaista keittämistä. Pääasiallinen nukleaasien lähde on iho, pölyhiukkaset. Muoviputket ja -kärjet tulee merkitä "DNase, RNase-free" (nukleaasivapaa).

Välittömästi näytteenoton jälkeen sulje koeputket, kliinisen materiaalin pullot tiiviisti koskettamatta niiden sisäpintaa ja kansien sisäpintaa.

Kun työskentelet kliinisen materiaalin kanssa, älä tee äkillisiä liikkeitä avatessasi koeputkia ja pulloja ja vältä roiskeita ja roiskeita, jotka voivat johtaa näytteiden ja työpintojen saastumiseen.

Ristikontaminaation välttämiseksi säilytä ja kuljeta näytteet erillisessä muovipussissa tai -telineissä. Jos näytteen siirto on tarpeen, käytä automaattisia mikropipettejä, joissa on vaihdettavat kertakäyttöiset kärjet, joissa on aerosolisulku.

Ennen kuljetusta PCR-laboratorioon valittua biomateriaalia tulee säilyttää 2–4 °C:n lämpötilassa enintään 48 tuntia. On tarpeen minimoida aika näytteen keräämisestä PCR-analyysiin. Näytteiden kuljetus tapahtuu kylmälaukuissa, lämpösäiliöissä, termospusseissa, jäässä tai kuivajäässä.

Veri, plasma, seerumi

Verinäytteenottoa suositellaan tyhjiöjärjestelmillä. Tällaisten järjestelmien käyttöönotto mahdollistaa manipulaatioiden standardoinnin verellä, vaikuttaa positiivisesti kaikkiin laboratoriotutkimuksen vaiheisiin ja yleensä siirtää laboratorion työn toiselle, korkeammalle laatutasolle. Niiden käyttö takaa henkilöstön suojan infektioilta, vähentää verinäytteenottomenettelyyn kuluvaa aikaa, siihen liittyy paljon vähemmän hemolyysiä, mahdollistaa verinäytteiden steriiliyden ylläpitämisen ja kuljetuksen hermeettisesti.

Suonenpunktio suositellaan suoritettavaksi tyhjään mahaan kyynärlaskimosta erityiseen antikoagulantilla varustettuun tyhjiöputkeen, jonka jälkeen putki käännetään useita kertoja sekoitusta varten. Koeputkia, joissa on verta, säilytetään jääkaapissa +4°C - +8°С. Veren enimmäissäilyvyys on 1 päivä (älä pakasta!). Jos pitkäaikaissäilytys on tarpeen, on otettava 1 ml seerumia tai veriplasmaa ja säilytettävä -16o -20o C lämpötilassa enintään 2 viikkoa.

PCR-diagnostiikassa käytettävien tyhjöjärjestelmien ominaisuudet:

Vacuettes with EDTA (6%) - käytetään kvalitatiiviseen ja kvantitatiiviseen tutkimukseen. EDTA-antikoagulantti kiinnittää hyvin solun nukleiinihapot.

Kvalitatiiviseen ja kvantitatiiviseen tutkimukseen käytetään natriumsitraattia (3,8 %) sisältäviä tyhjiä. Ei sovellu pitkäaikaiseen kuljetukseen, koska sitraatti on hyvä ravintoaine vieraalle mikroflooralle.

Vacuettes ilman antikoagulantteja (veriseerumi) - käytetään kvalitatiiviseen tutkimukseen. Veriseerumin käyttö kvantitatiivisiin tutkimuksiin ei ole toivottavaa, koska. osa tartunnanaiheuttajasta asettuu verihyytymään, kun taas mahdollisuus määrittää sen määrällinen pitoisuus veressä vähenee.

Hepariinia sisältävät vakuetit eivät kategorisesti sovellu PCR-reaktioihin. Hepariini on polyanioni, kuten DNA, joten se kilpailee DNA:n kanssa PCR-reaktiossa.

Optimaalinen aika verikokeen tekemiselle on 1-4 tuntia ottamisen jälkeen.Vuodella 5-30 minuuttia verihiutaleet mukautuvat tilapäisesti antikoagulantteihin ja aggregoituvat, mikä voi johtaa niiden virheelliseen vähenemiseen. verinäyte.

Ei ole toivottavaa tutkia verta myöhemmin kuin 8 tuntia ottamisen jälkeen, koska. jotkin solujen ominaisuudet muuttuvat: leukosyyttien tilavuus pienenee, punasolujen tilavuus kasvaa, mikä lopulta johtaa virheellisiin mittaustuloksiin ja tulosten virheelliseen tulkintaan. Vain hemoglobiinipitoisuus ja verihiutaleiden määrä pysyvät vakaina veren varastointipäivän aikana.

Verta ei saa jäädyttää. K 2 EDTA:ta sisältävä kapillaariveri tulee säilyttää huoneenlämmössä ja analysoida 4 tunnin kuluessa keräämisestä.

Laadullisen tutkimustuloksen varmistamiseksi on välttämätöntä valvoa tarkasti näytteiden säilytysaikaa ja -olosuhteita ennen analysointia.

Jos on tarpeen suorittaa viivästynyt analyysi (kuljetus pitkiä matkoja, laitteen tekninen toimintahäiriö jne.), verinäytteet säilytetään jääkaapissa (4 o - 8 o C) ja tutkitaan 24 tunnin sisällä. On kuitenkin otettava huomioon, että solut turpoavat ja niiden tilavuuteen liittyvät parametrit muuttuvat. Käytännössä terveillä ihmisillä nämä muutokset eivät ole kriittisiä eivätkä vaikuta kvantitatiivisiin parametreihin, mutta patologisten solujen läsnä ollessa viimeksi mainitut voivat muuttua tai jopa romahtaa muutaman tunnin sisällä veren ottohetkestä.

Välittömästi ennen tutkimusta verta sekoitetaan perusteellisesti useiden minuuttien ajan antikoagulantin laimentamiseksi ja muodostuneiden elementtien tasaiseksi jakautumiseksi plasmassa. Näytteiden pitkäaikaista jatkuvaa sekoittamista niiden tutkimushetkeen asti ei suositella mahdollisen patologisten solujen vaurion ja hajoamisen vuoksi.

Verikoe automaattisella analysaattorilla suoritetaan huoneenlämmössä. Jääkaapissa säilytettävä veri on ensin lämmitettävä huoneenlämpöiseksi, koska veren viskositeetti kasvaa alhaisissa lämpötiloissa ja verisoluilla on taipumus tarttua yhteen, mikä puolestaan ​​johtaa sekoittumisen heikkenemiseen ja epätäydelliseen hajoamiseen. Kylmän veren tutkimus voi aiheuttaa "hälytyssignaalien" esiintymisen leukosyyttihistogrammin pakkaamisen vuoksi.

Kun hematologisia tutkimuksia tehdään huomattavan etäisyyden päässä verinäytteenottopaikasta, epäsuotuisiin kuljetusolosuhteisiin liittyviä ongelmia syntyy väistämättä. Mekaanisten tekijöiden (ravistelu, tärinä, sekoittuminen jne.), lämpötilaolosuhteet, roiskeiden todennäköisyys ja näytteiden saastuminen voivat vaikuttaa analyysien laatuun. Näiden syiden poistamiseksi veriputkien kuljetuksessa on suositeltavaa käyttää hermeettisesti suljettuja muoviputkia ja erityisiä isotermisiä kuljetussäiliöitä. Näytteen (natiivimateriaalin) ja lähetelomakkeen kosketus kuljetuksen aikana ei ole sallittua biologisen turvallisuuden sääntöjen mukaisesti.

^ 4.3. Biologisen materiaalin vastaanotto ja rekisteröinti

Putket, joissa on laskimoverinäytteitä, toimitetaan laboratorioon ottopäivänä telineissä erityisissä pusseissa biologisen materiaalin toimittamista varten, joissa putkien on oltava pystyasennossa, ja kaukaa kuljetettaessa - erityisissä säiliöissä .

Materiaalin vastaanottavan laboratorion työntekijän tulee tarkistaa:

Lähetteen oikeellisuus: lähetelomakkeessa ilmoitetaan tutkittavan tiedot (sukunimi, etunimi ja sukunimi, ikä, sairaushistoria tai avohoitokortin numero, osasto, diagnoosi, hoito);

Koeputkien merkitseminen verinäytteillä (ne on merkittävä potilaan koodilla tai sukunimellä, sama kuin tutkimukseen lähetettävässä lomakkeessa oleva koodi ja sukunimi). Laboratorion tulee rekisteröidä toimitettu materiaali, merkitä koeputkien lukumäärä.

^ 4.4 Veren solukoostumuksen laskenta hematologisella analysaattorilla

Veren solukoostumuksen laskeminen hematologisella analysaattorilla on suoritettava tiukasti laitteen ohjeiden mukaisesti.

Kun työskentelet hematologisen analysaattorin parissa, sinun tulee:

Käytä K-2 EDTA:lla stabiloitua verta tietyille suola- ja kertakäyttöisille hematologiaputkille suositellussa suhteessa (tavallinen tai tyhjiö);

Ennen analyysia sekoita putki huolellisesti mutta perusteellisesti vereen (on suositeltavaa käyttää laitetta verinäytteiden sekoittamiseen - rotomix tähän tarkoitukseen);

Käytä määrätyllä tavalla rekisteröityjä reagensseja; kun vaihdat reagensseja toisen valmistajan tuotteisiin, tarkista ja aseta laitteen kalibrointi;

Käynnistä laite tarkkailemalla kaikkia huuhtelun vaiheita ja saavuttamalla kaikkien kanavien indikaattorien nolla-arvot (tausta);

Kiinnitä huomiota laitteen viesteihin mahdollisista systemaattisista virheistä: muista, että MCHC:n nousu normaaliarvojen yläpuolelle on yleensä seurausta mittausvirheestä;

Jos virhe havaitaan, on välttämätöntä poistaa syy, älä työskentele viallisen laitteen kanssa;

Suorita laadunvalvontamenettely asianmukaisen ohjelman mukaisesti. tuloksen arvioinnin kanssa;

Työskentele mielekkäästi vertaamalla saatuja tuloksia potilaan näytteiden kliinisiin ominaisuuksiin;

Huuhtele analysaattori perusteellisesti mittausten päätyttyä;

Kun laite pysäytetään pitkäksi ajaksi, on ehdottomasti suoritettava kaikki konservointitoimenpiteet (jos mahdollista, yhdessä huoltoinsinöörin kanssa);

Teknisissä ongelmissa kannattaa käyttää huoltoinsinöörin apua huoltoon luvan omaavasta yrityksestä; Älä anna työtä kouluttamattomille henkilöille.

Hematologisella analysaattorilla työskentelyä aloitettaessa tulee ottaa huomioon analysoitavien parametrien mittauksen lineaarisuuden rajat. Sellaisten näytteiden arviointi, joiden analysoitujen parametrien arvot ylittävät mittauksen lineaarisuuden rajan, voi johtaa virheellisiin tuloksiin. Useimmissa tapauksissa, kun analysoidaan näytteitä, joilla on hypersytoosi, analysaattori näyttää "D" (laimennus) mitatun parametrin arvon sijaan, mikä osoittaa tarpeen laimentaa näyte ja mitata uudelleen. Laimentaminen on suoritettava, kunnes samanlaiset lopulliset tulokset saadaan kahdella seuraavalla laimennuksella.

^ PRI me R ─ Hyperleukosytoosipotilaan näytteen analyysi kolmella eri hematologisella analysaattorilla on esitetty taulukossa.

Taulukko 3

¦ Hyperleukosytoosin laskentatulokset suoritettu kolmella eri hematologisella analysaattorilla

^ Hematologiset analysaattorit	Näytteen laimennusnopeus				Lopullinen arvo
	^ Koko veri	1:1	1:3	1:4	WBC
1	D	274,5	274,5	143,1	715,5
2	322,6	253,2	177,7	141,8	709,0
3	D	D	168,3	139,1	695,5

Taulukosta käy ilmi, että kokoverta analysoitaessa vain yksi analysaattori (2.) antoi digitaalisen arvon leukosyyttien lukumäärälle, kaksi muuta osoittivat tarpeen laimentaa näyte. Sen jälkeen suoritettu näytteen vaiheittainen mittaus kolmessa laimennoksessa mahdollisti läheisten lopputulosten saavuttamisen kaikilla laitteilla vain laimennuksilla 1:3 ja 1:4. Leukosyyttien kokonaismäärä oli siis 700,0 - 710,0 x 10 9 /l, mikä on yli 2 kertaa suurempi kuin alkuperäinen arvo, joka saatiin kokoverestä toisella analysaattorilla ja 1,5 - laimennuksella 1:1 1. ja 1. 2. analysaattorit.

1. 
   ^ Hematologisten analysaattoreiden kalibrointi

Kalibrointi viittaa analysaattorin säätömenettelyyn tuloksena

Joka saavuttaa virheen systemaattisen komponentin nollan (nollabias) tai vahvistaa, että bias on nolla, kun otetaan huomioon kalibrointivirhe. Hematologiset analysaattorit voidaan kalibroida kahdella päätavalla:

Kokoverelle;

Perustuu stabiloituihin verinäytteisiin, joilla on sertifioidut arvot.

^ 5.1 Kokoveren kalibrointi

Kokoveren kalibrointi voidaan suorittaa vertaamalla vertailuanalysaattoriin, jonka kalibrointi on varmennettu ja voidaan pitää alkuperäisenä.

Kalibroinnissa vertailuanalysaattoriin verrattuna käytetään 20 potilaan laskimoverinäytettä, jotka valitaan satunnaisesti vertailuanalysaattorin omaavan laboratorion päivittäisestä tutkimusohjelmasta. Veri tulee ottaa tyhjiöputkiin, joissa on antikoagulanttia K 2 EDTA. Vertailuanalysaattorilla suoritetun analyysin jälkeen veriputket toimitetaan laboratorioon analysoitavaksi kalibroitavalla laitteella. Vertailuanalysaattorin ja kalibroidun analysaattorin mittausten välinen aika ei saa ylittää 4 tuntia. Kalibroitavan laitteen kalibrointinäytteiden analyysi on suoritettava samalla tavalla kuin potilasnäytteiden analyysi. Saadut tulokset merkitään taulukkoon liitteessä 1 esitetyssä muodossa. Näiden tulosten perusteella määritetään vastaavat kalibrointikertoimet, jotka ovat numeerisesti yhtä suuria kuin kaavion origon kautta kulkevien kalibrointisuorien kaltevuuden kertoimet.

Kalibrointikertoimet lasketaan tietokoneella käyttämällä EXCEL-ohjelmaa, joka sisältyy minkä tahansa version Microsoft OFFICE -pakettiin. Kalibrointikertoimien laskemiseksi tässä ohjelmassa muodostetaan sirontadiagrammi, jossa mitatut arvot piirretään X-akselia pitkin, vertailuarvot piirretään Y-akselia pitkin ja regressioviiva asetetaan origon kautta. Ohjelma piirtää kalibrointiviivan ja määrittää sen kaltevuuden, joka on haluttu kalibrointikerroin. Jos havaitaan suuria virheitä - pisteitä, jotka ovat merkittävästi erossa kaavion kalibrointiviivasta, ne on poistettava laskelmasta (poistaa koko rivi EXCEL-taulukosta). Tuloksena oleva kalibrointikerroin syötetään liitteen 1 taulukkoon ja sitä käytetään laitteen kalibroinnin manuaaliseen säätämiseen sen käyttöohjeiden mukaisesti.

1. 
   ^ Kalibrointi stabiloituja verinäytteitä vastaan ​​sertifioiduilla arvoilla

Tämä kalibrointimenetelmä perustuu kaupallisiin kalibrointi- ja kontrollimateriaaleihin, jotka ovat keinotekoinen seos stabiloituja ihmisen erytrosyyttejä ja kiinteitä ihmisen tai eläimen soluja, jotka jäljittelevät leukosyyttejä ja verihiutaleita. Koska näiden materiaalien komponenttien biologiset ominaisuudet ovat merkittävässä erossa luonnollisesta verestä, hematologisten parametrien sertifioidut arvot riippuvat tietystä analysaattorityypistä.

Aina kun mahdollista, tulee käyttää kalibraattoreita, jotka valmistaja on erityisesti suunnittelenut tietyntyyppisen analysaattorin kalibroimiseksi. Nykyaikaisten hematologisten kalibraattorien asetusarvovirheet täyttävät yleensä lääketieteelliset vaatimukset. Kaikilla analysaattoreilla ei kuitenkaan ole tällaisia ​​kalibraattoreita. Lisäksi rajoitetun säilyvyysajan (yleensä enintään 45 päivää) vuoksi ei ole aina mahdollista saada näytteitä, jotka eivät ole vanhentuneet.

Valmistaja ei ole tarkoittanut kontrollimateriaaleja kalibrointitarkoituksiin: arvojen toleranssit ovat paljon laajemmat, validointi- ja tuotannonvalvontamenetelmät eivät ole yhtä tiukkoja kuin kalibraattoreiden. Kalibroinnin aikana ohjausmateriaaleja voidaan käyttää vain yhtenä tietolähteenä laitteen metrologisista ominaisuuksista.

On kuitenkin syytä muistaa, että käytettäessä sekä kontrollimateriaaleja että kalibraattoreita kalibrointitarkoituksiin, näytteen valmistelun ja analysaattoreiden toiminnan ominaisuudet vaikuttavat merkittävästi systemaattisen virheen komponentteihin. Näitä vaikuttavia tekijöitä ei voida ottaa huomioon kalibroitaessa kaupallisilla materiaaleilla. Tämän seurauksena kaikissa tapauksissa suoritettu kalibrointi on varmistettava analysoimalla potilasnäytteistä saatujen tulosten tilastot (erytrosyyttiindeksit, normaaliarvojen välit).

5.2.1 Kalibrointivälit hematologisille analysaattoreille

Kalibrointivälivaatimukset löytyvät yleensä analysaattorin käyttöohjeesta. Kalibrointia tarvitaan pääsääntöisesti korjauksen jälkeen tai kun yrityksen sisäisessä laadunvalvontamenettelyssä havaitaan merkittävää poikkeamaa.

5.2.2 Kalibrointimenettely

Kalibrointi suoritetaan analysaattorin käyttöohjeen mukaisesti.

5.2.3 Kalibrointituloksen tarkistaminen

Tämä tarkistus koostuu kalibrointinäytteen analysoinnista välittömästi kalibroinnin jälkeen. Suoritettu kalibrointi hyväksytään, jos analyysin tulokset vastaavat kalibrointiarvoja, kun otetaan huomioon analysaattorin analyyttinen vaihtelu.

5.2.4 Kalibroinnin varmistus RBC-indeksien avulla

Tämä kalibroinnin todentamis- ja tarkennusmenetelmä käyttää sitä tosiasiaa, että potilaiden punasoluindeksien - MCHC, MCH ja MCV - keskiarvot vaihtelevat melko vähän, ja siksi niitä voidaan käyttää tehokkaasti kalibroinnin ohjaamiseen ja lisälaadun valvontaan. Suositeltu näytteiden määrä keskiarvon laskemista varten on 20. Mitä tahansa potilasnäytettä voidaan käyttää keskimääräisen MCHC:n määrittämiseen, kun taas anemiapotilaat tulee sulkea pois keskimääräisistä MCHC- ja MCV-arvoista.

Monissa nykyaikaisissa hematologisissa analysaattoreissa on sisäänrakennetut ohjelmat virran keskiarvojen laskemiseen, mikä yksinkertaistaa huomattavasti tietojen käsittelyä.

Punasoluindeksien tavoitearvot 20 18–60-vuotiaiden potilaiden näytteen keskiarvona sukupuolesta riippumatta on esitetty taulukossa 4.

Taulukko 4

Punasoluindeksien tavoitearvot

Jos saadut keskiarvot ovat kontrollitoleranssin ulkopuolella, tämä tarkoittaa, että MCV- tai Hgb- tai RBC-kalibrointi on korjattava.

Määritettäessä syitä epätyydyttävälle kalibroinnille erytrosyyttiparametrien tutkimuksesta käytettäessä kaupallisia kalibrointi-/kontrollimateriaaleja, on otettava huomioon seuraava materiaalien sertifioitujen arvojen luotettavuuden arviointi:

Tarkin ja ajantasaisin parametri on punasolujen pitoisuus;

Hgb on vakaa parametri, mutta se voi riippua käytetyistä reagensseista (esimerkiksi syanidi tai syaniditon);

Epävakain parametri on MCV. MCV-arvolla on taipumus muuttua materiaalin koko säilyvyysajan aikana melko laajalla arvoalueella. MCV-kalibrointia tarkennettaessa erytrosyyttiindeksien keskiarvojen analysoinnista saadut tiedot ovat ensisijaisia ​​stabiloitujen verinäytteiden sertifioituihin arvoihin nähden.

Koska RBC-kalibrointi on oikea, taulukko 5 osoittaa mahdolliset syyt indeksien keskiarvojen ylittymiseen kontrollitoleranssin yli.

Taulukko 5

Syitä erytrosyyttiindeksien keskiarvojen ylittämiseen

Punasoluindeksit	Keskimääräinen indeksin arvo	Keskimääräinen indeksin arvo	Keskimääräinen indeksin arvo	Keskimääräinen indeksin arvo
MCHC	Rajan alapuolella	Rajan yläpuolella	Rajan yläpuolella	Rajan alapuolella
MCH	toleranssin sisällä	toleranssin sisällä	Rajan yläpuolella	Rajan alapuolella
MCV	Rajan yläpuolella	Rajan alapuolella	toleranssin sisällä	toleranssin sisällä
Syy	Ylihinnoiteltu MCV	aliarvioitu MCV	Korkea Hgb	Matala Hgb