Bronhide puu sanitaarmeetodid. Ülemiste hingamisteede aspiratsioonikanalisatsiooni metoodika Bronhide sanitaarhooldus kodus

Kõigi endoskoopiliste uurimismeetodite seas on bronhoskoopia pikka aega olnud erilisel kohal, olles mitte ainult üks esimesi diagnostilisi meetodeid, vaid ka kõige olulisem ja tõhusam meetod krooniliste põletikuliste ja mädasete kopsuhaigustega patsientide ravis. Kõri, hingetoru ja bronhide uurimise otseste meetodite järjekindel arendamine algas Kirsteini poolt 1884. aastal otsese larüngoskoopia kasutuselevõtuga. Põhjalike anatoomiliste uuringute põhjal tõestas Killian, et tiheda kõhrelise luustikuga bronhid on endoskoopia suhtes vähem haavatavad kui söögitoru pehmed seinad. Koos oma õpilaste Brunningsi ja Eickeniga leiutas Killian lihtsustatud bronhoskoopilise seadme, mida täiustati veelgi. Lisaks töötasid nad üksikasjalikult välja bronhoskoopia tehnika ja metoodika (tsiteeritud Elova M. Ya.). Killiani esimene bronhoskoopiline sekkumine oli võõrkeha (luutüki) eemaldamine 1897. aastal. 1904. aastal kirjutas Jackson esimese monograafia trahheobronhoskoopiast, milles ta nimetab Killiani bronhoskoopia isaks. Killian võttis kasutusele ka termini "bronhoskoopia". Kirjanduse andmete üldistusele ja enda tähelepanekutele tuginedes rõhutab autor bronhoskoopia rolli hingetorust ja bronhidest võõrkehade äratundmisel ja eemaldamisel. 1911. aastal esitas V. D. Sokolov enda tähelepanekute põhjal andmeid bronhoskoopia eduka kasutamise kohta kopsuabstsessiga patsientide ravis.

Aastatel 1924-1926 avaldasid M. F. Tsitovitš, V. K. Trutnev, A. G. Lihhatšov jt teoseid bronhoskoopia kasutamisest terapeutilistel eesmärkidel mitmesuguste bronhide ja kopsude haiguste korral (tsiteeritud Elova M. M.). Seega kuulub bronhoskoopia sisehaiguste kliinikusse juurutamise prioriteet Venemaa arstidele.

Nagu näitab mitmeaastane endoskoopia kasutamise kogemus pulmonoloogias, on terapeutilise bronhoskoopia üksikud kursused efektiivsed kopsupõletiku, abstsesseeriva kopsupõletiku või kopsuabstsessi korral ning obstruktiivse kopsuhaiguse korral on vaja läbi viia terapeutilise bronhoskoopia kursused. Veel 1956. aastal jagasid Soulas ja Mounier-Kuhn terapeutilise bronhoskoopia kulgu kolmeks etapiks. Esimene etapp on prooviravi, teine ​​etapp on fikseeriv ravi, kolmas etapp on säilitusravi.

Peamised raviained, mida terapeutilise bronhoskoopia käigus kasutatakse, on antiseptikumid, antibiootikumid, mukolüütikumid ja immunomodulaatorid.

Antiseptikumidest tunnistati parimaks furagiini kaaliumsool - üks nitrofuraanisarja levinumaid ravimeid. Furagiini kaaliumsoola 0,1% lahus valmistatakse isotoonilises naatriumkloriidi lahuses. Dioksidiin on antiseptik, kinoksoliini derivaat, millel on väljendunud antibakteriaalne toime. Valmistage 0,1% või 0,2% dioksidiini lahus 2% naatriumvesinikkarbonaadi lahuses. Puhastuslahus valmistatakse vahetult enne kasutamist. Enne bronhipuusse viimist tuleb see kuumutada temperatuurini 36-37 °. Ühe sanitaarkorra jaoks kulutage 60–140 ml desinfitseerimissegu.

Sanitaarbronhoskoopia algab sisu eemaldamisega trahheobronhiaalpuust, kasutades imemist. Pärast seda pestakse enim mõjutatud bronhid antiseptilise lahusega. Samal ajal süstitakse mitte rohkem kui 20 ml desinfitseerivat segu, millele järgneb selle imemine. Terapeutiline bronhoskoopia lõpeb mukolüütilise ja / või antibiootikumi sisseviimisega.

Bronhirakkude poolt toodetud lima koosneb glükoproteiinidest, sulfomutsiinidest ja veest; see sisaldab suurt hulka sulfhüdrüülrühmi, mis on võimelised moodustama üksteisega sidemeid, moodustades kolmemõõtmelise mukoidstruktuuri. Need sidemed, mida nimetatakse "disulfiidsildadeks", on väga tugevad ja neid saab purustada ainult redutseerivate ainete abil.

Patoloogiliste seisundite korral moodustub suurenenud arv disulfiidsildu, mis põhjustab bronhide sekretsiooni viskoossuse ja elastsuse suurenemist ning suurendab sekretsiooni kogunemises nakatumise ohtu. Seejärel moodustub mädane röga.

Esimeste ravimite hulgas, mis mõjutavad bronhide sekretsiooni reoloogilisi omadusi, kasutati ensüümpreparaate - trüpsiini, kümotrüpsiini, ribonukleaasi, desoksüribonukleaasi. Ravimeid manustati inhalatsioonide või endobronhiaalsete paigalduste kujul. Tavaliselt täheldati 5.-7. ravipäevaks märkimisväärset röga veeldamist ja selle eritumise paranemist, ravikuur oli 10-15 päeva. Praegu kasutatakse proteolüütiliste ensüümide kasutamist, eriti ravis

kroonilise obstruktiivse kopsuhaigusega patsientidel tundub see sobimatu bronhospasmide võimaliku arengu tõttu kuni astma seisundini, hemoptüüsi kalduvuse suurenemise, allergiliste reaktsioonide ja interalveolaarsete vaheseinte suurenenud hävimise tõttu alfa 1-antitrüpsiini puudulikkuse korral.

Praegu kasutatakse hingamisteede haiguste korral, millega kaasneb väga viskoosse, raskesti eraldatava limaskestade või mädase iseloomuga röga moodustumine, ravimeid, mida tuntakse mukolüütikumide või bronhosekretolüütiliste ravimitena.

Üks selle rühma kõige tõhusamaid ravimeid on N-atsetüültsüsteiin (fluimutsiil) - loodusliku aminohappe L-atsetüültsüsteiini N-atsetüülderivaat. Fluimucil on ravim, millel on otsene mukolüütiline toime; see toimib lima moodustumisel, purustades bronhide sekretsioonis esinevate mukoproteiini makromolekulide disulfiidsildu. See farmakoloogiline toime on seotud vaba sulfhüdrüülrühma olemasoluga fluimutsiili molekulis, mis muudab selle bioloogiliselt aktiivseks ravimiks. Fluimutsiiliga kokkupuute tagajärjel moodustuvad väiksema molekulmassiga molekulid ja lima hõreneb, kuna ravim vähendab selle viskoossust. Fluimutsiili toimet lima viskoossusele ja elastsusele hinnati in vitro loomade trahheobronhiaalse sekretsiooni materjalil, samuti erinevate kopsuhaigustega patsientide uuringutes erinevate meetoditega. Need uuringud on näidanud, et fluimutsiil vähendab tõhusalt lima viskoossust ja elastsust ning ravimi annuse ja reaktsioonile eelneva ajavahemiku vahel on seos. Fluimutsiili kontsentratsiooni järkjärguline suurendamine toob kaasa viskoossuse selgema ja kiirema vähenemise. Mutsiinimudelitega tehtud uuringud näitasid lima viskoossuse ja elastsuse järkjärgulist vähenemist fluimutsiili suurenevate kontsentratsioonide kasutuselevõtuga. Hingamisteede epiteeli ripsmete aktiivsus sõltub epiteeli katva saladuse viskoossuse astmest. Optimaalne viskoossus koos piisava ripsmete liikuvusega aitab kaasa lima õigele ja tõhusale eemaldamisele.

Loomkatsed on näidanud, et fluimutsiil suurendab mukotsiliaarset aktiivsust. See soodne toime mukotsiliaarsele transpordile on tingitud ripsmete paranenud aktiivsusest ning selle tulemuseks on tõhusam lima eemaldamine ja väiksem nakkumine epiteeliga.

Ravi fluimutsiiliga viib elastaasi aktiivsuse olulise vähenemiseni - nii bronhoalveolaarsetes sekretsioonides kui ka vereplasmas -, mis näitab selle ravimi võimet vältida kroonilise põletikulise protsessi põhjustatud kopsu elastiini hävimist.

Redokssignalisatsioon on osa põletiku aluseks olevatest mehhanismidest, nagu tsütokiinide induktsioon, proliferatsioon, apoptoos ja geeniregulatsioon, et kaitsta rakke. Oksüdandid toimivad signaali vahendajatena. On näidatud, et tiooli sisaldavad redutseerivad ained, sealhulgas fluimutsiil, pärsivad NFkB aktivatsiooni, mis kontrollib rakusiseseid geene, mis vastutavad rakusisese adhesioonimolekulide eest tervetes rakkudes. Lisaks on näidatud, et fluimutsiil pärsib vaskulaarse raku adhesioonimolekuli-1 (VCAM-1) ekspressiooni inimese endoteelirakkudes.

Üha enam on tõendeid selle kohta, et oksüdatiivne stress mängib olulist rolli erinevate inimeste haiguste tekkes. Stressiallikas võib olla sisemine (nt aktiveeritud põletikurakud, ksenobiootilised redoksrakud) või väline (nt suitsetamine).

Fluimutsiilil võib olla otsene antioksüdantne toime, kuna see on vaba tioolrühma kandja, mis on võimeline interakteeruma hapniku vabade radikaalide elektrofiilsete rühmadega (reaktiivsed hapniku liigid - RCH). Koostoime RCH-ga põhjustab tioolradikaalide vahepealset moodustumist. ; peamine rakuprodukt on fluimutsiili disulfiid. Fluimutsiilil on kaudne antioksüdantne toime, kuna see on glutatiooni eelkäija ja kaitseb hingamisteede epiteeli toksiliste ainete agressiivse toime eest, vältides nii kopsukoe kahjustusi. Glutatioon on tripeptiid, mis koosneb glutamiinhappest, tsüsteiinist ja glütsiinist. See tripeptiid on peamine tegur, mis kaitseb sisemiste toksiliste ainete (seotud näiteks aeroobse rakuhingamise ja fagotsüütide ainevahetusega) ja väliste ainete (nt lämmastikoksiid, vääveloksiid ja muud tubakasuitsu komponendid, nagu nt. samuti õhusaasteained). Tsüsteiini sulfhüdrüülrühmal on neid aineid neutraliseeriv toime. Mürgised ained kahjustavad mistahes kudesid, kuid kopsude bronhide ja alveoolide epiteel on oma asukoha, anatoomia ja füsioloogia tõttu eriti vastuvõtlik mürgiste ainete põhjustatud kahjustuste tekkeks.

On mitmeid haigusi (äge respiratoorse distressi sündroom, KOK, kopsuvähk, interstitsiaalsed kopsuhaigused, tsüstiline fibroos, bronhiaalastma), mille puhul hingamisteede epiteeli pinnal on mürgiste ainete liig, mis põhjustab tasakaaluhäireid. glutatiooni ja toksiliste ainete vahel glutatiooni koguse vähendamise suunas. Nendel juhtudel tekib hingamisteede epiteeli kahjustus, mida nimetatakse "oksüdatiivseks stressiks". Arvatakse, et oksüdatiivne stress mängib olulist rolli erinevate kopsuhaiguste patogeneesis. Tasakaalustamatus oksüdeerijate ja antioksüdantide vahel on tingitud oksüdantide suurenenud kogusest ja/või antioksüdantide süsteemi puudulikkusest. RSC-d esinevad kopsudes normaalselt ja mängivad nende toimimises olulist rolli. Lisaks on kopsudes välja töötatud intra- ja ekstratsellulaarsete antioksüdantide süsteem. Glutatiooni sünteesitakse peamiselt maksas (mis toimib glutatiooni depoona) ja kopsudes, kuid see jaotub kogu kehas. Süntees viiakse läbi raku tsütoplasmas kahes eraldi ensümaatilises etapis. Esimeses etapis ühendatakse glutamiinhape ja tsüsteiin gamma-glutamüültsüsteiini süntetaasi mõjul ning teises etapis lisatakse glutatiooni süntetaasi toimel gamma-glutamüültsüsteiini dipeptiidile glütsiin. . Fluimutsiil mängib glutatiooni eelkäija rolli, kuna see tungib kergesti rakkudesse ja on kergesti deatsüülitud, moodustades tsüsteiini. Glutatiooni sünteesis kasutatavate aminohapete kättesaadavus on glutatiooni sünteesi reguleerimise peamine tegur. Tsüsteiini sisaldub rakkudes glutamiinhappe ja glütsiiniga võrreldes väiksemas koguses. Seega sõltub glutatiooni süntees tsüsteiini olemasolust. Glutatiooni taset saab tõsta täiendava tsüsteiini manustamisega. Tsüsteiini aktiivse vormi L-atsetüültsüsteiini manustamise võimalus ei ole aga võimalik, kuna imendumine soolestikus on madal, vees lahustuvus on madal ja kiire muundumine maksas metabolismi käigus.

Need puudused kõrvaldatakse fluimutsiili kasutamisega, milles atsetüülradikaal on ühendatud aminorühmaga. Seega on võimalik manustada nii palju tsüsteiini, kui on vajalik piisava glutatiooni taseme säilitamiseks kopsudes.

Terapeutilise bronhoskoopia käigus kasutatakse 2 ml 5% fluimutsiili (N-atsetüültsüsteiini) lahust, mis süstitakse kanalisatsiooni lõppedes bronhipuusse. Ravimi toime algab 30 minutit pärast manustamist ja kestab kuni 2-4 tundi Samal ajal röga vedeldub, väljub kergemini ja suuremas koguses kui enne kanalisatsiooni, seega tundub, et röga on oluliselt suurenenud. maht. Tegelikult ei stimuleeri fluimutsiil sekretsiooni tootmist, vaid ainult lahjendab seda. Fluimucilil on kerge vesiniksulfiidi lõhn, seetõttu tuleb seda bronhiaalastma põdevatel patsientidel kasutada ettevaatusega, kuna on oht bronhospasmi tekkeks, kuid enam kui 5-aastase ravimi kasutamise kogemuse jooksul ei täheldatud sellist tüsistust. Fluimutsiili tilgutamise ajal ei tohi segada antibiootikumidega, kuna see põhjustab ravimite vastastikust inaktiveerimist. Seetõttu on näiteks üks firmadest (Zambon) välja andnud ainulaadse ravimi - fluimutsiili antibiootikumi IT, mis koosneb antibiootikumist tiamfenikool ja N-atsetüültsüsteiin. Ravimil on lai antibakteriaalse toime spekter. See on aktiivne paljude beetalaktaamantibiootikumide suhtes resistentsete tüvede, intratsellulaarsete patogeenide (Legionella, Chlamidia, mikoplasma), samuti Staphylococcus aureus VISA tüvede ja paljude resistentsete S. Aureuse tüvede vastu. Antibiootikumi eeliseks on ka selle kõrge biosaadavus ja kõrge kopsukoesse tungimise koefitsient. Teine oluline omadus on see, et see on ainus antibiootikum klooramfenikooli klassis, millel puudub hematoloogiline toksilisus. Seega jääb fluimucil IT antibiootikum hingamisteede infektsioonide ravis esmavaliku antibiootikumide hulka. Antibiootikumi manustatakse sanitaar-bronhoskoopia lõpus koguses 500 mg, lahjendatuna 5 ml süstevees.

Sellest järeldub, et bronhoskoopiast on selle olemasolu algusest saanud kõige olulisem terapeutiline ja kirurgiline endoskoopiline meetod bronhopulmonaarse süsteemi haigustega patsientidel.

Kõri, hingetoru ja bronhide uurimise otseste meetodite järjekindel arendamine algas Kirsteini poolt 1884. aastal otsese larüngoskoopia kasutuselevõtuga. Põhjalike anatoomiliste uuringute põhjal tõestas Killian, et bronhid on endoskoopia suhtes vähem haavatavad kui söögitoru pehmed seinad. Killian leiutas koos oma õpilaste Brunningsi ja Eickeniga bronhoskoopilise seadme, mida täiustati veelgi. Lisaks töötasid nad välja bronhoskoopia tehnika ja metoodika (tsiteeritud Elova M.Ya.). Killiani esimene bronhoskoopiline sekkumine oli võõrkeha (luutüki) eemaldamine 1897. aastal. 1904. aastal kirjutas Jackson esimese monograafia trahheobronhoskoopiast, milles ta nimetab Killiani bronhoskoopia isaks. Killian võttis kasutusele ka termini "bronhoskoopia". Kirjanduse andmetele ja enda tähelepanekutele tuginedes rõhutab autor bronhoskoopia rolli võõrkehade ekstraheerimisel hingetorust ja bronhidest. 1911. aastal esitas V.D. Sokolov enda tähelepanekute põhjal andmeid bronhoskoopia eduka kasutamise kohta kopsuabstsesside ravis. Aastatel 1924-1926. M. F. Tsitovitš, V. K. Trutnev, A. G. Likhachev ja teised avaldasid ka teoseid bronhoskoopia kasutamisest terapeutilistel eesmärkidel mitmesuguste bronhide ja kopsude haiguste korral (tsiteeritud Elova M. M.). Seega on bronhoskoopiast saanud oma eksisteerimise algusest peale kõige olulisem terapeutiline ja kirurgiline endoskoopiline meetod ning bronhoskoopia juurutamise prioriteet sisehaiguste puhul kuulub venelastele.

Nagu meie mitmeaastane kogemus on näidanud, on vaja läbi viia terapeutilise bronhoskoopia kursused. Veel 1956. aastal jagasid Soulas ja Mounier-Kuhn terapeutilise bronhoskoopia kulgu kolmeks etapiks. Esimene etapp on prooviravi, teine ​​etapp on fikseeriv ravi, kolmas etapp on säilitusravi.

Furagin kaaliumisool on tunnistatud parimaks antiseptikumiks - see on nitrofuraani seeria üks levinumaid preparaate. Valmistage furagiini kaaliumsoola 0,1% lahus.

Dioksidiin on antiseptik, kinoksoliini derivaat, millel on väljendunud antibakteriaalne toime. Valmistage 0,1% või 0,2% dioksidiini lahus 2% naatriumvesinikkarbonaadi lahuses.

Puhastuslahus valmistatakse vahetult enne kasutamist. Enne bronhipuusse viimist tuleb see kuumutada temperatuurini 36-37 °. Üheks kanalisatsiooniks kasutatakse 60–140 ml segu.

Sanitaarbronhoskoopia algab sisu eemaldamisega trahheobronhiaalpuust, kasutades imemist. Pärast seda pestakse enim mõjutatud bronhid antiseptilise lahusega. Samal ajal süstitakse mitte rohkem kui 20 ml desinfitseerivat segu, millele järgneb selle imemine. Terapeutiline bronhoskoopia lõpeb mukolüütilise ja / või ravimi sisseviimisega.

Bronhirakkude poolt toodetud lima sisaldab suurt hulka sulfhüdrüülrühmi, mis on võimelised moodustama üksteisega sidemeid, moodustades kolmemõõtmelise mukoidstruktuuri. Need sidemed, mida nimetatakse "disulfiidsildadeks", on väga tugevad ja neid saab purustada ainult redutseerivate ainete abil.

Praegu kasutatakse hingamisteede haiguste korral, millega kaasneb limaskestade või mädase iseloomuga viskoosse röga moodustumine, bronhosekretolüütilisi ravimeid.

Üks selle rühma tõhusaid ravimeid on N-atsetüültsüsteiin (fluimutsiil) - loodusliku aminohappe L-atsetüültsüsteiini N-atsetüülderivaat.

Fluimucil on ravim, millel on otsene mukolüütiline toime; see toimib lima moodustumisel, purustades bronhide sekretsioonis esinevate mukoproteiini makromolekulide disulfiidsildu. See farmakoloogiline toime on seotud vaba sulfhüdrüülrühma olemasoluga fluimutsiili molekulis, mis muudab selle bioloogiliselt aktiivseks ravimiks. Fluimutsiiliga kokkupuute tagajärjel moodustuvad väiksema molekulmassiga molekulid ja lima hõreneb, kuna ravim vähendab selle viskoossust.

Fluimutsiili toimet lima viskoossusele ja elastsusele hinnati in vitro loomade trahheobronhiaalse sekretsiooni materjalil, aga ka kopsuhaigustega patsientide uuringutes erinevate meetoditega. Need uuringud on näidanud, et fluimutsiil vähendab tõhusalt lima viskoossust ja elastsust ning on olemas seos

ravimi annuse ja reaktsioonile eelneva ajavahemiku vahel. Fluimutsiili kontsentratsiooni järkjärguline suurendamine toob kaasa viskoossuse selgema ja kiirema vähenemise. Mutsiinimudelitega tehtud uuringud näitasid lima viskoossuse ja elastsuse järkjärgulist vähenemist fluimutsiili suurenevate kontsentratsioonide kasutuselevõtuga.

Hingamisteede epiteeli ripsmete aktiivsus sõltub epiteeli katva saladuse viskoossuse astmest. Optimaalne viskoossus koos piisava ripsmete liikuvusega aitab kaasa lima õigele ja tõhusale eemaldamisele. Loomkatsed on näidanud, et fluimutsiil suurendab mukotsiliaarset aktiivsust. See soodne toime mukotsiliaarsele transpordile on tingitud ripsmete paranenud aktiivsusest ning selle tulemuseks on tõhusam lima eemaldamine ja väiksem nakkumine epiteeliga.

Ravi fluimutsiiliga viib elastaasi aktiivsuse olulise vähenemiseni - nii bronhoalveolaarses sekretsioonis kui ka vereplasmas -, mis näitab selle ravimi võimet vältida kroonilise põletikulise protsessi põhjustatud kopsu elastiini hävimist.

Redokssignalisatsioon on osa põletiku aluseks olevatest mehhanismidest, nagu tsütokiinide induktsioon, proliferatsioon, apoptoos ja geeniregulatsioon, et kaitsta rakke. Oksüdandid toimivad signaali vahendajatena. On näidatud, et tiooli sisaldavad redutseerivad ained, sealhulgas fluimutsiil, pärsivad MBqB aktivatsiooni, mis kontrollib rakusiseseid geene, mis vastutavad rakusisese adhesioonimolekulide eest tervetes rakkudes. Lisaks on näidatud, et fluimutsiil pärsib vaskulaarse raku adhesioonimolekuli-1 (USLM-1) ekspressiooni inimese endoteelirakkudes.

Üha enam on tõendeid selle kohta, et oksüdatiivne stress mängib olulist rolli erinevate inimeste haiguste tekkes. Stressiallikas võib olla sisemine (nt aktiveeritud põletikurakud, ksenobiootilised redoksrakud) või väline (nt suitsetamine).

Fluimutsiilil võib olla otsene antioksüdantne toime, kuna see on vaba tioolrühma kandja, mis on võimeline interakteeruma hapniku vabade radikaalide elektrofiilsete rühmadega (reaktiivsed hapniku liigid - ROC). Koostoime ROC-ga põhjustab

tioolradikaalide vahepealne moodustumine; peamine rakuprodukt on fluimutsiili disulfiid.

Fluimutsiilil on kaudne antioksüdantne toime, kuna see on glutatiooni eelkäija ja kaitseb hingamisteede epiteeli toksiliste ainete agressiivse toime eest, vältides nii kopsukoe kahjustusi. . See tripeptiid on peamine kaitsetegur sisemiste toksiliste ainete (seotud näiteks rakkude aeroobse hingamise ja fagotsüütide ainevahetusega) ja väliste ainete (näiteks lämmastikoksiid ja muud tubakasuitsu komponendid) eest. Tsüsteiini sulfhüdrüülrühmal on neid aineid neutraliseeriv toime.

Mürgised ained kahjustavad mistahes kudesid, kuid kopsude bronhide ja alveoolide epiteel on oma asukoha, anatoomia ja füsioloogia tõttu eriti vastuvõtlik mürgiste ainete põhjustatud kahjustuste tekkeks. On mitmeid haigusi (äge respiratoorse distressi sündroom, KOK, interstitsiaalne kopsuhaigus, tsüstiline fibroos, bronhiaalastma), mille puhul hingamisteede epiteeli pinnal esineb liiga palju toksilisi aineid, mis põhjustab glutatiooni ja glutatiooni tasakaaluhäireid. mürgised ained glutatiooni koguse vähendamise suunas. Nendel juhtudel tekib hingamisteede epiteeli kahjustus, mida nimetatakse "oksüdatiivseks stressiks".

Glutatiooni sünteesitakse peamiselt maksas (mis toimib glutatiooni depoona) ja kopsudes, kuid see jaotub kogu kehas. Süntees viiakse läbi raku tsütoplasmas kahes eraldi ensümaatilises etapis. Esimeses etapis ühendatakse glutamiinhape ja tsüsteiin gamma-glutamüültsüsteiini süntetaasi mõjul ning teises etapis lisatakse glutatiooni süntetaasi toimel gamma-glutamüültsüsteiini dipeptiidile glütsiin. . Fluimutsiil mängib glutatiooni eelkäija rolli, kuna see tungib kergesti rakkudesse ja on kergesti deatsüülitud, moodustades tsüsteiini.

Glutatiooni sünteesis kasutatavate aminohapete kättesaadavus on glutatiooni sünteesi reguleerimise peamine tegur. Tsüsteiini sisaldub rakkudes glutamiinhappe ja glütsiiniga võrreldes väiksemas koguses. Seega sõltub glutatiooni süntees tsüsteiini olemasolust. Glutatiooni taset saab tõsta täiendava tsüsteiini manustamisega. Tsüsteiini aktiivse vormi L-atsetüültsüsteiini manustamise võimalus ei ole aga võimalik, kuna imendumine soolestikus on madal, vees lahustuvus on madal ja kiire muundumine maksas metabolismi käigus. Need puudused kõrvaldatakse fluimutsiili kasutamisega, milles atsetüülradikaal on seotud aminorühmaga. Seega on võimalik manustada nii palju tsüsteiini kui vaja, et säilitada piisav glutatiooni tase kopsudes.

Terapeutilise bronhoskoopia käigus kasutatakse 2 ml 5% fluimutsiili (N-atsetüültsüsteiini) lahust, mis manustatakse sanitaarhoolduse lõpus. Ravimi toime algab 30 minuti pärast ja kestab kuni 2-4 tundi.Samas röga vedeldub, väljub kergemini ja suuremas koguses kui enne kanalisatsiooni, mistõttu jätab mulje rögamahu olulisest suurenemisest . Tegelikult ei stimuleeri fluimutsiil sekretsiooni tootmist, vaid ainult lahjendab seda. Fluimucilil on kerge vesiniksulfiidi lõhn, mistõttu tuleb seda kasutada bronhiaalastma põdevatel patsientidel bronhospasmi tekkeriski tõttu ettevaatusega, kuid meil pole sellist tüsistust esinenud enam kui 5-aastase ravimi kasutamise kogemuse jooksul.

Fluimutsiili tilgutamise ajal ei tohi segada antibiootikumidega, kuna see põhjustab ravimite vastastikust inaktiveerimist. Seetõttu on Zambon välja andnud ainulaadse ravimi - fluimutsiili antibiootikum IT, mis koosneb antibiootikumist tiamfenikoolist ja N-atsetüültsüsteiinist, jääb see hingamisteede infektsioonide ravis esmavaliku antibiootikumide hulka. Antibiootikumi manustatakse sanitaar-bronhoskoopia lõpus koguses 500 mg, lahjendatuna 5 ml süstevees.

Kuni viimase ajani paigaldati antibiootikumid bronhipuu luumenisse terapeutilise bronhoskoopia lõpus tugeva köha taustal, mille põhjustas desinfitseeriva aine sisseviimine, nii et patsient köhis antibiootikume suuremas koguses. ja nende roll oli väike. Sellega seoses oleme välja töötanud ja kliinilises praktikas laialdaselt kasutusele võtnud intrabronhiaalse piirkondliku antibiootikumravi meetodi.

Artikli koostas ja toimetas: kirurg

Bakterite tungimise viisid:

1. orofarüngeaalse sekretsiooni mikroaspiratsioon;

2. söögitoru/mao sisu aspireerimine;

3. nakatunud aerosooli sissehingamine;

4. hematogeensel teel kaugest nakatunud piirkonnast;

5. eksogeenne tungimine nakatunud kohast (näiteks pleuraõõnde); otsene hingamisteede infektsioon intensiivravi personali intubeeritud patsientidel. Erilist tähelepanu tuleks pöörata ülaltoodu viimasele punktile, sest. just trahheobronhiaalpuu sanitaarreeglite mittejärgimisel nakatuvad hingamisteed patogeense mikroflooraga.

LBD taastamisel tuleb järgida järgmisi reegleid:

1. kasutage ainult steriilseid kateetreid ja siledate servadega otsikuid;

2. kandke kindaid ja kasutage pintsette, et hoida kateetri proksimaalset otsa imemiskoha küljes; kateetri läbimõõt ei tohiks olla suurem kui pool trahheostoomi või endotrahheaalse toru luumenist; imemine ei tohiks kesta üle 15 s;

3. enne kanalisatsiooni suurendage hapniku kontsentratsiooni sissehingatavas segus.

Sihtmärk: normaalse hingamise säilitamine trahheostoomi kaudu, trahheobronhiaalpuu sanitaarhooldus

Näidustused: endotrahheaalse toru olemasolu, trahheostoomia.

Varustus: steriilne: mask, meditsiinilised kindad, kateetrid, marli salvrätikud, aluspüksid, vatitupsud, keermestatud sond, sisemine trahheostoomi toru, sobiva suurusega pipetid, kandik, pintsetid; 0,82% furatsiliinilahus, 70% alkohol, 2% naatriumvesinikkarbonaadi lahus (söögisoodat), Lassari pasta, soe soe keedetud vesi, elektriline imemine, jääkmaterjali kandik, anum desinfitseerimislahusega.

Järjestus:

1. Imemiskateetrid peavad olema (steriilsed ja olema spetsiaalsel laual antiseptilises lahuses (tavaliselt furatsiliini lahuses). Iga imemisseanss tuleb läbi viia eraldi kateetriga. Pärast kasutamist tuleb kateeter pesta, töödelda antiseptiliselt steriliseerimine.

2. Aspiratsiooni ajal tuleb kateetrit (kui see on ummistunud paksu lima, koorikutega jne) pesta imemisega ainult antiseptilise lahusega, selleks kasutatakse tavaliselt furatsiliini lahust, mis valatakse eraldi anumasse.

3. Pärast iga imemist on soovitatav trahheostoomi tilgutada 1-2 ml antiseptilist ainet (furatsiliini lahus jne).

4. Järgmise 2-3 päeva jooksul pärast trahheostoomi paigaldamist tuleb läbi viia üldine profülaktiline antibiootikumravi (määratakse makroliidid, poolsünteetilised penitsilliinid jne)

5. Järgige rangelt aspiratsiooni meetodit:

Imekateetri välisläbimõõt peab olema väiksem kui pool trahheostoomitoru läbimõõdust

Kateeter peaks olema pooljäik, kuna jäik kateeter vigastab limaskesta ja pehme kateeter ei lase seda viia hingetoru alusosadesse ja bronhidesse, see kleepub aspiratsiooni ajal kergesti kokku

Ühe imemise kestus ei tohiks ületada 5 sekundit, üksikute imemiste vahelised intervallid peaksid olema vähemalt 5 sekundit

Enne ja pärast imemist on soovitav anda patsiendile hapnikuga rikastatud hingamisõhku

Aspireeriv kateeter tuleb sisestada nii, et imemine ei tööta või spetsiaalse tee abil, mille üks auk avaneb kateetri paigaldamise ajal, mis välistab alarõhu tekkimise kateetris ja seeläbi imemise. selle ots hingetoru ja bronhide seina külge, lima imemine ja segamine kateetri nihutamisel trahheobronhiaalpuu alusosadesse ehk teisisõnu ei saa te kateetri sisestamise ajal röga välja imeda.

Imemine peaks olema sisse lülitatud ainult aspiratsiooni ajal ja kateetri trahheostoomist eemaldamisel

Kateeter tuleb sisestada ja hingetorust eemaldada aeglaselt ja ettevaatlikult (atraumaatiliselt) - aspiratsiooni ajal on vaja välistada kateetri imemine hingetoru ja brohide limaskestale, kuna see kahjustab limaskesta, mis suurendab riski infektsioossete tüsistuste ja armide teket põhjustavate tüsistuste korral tagab vähima trauma augu külgmise asukohaga ja pimeda koonusekujulise kõvera otsaga kateetrite kasutamine (Timani kateetrid jne)

6. Esimese 2 tunni jooksul pärast trahheostoomi paigaldamist tuleb hingetorust ja bronhidest aspireerida iga 20-30 minuti järel, seejärel 1-2 tunni pärast või vähem (kuid vajalik).

7. Enne iga trahheostoomia imemist tuleb läbi viia umbes 5-minutiline raskekujulise raku löök- ja vibratsioonimassaaž, mis hõlbustab röga eemaldamist. Samal eesmärgil võib enne imemist trahheostoomi süstida 10-15 ml isotoonilist naatriumkloriidi lahust.

8. Bronhidest imemisel on vaja kasutada posturaalse drenaaži mõju ja võtteid, mis võimaldavad kateetri sisestada vaheldumisi vasakusse ja paremasse peabronhi (vasakusse bronhi sisestamisel pöörata patsiendi pead ja nihutada hingetoru paremale, kui see sisestatakse paremasse peabronhi, pöörake pea ja hingetoru nihkumine vasakule); posturaalse drenaaži ajal tuleks teha löökpillid, vibratsioon ja muu rindkere massaaž.

9. Nakkuslike tüsistuste vältimiseks tuleks desinfitseerida ka manseti kohal asuv ruum, mis võimaldab läbida aspiratsioonikanaliga trahheostoomitoru

TRAHHEOSTOOMIA TÖÖTLEMINE

Sihtmärk: normaalse hingamise säilitamine trahheostoomi kaudu, trahheobronhiaalpuu sanitaarhooldus

Näidustused: trahheostoomi olemasolu

Varustus: steriilsed: mask, steriilsed kindad, kateetrid, marli salvrätikud, vatitupsud, keermestatud sond, sisemine trahheostoomi toru, sobiva suurusega pipett, kandik, pintsetid, 0,82% furatsilina lahus, 70% alkohol, 2% - naatriumvesinikkarbonaadi lahus (küpsetus sooda) Lassari pasta, soe keedetud vesi, elektriline imemine, jääkmaterjali salv, konteiner desinfitseerimislahusega.

Toimingute järjestus:

1. Pese käed, pane kätte kindad, mask

2. Istutage patsient maha, eemaldage määrdunud side, asetage see jäätmesalvesse

3. Keerake keermestatud sondile vatt, niisutage seda sooja veega

4. Eemaldage sisemine toru, pühkige selle sisepind vatiga sondile ja asetage see jäätmesalve.

5. Seisake patsiendi küljel

6. Tilgutage välistoru sisse soe steriilne soodalahus

7. Asetage pipett jäätmesalve

8. Sisestage kateeter torusse 10-15 cm sügavusele, lülitage elektriline imemine sisse ja eemaldage hingetoru sisu, eemaldades kateetrit aeglaselt 15-25 sekundiks.

9. Korrake protseduuri 2-3 korda

10. Töötle stoomi ümbritsevat nahka furatsiliiniga, kurna salvrätikuga, määri nahale Lassari pasta, pane trahheostoomitoru alla marli aluspüksid)

11. Sisestage sisekumm

12. Katke trahheostoomia 0,02% furatsiliini lahuses niisutatud niiske kahekihilise salvrätikuga, mis on kinnitatud ümber kaela nagu põll)

13. Viige kinnitusside läbi välise trahheostoomitoru vasaku kõrva.

14. Tõmmake kahekordne kiht sidet piki kaela tagaosa, sisestage side välise trahheostoomi toru paremasse kõrva, siduge sideme otsad kaela paremale küljele.

15. Desinfitseerige hooldustarbed

16. Eemaldage kindad, kastke desinfektsioonivahendiga anumasse, peske käed.

9. MANIPULATSIOON "ÕHUKANALI SISSEJUHATUS"

Hingamisteede sisestamine suu kaudu

1. Näidustused:

a. Ülemiste hingamisteede täielik või osaline obstruktsioon. b. Kokkusurutud lõuad teadvuseta või intubeeritud patsientidel.

c. Vajadus aspiratsiooni järele orofarünksist.

2. Vastunäidustused:

a. Lõualuude või hammaste murrud.

b. Bronhospasmi anamneesis või äge episood.

3. Anesteesia: lokaalne niisutamine 10% lidokaiini lahusega okserefleksi mahasurumiseks.

4. Varustus:

a. Plastikust või pehme servaga õhukanal.

b. Pahtlilabida.

c. Elektriline imemine.

5. Asend: Lamades selili või külili

6. Tehnika:

a. Ava suu, suru spaatliga keelepõhja alla, tõmba keel kurgust välja.

b. Sisestage õhukanal suhu nõgusa poolega lõua poole nii, et selle distaalne ots oleks suunatud, kuid ei ulatuks orofarünksi tagumise seinani; kanali äärik peaks lõikehammaste tõttu 1-2 cm välja ulatuma.

c. Kasutage alalõua eendit, et tõsta keel neelu seinast eemale.

d. Suruge hingamisteedele alla ja libistage see 2 cm suhu, nii et selle kumerus toetuks keelealusele. e. Teise võimalusena võib kanali sisestada nõgusa poolega suulae poole. Pärast seda, kui selle ots jõuab keeleni (sel juhul spaatlit ei kasutata); keerake õhukanalit 180° ja seejärel libistage see üle keele. Seda meetodit ei soovitata kasutada, kui patsiendil on lahtised hambad või suutrauma, kuna hingamisteede pööramine võib põhjustada hammaste nihkumist või verejooksu suurenemist.

7. Tüsistused ja nende kõrvaldamine:

a. Bronhospastilise reaktsiooni tekkimine Säilitage hingamisteede läbilaskvus, järgides punktis A kirjeldatud manöövrit.

b. Iiveldus või oksendamine Pöörake pea küljele ja aspireerige.

c. Hingamisteede ebaõige paigutuse tõttu süvenev hingamisteede obstruktsioon Eemaldage hingamisteed ja vajadusel sisestage see uuesti.

Hingamisteede sisestamine läbi nina

1. Näidustused:

a. Ülemiste hingamisteede obstruktsioon teadvusel patsientidel.

b. Hammaste või orofarünksi trauma.

c. Hingamisteede ebapiisav avanemine pärast suukaudse hingamisteede sisestamist.

2. Vastunäidustused:

a. Ninaõõne oklusioon.

b. Nina ja koljupõhja luumurrud.

c. Nina vaheseina kõrvalekalle.

d. Koagulopaatia.

e. Tserebrospinaalvedeliku lekkimine ninast.

f. Transsfenoidaalse hüpofüsektoomia ajalugu. g. Tagumise neeluklapi moodustumine ajaloolise kraniofaciaalse defekti sulgemiseks.

3. Anesteesia:

a. Hinnake visuaalselt ninasõõrmete avatuse astet (suhteline suurus, verejooksu või polüüpide olemasolu) või viige läbi järgmine test. Patsient peab välja hingama läbi nina väikesele peeglile või larüngoskoobi terale. Suurem kondensatsiooniplaaster viitab avatumale ninasõõrmele.

b. Kohaliku anesteesia ja vasokonstriktsiooni tagamiseks ninakäikudes kasutage järgmise koostisega segu: 10 mg fenüülefriini 10 ml 2% lidokaiini geelis.

c. Sisestage vardal olev tampoon valitud ninasõõrmesse ja oodake kohaliku anesteesia algust.

d. Sisestage tampoonid vardal ettevaatlikult järjest sügavamale ninasõõrmesse, kuni kolm tampooni on korraga nina tagaseina tasemel, põhjustamata patsiendile olulisi ebamugavusi. e. Pärast selle sulgemistehnika kasutamist on tavaliselt võimalik läbi ninaõõne läbida 7,5 mm hingamisteed. f. Kui tampoone ei ole võimalik kasutada, võib lidokaiini-fenüülefriini segu süstida süstlaga otse ninaõõnde.

4. Varustus:

a. Vatipulgad vardale.

b. Erineva kaliibriga nina õhukanalid (tavaliselt 6,0–8,0 mm)

c. 2% lidokaiini geel. d. Fenüülefriin. e. Elektriline imemine. 5. Asend: Lamades selili, külili, istudes.

6. Tehnika:

a. Sisestage hingamisteed ettevaatlikult ninasse nõgusa poolega kõva suulae poole. b. Viige õhukanal alumise kraanikausi all olevasse ninasse paralleelselt suulaega.

c. Kui tagumises osis tekib takistus, pöörake kanalit ettevaatlikult 60–90° ja jätkake sisestamist os-sse; võib aidata ka õhukanali pööramine 90° vastupäeva ja seejärel pärast kurgu läbimist tagasi algasendisse.

d. Kui õhukanal ei lähe keskmise jõuga läbi, kasutage väiksema mõõturiga kanalit.

e. Kui hingamisteed ei liigu, tõmmake see 2 cm välja, tõmmake sellest läbi väike imemiskateeter, seejärel proovige siseneda hingamisteedesse, kasutades kateetrit juhisena.

Meditsiiniorganisatsiooni tingimustes ja kodus on patsiente, kellel röga ja lima blokeerivad hingamiseks vajaliku õhu liikumise tee. Mõnel juhul võivad need saladused koguneda ninna, suhu, kõri ja hingetorusse.

Kui saladuse evakueerimist suuõõnest saab teostada hingamisteede mehaanilise tühjendamise teel salvrätikuga, mida kantakse sõrme või spaatliga, siis nina, kõri ja hingetoru sarnast mehaanilist tühjendamist on peaaegu võimatu teha. .

See probleem on eriti oluline insultide ja neelamishäiretega patsientidel, kellel on pärast mitmeid kirurgilisi sekkumisi muid neuroloogiliste patoloogiate esinemist. Sellega seoses oleks kõige sobivam kasutada röga aspireerivaid (äraimevaid) seadmeid.

Praegu on selliste seadmete valik üsna suur. Üks näide on ATMOS-i seeria aspiraatorid, mida saab kasutada nii meditsiiniasutuses kui ka kodus. Nendel seadmetel on väikesed gabariidid ja kaal, võime töötada vooluvõrgust või akust, kõrge aspiratsioonikiirus, vahemikus 16-25 l/min.

Aspiratsiooniprotseduur nõuab spetsiaalset ja üsna lihtsat õe ja/või patsiendi lähedaste koolitust. Esimesed aspiratsiooniprotseduurid konkreetse patsiendi jaoks on soovitav teha mitte ühe, vaid kahe meditsiinitöötaja poolt, et suuta patsienti võimaliku ebamugavuse eest hoiatada, toetada ja rahustada ning anda kohanemisvõimalus.

Vajadusel saab aspiratsiooniprotseduuri läbi viia üks meditsiinitöötaja, teine ​​mõõdab pulssi, vererõhku, toetab patsienti manipuleerimise ajal jne.

Põhjustavad tegurid, mis põhjustavad trahheostoomiaga patsientide arvu suurenemist, on kaela õõnesorganite kombineeritud vigastused, kõri ja hingetoru intubatsioonijärgne stenoos, mitmesugused kirurgilised sekkumised kaela organitesse, ülaosa pahaloomulised kasvajad. hingamisteed, rasked somaatilised haigused, mis häirivad elutähtsaid funktsioone - hingamine ja söömine, mis nõuavad hingamisteede ja seedetrakti proteesimist.

Hoolimata larüngotrahheaalse operatsiooni edukusest on märkimisväärne hulk patsiente sunnitud pidevalt trahheostoomiat kasutama kirurgilise taastava ravi võimatuse või ebaefektiivsuse tõttu.

Trahheostoomi olemasolu on patsiendi jaoks ohuallikas ning nõuetekohase hoolduse ja meditsiinilise jälgimise puudumisel võib see kujutada otsest ohtu elule. Trahheostoomiga patsientidel on mõnel juhul koos aspiratsiooniga vajalik trahheostoomi torude perioodiline asendamine ja nende puhastamine.

Nasotrahheaalne ja orotrahheaalne aspiratsioon

Sihtmärk: patsiendi nina, suu ja hingetoru vabanemine limast, rögast, takistades normaalset hingamist.

Näidustused: hingamisteedest lima ja röga evakueerimise rikkumine.

Võimalikud tüsistused

Oleks vaja: vaakum imemine (aspiraator), steriilne imemiskateeter, kindad (steriilsed steriilse kateetriga käsitsevale käele), prügikott, kaitsemask, kaitseprillid, ühekordne põll, hommikumantel, naatriumkloriidi lahus 0,9%, steriilne geel - määrdeaine (näiteks , "Katejel"), prügikott, vajadusel nebulisaator järgnevaks sissehingamiseks.

• Patsient asetatakse “istuvasse” või “pool-istuvasse” asendisse (pool-Fowleri asend), talle selgitatakse protseduuri olemust, antakse juhiseid, kuidas käituda, juhitakse tähelepanu sellele, et iga aspiratsioon ei võta rohkem kui 10-15 sekundit ega ole ohtlik. Vajadusel saab ajutiselt eemaldada eemaldatavad proteesid.

• Paluge patsiendil hingata 5 korda sügavalt sisse, kasutades võimalusel hapnikku.

• Kateetri otsa tuleb määrida määrdegeel, et parandada kateetri läbimist patsiendi ninna ja suhu, sissehingamise ajal sisestage kateeter suhu ja hiljem patsiendi ninna (kui nina hingamine on raske ja suu on täis lima, patsient võib karta, et ta lämbub, seetõttu algavad aspiratsioonid suuõõnest) sügavusele, mis ei ületa selle patsiendi ninaotsa kõrvanibu ja lülitab sisse aspiraator.

• Eemaldage kateeter pöörlevate liigutustega ilma aspiratsiooni peatamata, püüdes samal ajal mitte puudutada patsiendi suulae, uvula, keelt, et mitte põhjustada iiveldust ja oksendamist.

• Tehke kopsude auskultatsioon, et veenduda, et hingamine toimub kõigis kopsuosades. Kui obstruktiivse kopsuhaigusega patsiendil tekib kuiv vilistav hingamine, võib soovitada bronhodilataatori lahuse sissehingamist läbi nebulisaatori.

Trahheostoomi aspiratsioon

Sihtmärk: trahheostoomiga patsiendi kõri alaosa ja hingetoru vabanemine limast, rögast, mis takistavad normaalset hingamist.

Näidustused: trahheostoomiaga patsiendil hingamisteedest lima ja röga evakueerimise rikkumine.

Võimalikud tüsistused: verejooks ninast või ninaneelu, hingetoru kahjustus, hüpoksia, südame rütmihäired (sh brady või tahhükardia), lämbumine, iiveldus, oksendamine, köha, infektsioon hingamisteedes.

Oleks vaja: vaakum imemine (aspiraator), steriilne imemiskateeter, kindad (steriilsed steriilse kateetriga käsitsevale käele), prügikott, kaitsemask, kaitseprillid, ühekordne põll, hommikumantel, naatriumkloriidi lahus 0,9%, steriilne geel-määrdeaine (näiteks , "Katejel"), prügikott, vajadusel nebulisaator järgnevaks sissehingamiseks ja manomeeter trahheostoomitoru mansetis oleva õhu kontrollimiseks.

Manipulatsiooni teostamise algoritm

• Patsient asetatakse “istuvasse” või “pool-istuvasse” asendisse (pool-Fowleri asend), talle selgitatakse protseduuri olemust, antakse juhiseid, kuidas käituda, juhitakse tähelepanu sellele, et iga aspiratsioon ei võta rohkem kui 10-15 sekundit ega ole ohtlik.

• Meditsiinitöötaja või patsiendi sugulane paneb selga hommikumantli ja/või ühekordse põlle, ühekordsed kindad, maski, kaitseprillid.

• Imemiskateeter kinnitatakse aspiraatori külge, aspiraator on seatud imemisvõimsusele 80-120 mm Hg. Art. või kuni 0,4 baari täiskasvanutel ja kuni 0,2 baari lastel ja noorukitel.

• Tilgutage trahheostoomi torusse paar tilka 0,9% naatriumkloriidi lahust, et sekretsiooni vedeldada.

• Sisestage kateetri ots sügavusele, mis ei ületa trahheokanüüli pikkust.
• Eemaldage kateeter keerates liigutusi, jätkates samal ajal aspireerimist.
• Vajadusel korrake aspiratsiooni, kasutades teist kateetrit, et vältida infektsiooni levikut.
• Laske patsiendil loputada suud vee või suuveega.
• Pärast aspireerimist loputage torusüsteem antiseptilise lahusega.
• Hinnake aspiraadi mahtu ja kirjutage see temperatuurilehele või patsiendi vaatluste päevikusse.

• Tehke kopsude auskultatsioon, et veenduda, et hingamine toimub kõigis kopsuosades. Kui obstruktiivse kopsuhaigusega patsiendil tekib kuiv vilistav hingamine, võib soovitada bronhodilataatori lahuse sissehingamist läbi trahheostoomitoru külge kinnitatud nebulisaatori.

• Eemaldage ühekordne põll, mask, kindad, peske käed.

Hingetoru kanüüli puhastamine

Sihtmärk: trahheokanüüli puhastamine limast, rögast, verest selle edasiseks kasutamiseks.

Näidustused: trahheokanüüli saastumine lima, röga, vere ja muude võõrkomponentidega, mis loovad tingimused õhu liikumise häirimiseks läbi selle.

Võimalikud tüsistused

Oleks vaja: hingetoru tagavarakanüül (vahetatava hingetoru kanüüli kahjustuse korral), puhastusnõu, hari (hari) puhastamiseks, antiseptik, õli või salv trahheostoomi jaoks, kraan voolava veega.

Manipulatsiooni teostamise algoritm

• Eemaldage hingetoru kanüül voolava vee ja pintsliga, et eemaldada pinnapraht.

• Asetage sisemine ja välimine hingetoru kanüül pesemisseptilise lahusega anumasse, jätke 10 minutiks.

• Loputage puhastuslahuse kanüülid voolava vee all.
• Ravige trahheostoomi trahheostoomiõli või salviga.
• Sisestage kanüül stoomi.

• Kui verejooks tekib hingetoru trauma tagajärjel ebatäpsete manipulatsioonide tõttu, on soovitatav konsulteerida patsiendiga otorinolaringoloogiga. Kui verejooks on tugev, asetatakse patsient enne eriarsti läbivaatust kõhule langetatud peaga, et vältida vere sattumist bronhipuusse.

• Kui trahheostoomi paigaldamise ajal tekib lämbumine, on soovitatav paluda patsiendil köhida, et kõrvaldada hingamisteede ummistus, kui köhimine ei anna positiivset tulemust, peate selle kontrollimiseks eemaldama sisemise kanüüli. läbitavus.

• Peske käsi.

Hingetoru kanüüli vahetus

Sihtmärk: kasutuskõlbmatuks muutunud hingetoru kanüüli vahetus.

Näidustused: trahheokannüüli sobimatus edasiseks kasutamiseks.

Võimalikud tüsistused: verejooks hingetorust, hingetoru kahjustus, trahheostoomi toru ummistus ja hüpoksia teke.

Oleks vaja: hingetoru kanüül, kinnitusside, steriilsed trahheostoomi salvrätikud (1-, 2- või 3-kihilised), 10 ml süstal, õli või salv trahheostoomi jaoks, 0,9% naatriumkloriidi lahus, marli salvrätikud.

Manipulatsiooni teostamise algoritm

• Patsient asetatakse “istuvasse” või “poolistuvasse” asendisse (pool-Fowleri asend), talle selgitatakse protseduuri olemust ning antakse juhiseid, kuidas käituda.

• Esimeses etapis aspireeritakse kanüülivahetuse ajal hingamisteed, et kindlustada hingamisteed.

• Kanüül eemaldatakse. Kui see on ummistunud, üritatakse hoolikalt eemaldada plokk ja eemaldada kanüül.

• Trahheostoomi puhastatakse 0,9% naatriumkloriidi lahuses leotatud steriilsete salvrätikutega või spetsiaalsete trahheostoomi puhastamiseks mõeldud salvrätikutega.

• On vaja kontrollida trahheostoomi kanüüli fikseerimise usaldusväärsust, et see ei kukuks stoomist välja, vaid eemaldataks ainult vajaduse korral.

• Kanüüli asendamiseks asetatakse tema kõrvade alla Y-kujulise sisselõikega steriilsed salvrätikud. Õli või salv trahheostoomi toru raviks asetatakse kanüüli pinnale. Trahheostoomiava tuleb venitada ja hoida kahe sõrmega, seejärel sisestada kanüül, järgides selle kõverusi ja olles ettevaatlik. Kinnitage kinnitusrihmad kaela külge ja kontrollige kanüüli fikseerimist. Kanüüli kinnitavad sidemed tuleks venitada kaelanaha ja sidemete vahele nii, et saaks sisestada 1 sõrme.

• Peske käsi.

Seega on nasotrahheaalse, orotrahheaalse ja trahheostoomia imemise teostamine spetsiaalsete seadmetega ning trahheostoomi eest hoolitsemine õe jaoks hädavajalikud oskused, mida ta saab õpetada patsiendi kodust abi osutavatele lähedastele.